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1、由于自噬有利于细胞的存活，因此无论是物种间、还是各细胞类型之间（包括肿瘤细胞），自噬都普遍被保留下来（谁不喜欢留一手呢？）。自噬相关基因（autophagyassociatedgene,ATG）：在自噬过程中到底有哪些蛋白的参与，即自噬相关蛋白的鉴定是目前自噬研究主要的任务。由于自噬研究的历史关系，很多基因在酵母和哺乳动物中有不同的命名。在http:/www.ncbi.nlm.nih.gov/books/bv.fcgi?rid=eurekah.table.24964中介绍了一些较早发现的自噬相关基因，下面列出几个新近发现的：1）bif-1（又叫EndophilinB1）和UVRAG（ultra

2、violetirradiationresistance-associatedgene）相关文章：Bif-1interactswithBeclin1throughUVRAGandregulatesautophagyandtumorigenesis.pdf2）VMP1（Vacuolemembraneprotein1）ThePancreatitis-inducedVacuoleMembraneProtein1TriggersAutophagyinMammalianCells.pdf3）DRAM（damage-regulatedautophagymodulator）DRAM,ap53-InducedM

3、odulatorofAutophagy,IsCriticalforApoptosis.pdf4）TP53INP2（TumourProtein53InducedNuclearProtein2）TheTP53INP2ProteinIsRequiredforAutophagyinMammalianCells.pdf自噬过程的调控：从上面总结的自噬特点中可以看出，自噬这一过程一旦启动，必须在度过危机后适时停止，否则，其非特异性捕获胞浆成分的特性将导致细胞发生不可逆的损伤。这也提醒我们在研究自噬时一定要动态观察，任何横断面的研究结果都不足以评价自噬的活性。目前，已经报告了很多因素能诱导细胞发生自噬，如饥

4、饿、生长因子缺乏、微生物感染、细胞器损伤、蛋白质折叠错误或聚集、DNA损伤、放疗、化疗等等，这么多刺激信号如何传递的、哪些自噬蛋白接受信号、又有哪些自噬蛋白去执行等很多问题都还在等待进一步解答中。关于传递自噬信号的通路目前比较肯定的有：抑制类1）ClassIPI3Kpathway（PIphosphatidylinositol，磷脂酰肌醇）与IRS（Insulinreceptorsubstrate）结合，接受胰岛素受体传来的信号（血糖水平高抑制自噬）详细介绍参见：维基百科http:/en.wikipedia.org/wiki/Phosphoinositide_3-kinase2）mTORpath

5、way（mammaliantargetofrapamycin）mTOR在人类中的同源基因是FRAP1（FK506bindingprotein12-rapamycinassociatedprotein1），是一个丝/苏氨酸蛋白激酶。能接受多种上游信号，如ClassIPI3K、IGF-1/2、MAPK，能感受营养和能量的变化。详细介绍见：http:/en.wikipedia.org/wiki/MTOR激活类1）ClassIIIPI3K结构上类似于ClassIPI3K，但作用相反。接受上述信号的自噬蛋白：目前都把焦点集中在beclin1（酵母同源物为atg6），能与多种蛋白结合，如Vps34（Cla

6、ssIIIPI3K的催化亚单位），mTOR，BCL-2和BCLXL蛋白等，更多介绍请参阅OMIM：/www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/dispomim.cgi?id=604378。在【动态版】需注意的是，beclin-1是一个多功能蛋白，除了接受自噬信号，它还可以接受很多其它的信号对自噬进行调节，越来越多的证据表明，beclin-1可能是自噬的“守门人”。自噬体的发生：目前认为，自噬体的膜不是直接来源于高尔基体或内质网，而是在胞浆中重新生成的，但具体的机制尚不清楚。当beclin-1被活化后，胞浆中先形成很多个membranesource（自噬体膜发生中心），在它们不断扩

