氟尿嘧啶聚丙交酯乙交酯聚乙二醇单甲基醚纳米粒的制备及体外释解析.docx

1、氟尿嘧啶聚丙交酯乙交酯聚乙二醇单甲基醚纳米粒的制备及体外释解析基金项目：黑龙江省青年科学基金项目（QC2011C104）；黑龙江省卫生厅科研课题（No2009-136）；哈尔滨医科大学附属第二医院院青年基金项目（QN2009-03）作者简介：纪宏宇，女，硕士，主管药师研究方向：药物新剂型与新技术*通讯作者：吴琳华，女，教授，硕士生导师研究方向：药物新剂型与新技术Tel ：（0451）86665559E-mail ：jihongyu1979126. com氟尿嘧啶聚丙交酯乙交酯-聚乙二醇单甲基醚纳米粒的制备及体外释放的研究纪宏宇1，2，3，谷宏伟1，3，唐景玲3，刘红梅1，2，3，于明涛1，3，

2、吴琳华1，2，3*（1哈尔滨医科大学第二附属医院药学部，哈尔滨150086；2黑龙江省高校重点实验室，哈尔滨150086；3哈尔滨医科大学药学院，哈尔滨150086）摘要：目的制备氟尿嘧啶聚丙交酯乙交酯-聚乙二醇单甲基醚（PLGA-mPEG ）纳米粒，并对其体外释放特性进行研究。方法采用纳米沉淀法制备氟尿嘧啶PLGA-mPEG 纳米粒，采用高效液相色谱法进行包封率的测定。在单因素实验的基础上，通过正交实验优化处方和制备工艺。采用动态膜透析法对纳米粒子的体外释药特性进行研究。结果制备的纳米粒为较均匀的类球形粒子，平均粒径约124. 3nm ，Zeta 电位20. 6mV ，平均包封率为（44.

3、72 0. 38）%。体外释药实验研究表明，粒子在2h 的突释量小于30%，在突释后的48h 内药物缓慢释放。结论纳米沉淀法操作简单，制备的氟尿嘧啶PLGA-mPEG 纳米粒粒径小，体外药物释放具有良好的缓释效果。关键词：氟尿嘧啶；纳米粒；纳米沉淀法；体外释放中图分类号：R944文献标志码：A文章编号：10012494（2011）23181405Study on Preparation and in Vitro Release Characteristics of 5-Fluorouracil Loaded PLGA-mPEG Nanop-articlesJI Hong-yu 1，2，3，GU

4、 Hong-wei 1，3，TANG Jing-ling 3，LIU Hong-mei 1，2，3，YU Ming-tao 1，3，WU Lin-hua 1，2，3*（1. De-partment of Pharmacy ，The Second Affiliated Hospital of Harbin Medical University ，Harbin 150086，China ；2. Key Laboratory of Medi-cations Research ，College of Heilongjiang Province ，Harbin 150086，China ；3. Coll

5、ege of Pharmacy ，Harbin Medical University ，Har-bin 150086，China ）ABSTRACT ：OBJECTIVE To prepare 5-fluorouracil loaded PLGA-mPEG nanoparticles （5-FPN ）and study its release profilein vitro . METHODS5-FPN was prepared by nano-precipitation method. A reversed-phase high performance liquid chromatog-ra

6、phy （RP-HPLC ）method was used to determine the entrapment efficiency of 5-FPN. Based on the single-factor experiment ，the formulation and preparation process of 5-FPN was optimized using orthogonal design. RESULTS5-FPN had regular sphericalappearance with a mean diameter of 124. 3nm and Zeta potenti

7、al of 20. 6mV ，and entrapment efficiency of （44. 72 0. 38）%.In the release in vitro ，the cumulative percentage of abruptly released drug from PLGA-mPEG nanoparticles was lower than 30%in 2h. The 5-FPN showed delayed release in 48h after the drug dumping. CONCLUSION The nano-precipitationmethod is co

