1、流式细胞仪上机培训手册流式细胞仪上机操作培训手册一、样本处理以PBMC表面抗原的流式检测步骤为例1)取样。取新鲜提取或冻存后复苏的PBMC;2)编号。根据实验设计,标记好流式管,如每份PBMC设两管:a)1号管:相应同型对照;b)2号管:CD3,CD4,CD8,CD56四标管;3)加样。用移液器取100ul细胞/管(约1106个细胞/管),分别加到已经标记好的流式管底部;4)洗涤。加入1ml PBS/管,涡旋1600rpm/min,离心6min;5)染色。弃上清,加入100 l PBS/管涡旋混匀细胞,并根据实验设计,向各流式管中加入相应的荧光素标记抗体,混匀,室温避光孵育30min(操作尽量
2、保持在避光条件下进行。)6)洗涤。加入1ml PBS/管,涡旋1600rpm/min,离心6min;7)重悬。弃上清,加入0.5ml PBS/管,混匀,上机检测(可选择BD FACSCanto II或BD Accuri C6)。(注:若不能及时上机,应加入4%多聚甲醛固定,并于4避光保存。)8) 试验结果分析。 (注:实验过程中如果进行多色标记,需要调节荧光补偿)。参考值:CD3+60.8-75.4%CD4+29.4-45.8%CD8+18.2-32.8%NK(CD3-CD56+)9.5-23.5%二、上机检测BD FACSCanto II简要操作流程启动流式细胞仪1 打开流式细胞仪电源2 启
3、动计算机,打开软件登录3 确保软件连接到流式细胞仪必要时,点击Cytometer connect检查液体水平1 启动流式细胞仪后,检查液体水平 低液面水平或者废液桶满都用红色指示。2 如果液流车未自动开启,选择Cytometer Fluidics Startup。3 当液流启动完成后,点击OK关闭对话框。检查气泡1 在检查完液体水平后,开启流动室门,检查流动室中是否有气泡。2 如果没有看到气泡,进行第5步。如果看到气泡,点击Cytometer Cleaning Modes De-gas Flow Cell.3 当完成信息出现后,点击OK。4 如果还可以看到气泡,重复上述操作。注意:如果打开流动
4、室细胞进口门时出现错误信息,通过关闭进口门,并等待30秒关闭该信息。5 当您完成上述操作后,在往下进行之前请先检查激光预热是否已经完成。创建实验1 按照需要,在工作区工具栏中点击相应的按钮来显示浏览器、细胞仪、检测器、工作表、获取控制板和双指数编辑器窗口。2 创建文件夹: A 在浏览器中选择数据库图标,并点击浏览器工具栏上的New Folder。 B 对该文件夹命名。3 选择该文件夹,点击New Experriment来创建一个新实验。4 对该实验进行重命名。5 选择实验级别的细胞仪设置,然后点击Inspector(检测器)中的Parameters(参数)选项卡。6 按照需要变更,添加或者删除
5、参数。运行样本并记录数据1 将样品管安装到流式细胞仪中并点击Aquire Data(获取数据)。 A 把抽吸臂向左侧推。B 把流式管放置到SIT上,确保试管竖直,并用力向上推试管直到试管完个停止并完个就位。C 把抽吸臂放置到试管下的中心位置。抽吸臂上有3个传感器引脚。试管底部应定位在这些引脚的中心位置内。2 调节FSC和SSC电压以正确显示细胞的散射光特征。3 必要时,点击阈值图标并对FSC阈值进行调节。4 调节P1门仅围绕目的细胞群体。5 调节好后,点击Record Data(记录数据)以记录数据。6 获取停止,取出试管。建立全局工作表1 如果用户参数中启用了Default global w
6、orksheet(默认个局工作表)(默认选项),则全局工作表已经存在。展开全局工作表文件夹来定位和重命名工作表。(注:如果Default global worksheet被禁用,则通过点击浏览器工具栏中的New Global Worksheet(新个局工作表)按钮创建个局工作表。)2 使用设计对话框定义参数标记并指定各个试管要记录的细胞颗粒数。标记会出现在点图轴上和所有的统计结果图中。 A 选择Experiment(实验)Experiment Layout(实验布局)。 B 在Labels(标签)选项卡中,为试管输入适当的标签。例如,在FITC域中输入CD3。使用Tab键移动到下一个域。3 在
7、该全局工作表中,创建用预览数据的点图。例如:创建PerCP-Cy5.5对SSC,FITC对APC, FITC对PE, FITC对PE-Cy7和F ITC对APC-Cy7点图。设门通过设门的方法可以定义细胞亚群的区域。如:PBMC样本是混合细胞群,如果想单独分析淋巴球细胞,可根据FSC或细胞大小,在 FSC,SSC的散点图中设门,其数据结果只反映淋巴细胞亚群的荧光特性。关机1选择Cytometer(细胞仪)Fluidics Shutdown(液流关闭),并遵循所有的提示。2关闭细胞仪电源。3退出BD FACSDiva软件。C6简要操作流程开机1.打开电脑,上样处放置一管双蒸水2.打开C6仪器,其
8、自动执行“startup”,时间约5min,期间禁止开盖3.当软件显示仪器状态为“Cytometer Connected and ready”并亮绿灯时,则可以上样4. (推荐用质控微球上机,FL1-H和FL2-H直方图中必须有八个峰,FL3-H中必须有6-8个峰,即仪器分辨率CV值满足标准)采集样品1.样品震荡混匀后置于上样二档处2.设置流速,采样数目或时间或体积3.点击“Dot Plot”或“Histogram”或“Density Plot”,选择需要的图形4.点击坐标轴参数,从下拉菜单中选择需要的参数(如:“FL1-A”“FSC-A”)5.点击“Plot Spec”,选择“linear”
9、或者“log”,设置坐标轴显示范围6.右击坐标轴参数,选择“Rename Parameters”,进行坐标轴重命名7.选择“Display”中的“Events Display Settings”,选择显示的细胞数8.选择样品位置,点击“run”,进行采样9.取下样品10.取新的流式细胞管置于上样针处,点击“backflush”,清洗上样针11.样品命名12.点击“Zoom In”,放大指定区域,设置阈值。点击“Zoom Out”,返回放大设门1.在图像下方点击设门工具,圈定指定区域,设置为门2.点击相应图像上方的“Gate”,选择该图像需要应用的门设置补偿若样本是双荧光或三荧光检测,则实际图像
10、显示中会用到荧光补偿1.点击“Set Color Compensation”2.选择需要补偿的荧光参数,输入补偿值,点击“Save & Close”分析统计点击“Statistic”可选择预览选择的样品图形,所有的Plot列表。所有的Plots,Gates以及统计学的列表,从中选择需要显示的信息关机清洗1.放置一管去离子水,运行2min,清洗时10 Events/sec 才算干净2.放置一管0.5%-1%有效氯的清洗液,运行2min3.放置一管去离子水,运行2min,运行结束后去离子水保留在上样处4.退出软件,关闭电脑5.关闭电源键(按住时间小于5秒钟),仪器自动Shutdown,时间约为13min,完成后仪器电源键自动关闭三、数据分析略。
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