7、展的过程中（phagophore到autolysosome），VMP1蛋白由内质网和高尔基体转位到自噬体膜上（VMP1又叫TMEM49，已知唯一与自噬有关的跨膜蛋白），同时，MAP1-LC3由胞浆型（即LC3-I）转位到自噬体膜（即LC3-II），LC3这一转变过程可被WesternBlot和荧光显微镜检测到，现已成为监测自噬体形成的推荐方法。自噬与细胞死亡的关系：有必要说明一下的是，细胞死亡是一个非常复杂的过程，为了研究方便，需进行分类，但我们思考时不要局限于这些人为的分类，而应注重于现象本身来研究其背后的机制。一直以来人们从不同角度、用不同方法来观察细胞的死亡，并把细胞的死亡方式分为2类：

8、坏死和凋亡，因为两者有着明显的区别，其中最主要的区别之一就是细胞膜的通透性坏死细胞的细胞膜丧失了完整性，内容物被释放出来，染料可自由进入细胞，而凋亡细胞保持完整，无内容物释放，染料也被排斥。很多实验亦根据这一原理来设计以区分坏死和凋亡，这将在后面一一介绍，如同刚刚说明的那样，这些实验只能说明细胞膜的通透性（必要条件，不是充分必要条件），而不能用来证实坏死细胞或凋亡细胞。一般认为坏死是被动的，不可控的，而凋亡是主动的，可控的。为了强调这一点，凋亡被定义为程序性细胞死亡（programcelldeath，PCD）。但无论是坏死还是凋亡，都是一个过程，是需要时间的（尤其是凋亡，从启动到完成，细胞要执

9、行很多反应），而且细胞死亡后都有“尸体”。在研究自噬与凋亡的关系时，人们发现细胞死亡前胞浆中存在大量的自噬体或自噬溶酶体，但这样的细胞缺乏凋亡的典型特点，如核固缩（pyknosis）,核破裂（karyorhexis）、细胞皱缩（shrinkage）、没有凋亡小体的形成等，被称为自噬样细胞死亡（autophagiccelldeath，ACD），它是一种新的细胞程序性死亡，为了与凋亡区别，被命名为TypeIIcelldeath，相应的，凋亡为TypeIcelldeath，坏死为TypeIIIcelldeath。尽管这样，但对于自噬是否是细胞死亡的直接原因目前还存在很大的争议。到底是Celldeat

10、hbyautophagy（自噬引起死亡）还是Celldeathwithautophagy（死亡时有自噬发生，但不是直接原因）？对此，自噬研究领域“大牛”级专家LevineBeth在一篇nature的Review中表达了自己的观点。由于在形态学上2者无明显区别，但通过阻断自噬，观察细胞的结局可区分开来：Celldeathautophagy细胞存活，而Celldeathautophagy细胞死亡。Autophagiccelldeath：thestoryofamisnomer.pdf自噬与肿瘤的关系：与凋亡（在肿瘤细胞中一般都存在缺限）不同，自噬是被优先保留的。无论是肿瘤细胞还是正常细胞，保持一种基

11、础、低水平的自噬活性是至关重要的。因为细胞中随时产生的“垃圾”（破损或衰老的细胞器、长寿命蛋白质、错误合成或折叠错误的蛋白质等等）都需要及时清除，而这主要靠自噬来完成，因此，自噬具有维持细胞自稳的功能；如果将自噬相关基因突变失活，如神经元会发生大量聚集蛋白，并出现神经元退化。同时，自噬的产物，如氨基酸、脂肪酸等小分子物质又可为细胞提供一定的能量和合成底物，可以说，自噬就是一个“备用仓库”。如Atg-5缺陷的小鼠在出生后喝上第一口奶之前就会饿死。更重要的是，自噬活性可在代谢应激（饥饿、生长因子缺乏、射线、化疗等）时大大增强，表现为胞浆中迅速涌现大量自噬体，这一现象被称为“自噬潮”（autopha

12、gicflux），广泛用于自噬形成的监测。自噬潮为细胞度过危机提供了紧急的营养和能量支持，有利于细胞的存活。鉴于自噬的上述作用，自噬可为肿瘤细胞带来几大好处：1）肿瘤细胞本身就具有高代谢的特点，对营养和能量的需求比正常细胞更高，但肿瘤微环境往往不能如意，如肿瘤发生初始期到血管发生之前、肿瘤长大发生血管崩塌时、肿瘤细胞脱离原发灶游走时等都会出现营养不足或供应中断，而此时提高自噬活性可以有助于度过这一危机。2）当化疗、放疗后，肿瘤细胞会产生大量的破损细胞器、损坏的蛋白质等有害成分，而此时提高自噬活性可及时清除这些有害物质，并提供应急的底物和能量为修复受损DNA赢得时间和条件。由于自噬减少了肿瘤细胞