8、nvenient. The 5-FPN prepared by nano-precipitation method has smaller particle size and possesses good sustained re-lease characteristics in vitro .KEY WORDS ：5-fluorouracil ；nanoparticles ；nano-precipitation ；release in vitro氟尿嘧啶（5-fluorouracil ，5-Fu ）是抗代谢类的抗肿瘤药物，对增殖性细胞有较强的杀伤作用。它是一种临床应用广泛的广谱抗肿瘤药物，在

9、临床上用于多种肿瘤的治疗，对消化道癌症以及卵巢癌、宫颈癌、膀胱癌等多种肿瘤有明显疗效1。目前临床使用的大多是5-Fu 普通注射液，由于5-Fu 注射液对肿瘤细胞的选择性低，在体内分布较广，故其对正常细胞的毒性较大，易产生很多不良反应如骨髓抑制、白细胞减少、血小板减少等2。因此为提高5-Fu 的靶向性、降低不良反应、延长药物作用时间，研究开发5-Fu 新型药物传递系统已成为近些年的研究热点。纳米粒是近年来发展起来的一种新型药物传递系统，其在抗肿瘤药物中的应用受到广泛的关注。4181Chin Pharm J ，2011December ，Vol . 46No . 23中国药学杂志2011年12月第

10、46卷第23期由于肿瘤组织血管丰富，纳米级粒子易穿透肿瘤部位的血管并滞留于其中，具有高通透性和滞留效应（enhanced permeation and retention ，EPR ），故纳米粒本身具有一定的肿瘤靶向性，同时纳米粒还具有提高药物稳定性、延长药物作用时间、提高药物的生物利用度等优点3-4。聚丙交酯乙交酯-聚乙二醇单甲基醚（PLGA-mPEG ）作为一种新型载体材料具有良好的生物相容性和生物可降解性5-6，有文献报道将抗肿瘤药物顺铂制备成PLGA-mPEG 纳米粒，能够减少药物的毒性，增强药物的被动靶向性，延长药物在体内的循环时间，进而明显的提高顺铂的治疗效果7。本实验即采用PLG

11、A-mPEG ，通过纳米沉淀法制备5-Fu 纳米粒，并对其质量及释药特性进行研究，为进一步研制开发高效、低毒、长效的新型5-Fu 纳米粒制剂奠定实验基础。1仪器与试药AEU 210精密电子天平（日本岛津公司）；CL 2磁力搅拌器（巩义市予华仪器有限责任公司）；RE 52C 旋转蒸发仪（巩义市英峪予华仪器厂）；SHB D 型微型循环水真空泵（郑州长城科工贸有限公司）；TGL 16高速台式离心机（上海医药器械六厂）；高效液相色谱仪（美国Waters 公司）；KQ3200E 医用超声波清洗器（昆山市超声仪器有限公司）；Zetasizer 3000HS 激光粒径分析仪（英国Malvern 公司）；Te

12、cnai G2透射电镜（荷兰Philips 公司）。PLGA-mPEG （相对分子质量1200，山东济南岱罡生物科技有限公司）；5-Fu （含量99. 5%）（上海森灏精细化工有限公司，批号：20081030）；泊洛沙姆188、泊洛沙姆407（德国巴斯夫公司）；甲醇为色谱纯；丙酮、乙醇等其他试剂均为分析纯；蒸馏水（哈医大二院药学部自制）。2方法与结果2. 1处方和工艺筛选2. 1. 1单因素实验通过单因素实验分别考察了有机溶剂的种类、水相温度、表面活性剂的种类和浓度、药量、聚合物的质量、有机相的加入方式及搅拌时间对包封率的影响。2. 1. 2正交实验优化工艺处方在单因素实验的基础上，对显著影响

13、药物包封率的4个因素，即有机相组成、水浴温度、药载比、表面活性剂的浓度，采用正交设计法进行处方优化。每个因素选择3个水平，按照L 9（34）进行实验，以包封率为主要评价指标确定最佳处方。正交实验设计方案与结果见表1，正交统计分析结果见表2。由表2可知，此实验校正模型P 0. 05，具有统计学意义。由表1、2的结果进行综合分析，各指标因素的主次顺序为A B C D ，其中A 、B 两因素具有统计学意义（P 0. 05）。A 因素中k k k ，B 因素中k k k ，C 因素中k k k ，D 因素中k k k ，因此得到的最佳处方为A 1B 2C 2D 2。2. 2氟尿嘧啶聚丙交酯乙交酯-聚乙

14、二醇单甲基醚纳米粒（5-FPN ）的制备方法表1确定最佳处方的正交实验方案和结果Tab. 1Program and result of orthogonal designNo.FactorThe ratio of organic phase（V /V）（A ）Temperature of water phase/（B ）The ratio of 5-Fu and PLGA-mPEG （C ）Surfactant concentration/%（D ）Entrapment efficiency/%16 0301 20. 532. 7526 0401 2. 5144. 6836 0501 31.

15、534. 3544 2301 2. 51. 529. 3754 2401 30. 531. 9964 2501 2127. 6373 3301 3122. 6083 3401 21. 529. 1193 3501 2. 50. 525. 73k 37. 2728. 2429. 8330. 16k 29. 6635. 2633. 2631. 64k 25. 8129. 2429. 6530. 94R11. 477. 023. 611. 485181中国药学杂志2011年12月第46卷第23期Chin Pharm J ，2011December ，Vol . 46No . 23本实验以PLGA-m

16、PEG 为载体材料，采用纳米沉淀法制备纳米粒。室温下称取20mg 5-Fu 与50mg PLGA-mPEG 溶于6mL 有机溶剂丙酮中作为有机相，将有机相以恒定速率滴入到40mL 温度为40 搅拌的1%的泊洛沙姆188溶液中，得到有淡蓝色乳光的纳米粒溶液，在1400r min 1的搅拌速度下搅拌20min ，在35 减压条件下除去有机溶剂，所得溶液用0. 8m 的微孔滤膜过滤，将滤液离心40min （20000r min 1，4 ）后收集纳米粒子即得5-Fu 纳米粒。2. 35-FPN 包封率的测定2. 3. 1色谱条件色谱柱：Diamonsil TMC 18（4. 6mm 250mm ，5m

17、 ）；流动相：甲醇-水（1 9）；流速：1. 0mL min 1；柱温：30 ；检测波长：265nm ；进样量：10L 。在该条件下5-Fu 的保留时间约为4. 8min 。5-Fu 与纳米粒辅料分离良好，辅料不干扰5-Fu 的测定。2. 3. 2标准曲线的测定精密称取5-Fu 约10mg 置于100mL 量瓶中，用流动相溶解后稀释至刻度，混匀，制得100g mL 1的贮备液。分别精密吸取贮备液1. 0、3. 0、4. 0、5. 0、6. 0和8. 0mL ，置于10mL 量瓶中，用流动相稀释至刻度，得一定浓度的系列标准液。以峰面积（A ）为纵坐标，以质量浓度（g mL 1）为横坐标进行线性回

18、归，得回归方程：A =3. 5570 104+1. 9415 104（r =0. 9995）。5-Fu 在10 100g mL 1线性关系良好。2. 3. 3精密度实验分别取40、50、60g mL 1的低、中、高3种质量浓度的对照品溶液，于1d 内测定5次，计算日内精密度；每1d 进样1次，连续测定5d ，计算日间精密度。日内精密度和日间精密度（RSD ）均小于2%，符合要求。2. 3. 4回收率实验分别称取一定质量的空白纳米粒制剂9份，加至40、50、60g mL 1的低、中、高3个质量浓度的对照品溶液中，每个浓度各制备3份，将其完全分散后，离心取上清液进样测定，计算回收率。平均回收率为1

19、00. 09%，RSD 为0. 94%。2. 3. 5包封率的测定采用高速离心法分离游离药物与纳米粒粒子，高效液相色谱法测定游离药物的含量。载药纳米粒溶液离心40min （20000r min 1，4 ）后，收集上清液，进样10L ，记录峰面积，计算包封率。测定了3批最佳处方工艺的5-FPN 的包封率，结果平均包封率为（44. 72 0. 38）%。2. 4纳米粒的质量评价2. 4. 1纳米粒粒径、电位的测定取载药纳米粒，用蒸馏水稀释到适当的浓度，经激光粒度分析仪测定，纳米粒的平均粒径为124. 3nm ，Zeta 电位为20. 6mV 。粒度分布和Zeta 电位分布分别见图1，2。2. 4.