13、在代谢应激时发生坏死的机会，而对于肿瘤细胞群体而言，需要一部分细胞发生坏死，以引发适度的炎症（有利于血管的长入、吸引免疫细胞分泌生长因子等）。研究发现，很多类型的肿瘤在代谢应激时会“组成性”活化PI3K信号以抑制自噬（由于凋亡通路已受阻，抑制自噬会促进坏死），但具体机制尚不清楚。参考文献：Autophagyandtoll-likereceptors：Anewlinkincancercells.pdfAutophagyfightsdiseasethroughcellularself-digestion.pdfRoleandregulationofautophagyincancer.pdfRole

14、ofautophagyincancer.pdfAutophagyandCellDeath：NoLongeratOdds.pdfAutophagyandcancer：Dynamismofthemetabolismoftumorcellsandtissues.pdf自噬的研究方法：正常培养的细胞自噬活性很低，不适于观察，因此，必须对自噬进行人工干预和调节，经报道的工具药有：（一）自噬诱导剂1）BredeldinA/Thapsigargin/Tunicamycin：模拟内质网应激2）Carbamazepine/L-690，330/LithiumChloride（氯化锂）：IMPase抑制剂（即Ino

15、sitolmonophosphatase，肌醇单磷酸酶）3）Earles平衡盐溶液：制造饥饿4）N-Acetyl-D-sphingosine（C2-ceramide）：ClassIPI3KPathway抑制剂5）Rapamycin：mTOR抑制剂6）XestosponginB/C：IP3R阻滞剂（二）自噬抑制剂1）3-Methyladenine（3-MA）：（ClassIIIPI3K）hVps34抑制剂2）BafilomycinA1：质子泵抑制剂3）Hydroxychloroquine（羟氯喹）：Lysosomallumenalkalizer（溶酶体腔碱化剂）除了选用上述工具药外，一般还需结合

16、遗传学技术对自噬相关基因进行干预：包括反义RNA干扰技术（Knockdown）、突变株筛选、外源基因导入等。细胞经诱导或抑制后，需对自噬过程进行观察和检测，常用的策略和技术有：1）观察自噬体的形成由于自噬体属于亚细胞结构，普通光镜下看不到，因此，直接观察自噬体需在透射电镜下。Phagophore的特征为：新月状或杯状，双层或多层膜，有包绕胞浆成分的趋势。自噬体（AV1）的特征为：双层或多层膜的液泡状结构，内含胞浆成分，如线粒体、内质网、核糖体等。自噬溶酶体（AV2）的特征为：单层膜，胞浆成分已降解。（autophagicvacuole，AV）2）在荧光显微镜下采用GFP-LC3融合蛋白来示踪自

17、噬形成：由于电镜耗时长，不利于监测（Monitoring）自噬形成，人们利用LC3在自噬形成过程中发生聚集的现象开发出了此技术。无自噬时，GFP-LC3融合蛋白弥散在胞浆中；自噬形成时，GFP-LC3融合蛋白转位至自噬体膜，在荧光显微镜下形成多个明亮的绿色荧光斑点，一个斑点相当于一个自噬体，可以通过计数来评价自噬活性的高低。3）利用WesternBlot检测LC3-II/I比值的变化以评价自噬形成：自噬形成时，胞浆型LC3（即LC3-I）会酶解掉一小段多肽，转变为（自噬体）膜型（即LC3-II），因此，LC3-II/I比值的大小可估计自噬水平的高低。（Note：LC3抗体对LC3-II有更高的

18、亲和力，会造成假阳性。方法2和3需结合使用，同时需考虑溶酶体活性的影响。）4）检测长寿蛋白的批量降解：非特异5）MDC（Monodansylcadaverine，单丹磺酰尸胺）染色：包括自噬体，所有酸性液泡都被染色，故属于非特异性的。6）CellTrackerTMGreen染色：主要用于双染色，但其能染所有的液泡，故也属于非特异性的。在研究自噬相关蛋白时，需对其进行定位。由于自噬体与溶酶体、线粒体、内质网、高尔基体关系密切，为了区别，常用到一些示踪蛋白在荧光显微镜下来共定位：Lamp-2：溶酶体膜蛋白，可用于监测自噬体与溶酶体融合。LysoTrackerTM探针：有红或蓝色可选，显示所有酸性液

19、泡。pDsRed2-mito：载体，转染后表达一个融合蛋白（红色荧光蛋白+线粒体基质定位信号），可用来检测线粒体被自噬掉的程度（Mitophagy）。MitoTraker探针：特异性显示活的线粒体，荧光在经过固定后还能保留。Hsp60：定位与线粒体基质，细胞死亡时不会被释放。Calreticulin（钙网织蛋白）：内质网腔【Note：这些蛋白均为胞浆蛋白，爬片或胰酶消化的细胞在做免疫荧光前需先透膜（permeablize），可采用0.1%SDS处理】自噬与细胞死亡经常需一起考虑，下面介绍一些检测细胞死亡的方法：（1）mdissipation（线粒体跨膜电位的消失）：TMRM发红色荧光，DiOC

20、6（3）发绿色荧光。（2）PhosphatidylserineExternalization（磷脂酰丝氨酸外翻）：AnnexinV-FITC（绿色）染细胞膜。（3）检测线粒体产生的ROS：无荧光的HE（hydroethidine，氢化乙啶）可被ROS氧化为EthBr（ethidiumbromide，溴乙啡啶），发红色荧光。NAO（nonylacridineorange，烷化吖啶橙，可发荧光）能与非氧化的cardiolipin（心磷脂，可被ROS氧化）反应而失去荧光。（4）线粒体IMS蛋白的释放：AIF，细胞色素c，分别用荧光二抗染色。（5）Capase3a染色：用荧光二抗染色，胞浆弥散分布。（

21、6）细胞膜完整性检测：DAPI（蓝色）、Hoechst33342或PI（红色）染核。胞膜完整的细胞（活细胞和早中期凋亡细胞）排斥，可联用annexinV。【如何用实验区分Celldeathbyautophagy和Celldeathwithautophagy】第一步：利用上述方法证实细胞死亡第二步：证实细胞死亡前发生了自噬第三步：在形态学上区别开“自噬样死亡”与凋亡第四步：利用遗传学手段（反义RNA干扰Knockdown掉Atg基因或hVps34）或工具药抑制自噬第五步：细胞存活则为Celldeathbyautophagy，反之，细胞死亡则为Celldeathwithautophagy。Meth

22、odsforAssessingAutophagyandAutophagicCellDeath.pdfCytosolicLC3RatioasaSensitiveIndexofMacroautophagyinIsolatedRatHepatocytesandH4-II-ECells.pdf自噬领域的牛人一BethLevine/www.utsouthwestern.edu/utsw/cda/dept131456/files/181499.html以autophagy命名的杂志自噬体的检测自噬体的检测对研究自噬尤为重要以透射电子显微镜下超微结构的形态学检测（俗称检测自噬体的金指标）。在透射电镜下可见损

23、伤的细胞器如线粒体的肿胀变性，其周围出现空泡状双层膜样结构、继而双层膜环绕成自噬体、进而与溶酶体融合，消化，也可见自噬溶酶体内最终不能降解的残体等。自噬体膜标志性蛋白质的检测。自噬体膜上标志性蛋白质有Apgl2-Apg5结合体和微管相关蛋白1的轻链3（LC3）。Apgl2和Apg5在翻译后就像单个分子一样共价结合在一起，它定位在自噬体双层隔离膜的整个延长阶段。LC3是酵母菌自噬基因（Apg7/Apg8）在哺乳动物中的同源物，和前者相比，LC3除了定位在自噬体分隔膜上，也一直以和磷脂酰乙醇胺即脑磷脂（PE）结合的形式（LC3-PE）存在于自噬体形成各阶段的内外膜上，在自噬溶酶体膜上也可见。通过与