20、 2形态观察将样品用蒸馏水适量稀释，采用磷钨酸复染法，通过透射电镜，观察纳米粒的粒子形态，透射电镜照片见图3。从图3中可以看出，纳米粒为较均匀的类球形粒子。2. 4. 3体外释药特性研究采用动态膜透析法进行纳米粒体外释药实验。分别精密量取3份处方量的冻干纳米粒约2mg ，置于经处理过的透析袋内，加入1mL 磷酸盐缓冲液（pH 7. 4）混匀，将袋口扎紧。以100mL 磷酸缓冲液（pH 7. 4）为释放介质，转速为100r min 1，温度为（37 0. 5） ，在0. 25、0. 5、1、2、4、6、8、10、12、24、36、48h 分别取样1mL ，经0. 8m 微孔滤膜过滤后，取10L

21、进样。取样同时向体系中补充1mL 释放介质。通过下式计算纳米粒的累积释放百分率（Q ）。结果见图4。Q %=v 0 t +v t 1n =1nW 100%t t 时间点测得释放介质中的药物质量浓度（g mL 1）；v 每次取样体积（mL ）；v 0释放介质的总体积（mL ）；W 纳米粒的载药量（g ）；n 各取样时间点的质量浓度（g mL 1）。表2正交实验结果方差分析表Tab. 2The statistic analysis of orthogonal designSourceType III Sum of Squaresdf Mean Square F P Corrected Model

22、312. 8201）652. 13742. 4770. 0238503. 29918503. 2996927. 8330. 000A204. 8012102. 40083. 4280. 012B 82. 799241. 39933. 7290. 029C 25. 220212. 61010. 2740. 089Error 2. 45521. 227Total8818. 5749Corrected total315. 27586181Chin Pharm J ，2011December ，Vol . 46No . 23中国药学杂志2011年12月第46卷第23期 如图4释放曲线所示，纳米粒子在2

23、h 时发生突释现象，释放量小于30%。在12h 时，载体纳米粒的药物累积释放百分率达到50%左右。在48h 时，载体纳米粒的累积药物释放百分率达到80%以上，药物释放较完全。体外释药实验结果表明，以PLGA-mPEG 为载体的纳米粒具有明显的缓释特性。3讨论3. 1目前常用于纳米粒的生物可降解载体材料有聚氰基丙烯酸酯、聚酯、聚酰胺、聚酸酐等8，其中应用最广泛的是聚乳酸（PLA ）、聚羟基乙酸及乳酸/羟基乙酸共聚物（PLGA ）。有报道称用PLA 、PLGA 作为载药微球、纳米粒的载体，可以起到保护药物、增溶、提高生物利用度及靶向释药等作用9。但是这两种材料具有严重的疏水性，限制了其在药物载体领

24、域中的应用。本实验采用PLGA-mPEG 为载体材料，PLGA 连接亲水段mPEG 后，增加了材料的亲水性，使材料具有两亲性。同时由于亲水性PEG 链的引入，能够抵制和逃逸网状内皮系统的吞噬，延缓粒子在体内循环系统的滞留时间，更有利于药物向有血管缺陷的肿瘤组织的渗透，进一步提高纳米粒的靶向性。此外，本实验制备的纳米粒具有一定缓释特性，有效地降低了纳米粒中药物在浓集于肿瘤组织之前的大量释放，从而避免由此产生的全身毒副作用及药效降低的现象。3. 2纳米粒的制备方法有乳化溶剂挥发法10、纳米沉淀法11、高压均质法12等。本实验采用简单易行、操作安全的纳米沉淀法制备5-Fu 纳米粒。此方法中使用的有机

25、溶剂毒性较低、易除去，避免了二氯甲烷等毒性大的有机溶剂的使用。此方法制备的粒子粒径较小，分散性和重现性较好。3. 3本实验曾做过粒径为50nm 左右的纳米粒，但是其释放曲线的突释现象严重。在3h 左右药物累积释放量就达到了80%。而由粒径为120nm 左右的纳米粒的释放曲线可知，粒径为120nm 左右的纳米粒子在48h 时累积药量达到80%以上，具有很好的缓释特性。由此可知，粒径的大小影响纳米粒的药物释放。粒径较大的纳米粒的药物释放时间长，能够达到很好的缓释效果。3. 4测定药物包封率时，需要将游离药物与包封药物分离。常见的方法有透析法、凝胶柱层析法、超滤法等。透析法耗时长、凝胶柱层析法设备复

26、杂、超滤法材料昂贵，而低温超速离心的方法设备操作简单且分离效率高，因此本实验采用低温超速离心的方法分离游离药物与纳米粒粒子，回收率实验结果表明，该方法可靠。7181中国药学杂志2011年12月第46卷第23期Chin Pharm J ，2011December ，Vol . 46No . 233. 5对处方工艺影响因素的考察可知，有机相组成、温度、水相浓度、药量与聚合物量的比例、有机相加入方法等因素对5-FPN 的包封率有影响，前4个因素影响较显著。在本实验中，通过验证实验结果表明最优处方的重现性好。5-Fu 微溶于水中，这可能是包封率不高的原因。通过实验可知，粒子形成的搅拌时间和旋转蒸发时间

27、过长都会使粒子的包封率下降，因此本实验拟进一步采用冷冻干燥技术，将纳米粒子制备成冻干粉末，以提高粒子的稳定性。REFERENCES1ZHU L Z ，MA J W ，JIA N Q ，et al Chitosan-coated magneticnanoparticles as carriers of 5-fluorouracil ：Preparation ，character-ization and cytotoxicity studies J Colloids Surf B ：Biointerfac-es ，2009，68（1）：1-6.2ASUMAN B ，ONGUN M SFormula

28、tion and investigation of 5-FU nanoparticles with factorial design-based studies J IlFarmaco ，2005，60（10）：840-846.3YANG Z Q ，PAN P ，XU J ，et al Study on preparation of CyA-eudragit S100-nanoparticles and its characteristics in vivo and invitro J Chin Pharm J （中国药学杂志），2008，43（23）：1798-1803.4HE L Q ，Z

29、HU LStudy on distribution in vivo and pharmacody-namics of prodrug folate-bovine serum albumin-5-fluorouracil nan-oparticles J Chin Pharm J （中国药学杂志），2010，45（2）：107-110.5VANDERVOORT J T ，LUDWIG ABiocompatible stabilizers in the preparation of PLGA nanoparticles ：a factorial design study J Int J Pharm

30、 ，2002，238（1-2）：77-92.6ZHANG L H ，HE Y N ，MA G L ，et al Preparation ，charac-terzation ，in vitro and in vivo studies on Folate-Targeted Biode-gradable Polymersomes Loaded with Paclitaxel J Chin Pharm J （中国药学杂志），2010，45（22）：1742-17487AVGOUSTAKIS K ，BELETSI A ，PANAGI Z ，et al PLGA-mPEG nanoparticles of

31、 cisplatin ：in vitro nanoparticle degrada-tion ，in vitro drug release and in vivo drug residence in blood properties J J Controlled Release ，2002，79（1-3）：123-135.8POLLAUF E J ，BERKLAND C ，KIM K ，et al In vitro degrada-tion of polyanhydride /polyestercore-shell double-wall micro-spheres J Int J Pharm ，2005，301（1-2）：294-303. 9ZHOU S ，LIAO X ，LI X ，et al Poly