24、绿色荧光蛋白（GFP）结合成Apgl2-Apg5-GFP、LC3-GFP，即可实现对自噬体的检测。单丹（磺）酰戊二胺（MDC）染色法。是自噬发生过程中分析分子水平机制的一种特异的检测自噬体方法。自噬体形成依赖的第二个泛素样结合系统（Apg8）是位于自噬囊泡膜上与IVIDC特异结合的生化标志，通过荧光染色，在荧光显微镜下可见核周区域阳性显色。间接自噬体检测法。自噬溶酶体及其不能降解的产物残体的检测。自噬体和溶酶体融合后，除上述的LC3-GFP法检测外，还有吖啶橙染色法。它是一种荧光染料作为非极性反胶态分子团的分子探针，在自噬溶酶体内酸性磷酸酶活性增强下显著着色。对残体的检测主要是对脂褐素颗粒的显

25、微观察。自噬的抑制根据自噬形成的过程，自噬的抑制也分为不同的阶段，包括自噬的起始阶段，自噬泡和溶酶体融合阶段，以及溶酶体内的降解阶段。目前常用的一些抑制药物如下：（1）对自噬体形成的抑制：主要是PI3K通路的抑制剂（如3-MA,Wortmannin，LY294002等），这些药物均可干扰或阻断自噬体形成。3-甲基腺嘌呤（3-Methyladenine,3-MA）是磷脂酰肌醇3激酶的抑制剂，可特异性阻断Autophagy中自噬体的形成，被广泛用作Autophagy的抑制剂。另外，渥曼青霉素（Wortmannin）、LY294002也可用作Autophagy的抑制剂。（2）对自噬体与溶酶体融合的抑

26、制：对自噬体与溶酶体融合过程进行阻断也能起着抑制自噬的作用，这些药物有巴伐洛霉素A1、长春碱、诺考达唑等。巴伐洛霉素A1（BafilomycinA1）是一种来源于灰色链霉菌的大环内酯类抗生素，分子式C35H58O9，是空泡型H+-ATP酶的特异性抑制剂，具有抗菌、抗真菌、抗肿瘤等作用。当突触小泡经历胞外分泌时，巴伐洛霉素A1可以避免小泡重新酸化。有研究表明，在已发生自噬的肿瘤细胞中加入巴伐洛霉素A1，可使蛋白降解被抑制，自噬体增多而自噬溶酶体数目减少，并且自噬体中的酸性磷酸酶的活性也明显降低，从而证明其阻断了自噬体与溶酶体的融合过程。这种阻断是可逆的，在去除了药物作用后，自噬体仍可以与溶酶体融

27、合形成自噬溶酶体，继续自噬进程。（3）对溶酶体降解的抑制:自噬体与溶酶体融合后最终被溶酶体中的水解酶水解，它首先经过囊泡酸化，达到所需的PH值后经多种蛋白酶作用使囊内容物降解，降解产物在细胞内再循环利用。对溶酶体的降解进行抑制，使得被降解的囊泡内容物大量蓄积于溶酶体内，而不能释放出来进入细胞内再循环利用，这也同样起着抑制自噬的作用。因此，蛋白酶抑制剂，如E64d、PepstatinA等，在抑制溶酶体降解的过程中发挥着自噬抑制剂的作用。E64d和PepstatinA均属于蛋白酶抑制剂，二者以1：1的比例联用可以抑制自噬。有研究表明，在结肠癌细胞系中联用E64d及PepstatinA，可明显抑制溶

28、酶体的降解从而阻断自噬的进展，而自噬体的形成并没有受到明显影响。大自噬（Macroautophagy）即我们说的自噬（autophagy）微自噬（Microautophagy）：是指溶酶体主动、直接吞噬胞浆成分的一种方式。分子伴侣介导的自噬（Chaperone-mediatedautophagy，CMA）：一些分子伴侣，如hsc70，能帮助未折叠蛋白转位入溶酶体。另外，几个与phage相关的概念：吞噬（phagocytosis）：细胞主动吞掉胞外的细菌、碎片、或其它细胞。吞饮（pinocytosis）：胞外的液体异噬（heterophagy）：吞噬、吞饮的统称，强调所吞内容物来自细胞外，它们都是单层膜的液泡。自噬体（autophagosome）形成后，可与吞噬泡或吞饮泡融合，然后再与溶酶体融合，但这一过程的证实还需更多的实验来支持。自噬体增多，也就是“自噬潮”出现的原因一是形成增多，二是与溶酶体融