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1、2010年11月14日/接收日期:2011年2月28日/在线发布时间:2011年4月13日 日本水产科学2011年 摘要:测定大黄及其主要生物活性化合物对嗜水气单胞菌的抑菌性能。采集不同种植区的大黄,对其主要生物活性化合物(蒽醌衍生物)进行超高效液相色谱(UPLC)测定;大黄的抗菌活性最低抑菌浓度(MIC)与蒽醌含量(r = 0.9306,P 99)由科密欧化学试剂公司(中国上海)提供。离心柱基因组DNA提取试剂盒购自加拿大Bio Basic公司。细胞PI凋亡检测试剂盒购自中国南京注册机生物技术有限公司。溴化乙锭(EB)是购自Amersco公司(梭伦,OH,USA)。超高效液相色谱级甲醇购自S

2、igma-Aldrich公司(圣路易斯,密苏里州,美国)。其它分析级试剂均由中国上海国药集团化学试剂有限公司提供。蒽醌类化合物的提取 干燥大黄研磨成细粉,并通过筛子(60目)通过。大黄粉末(10.0g)用100ml 80乙醇混合,并进行萃取,在80下加热2h,并重复三次。合并提取液,过滤,然后用旋转蒸发器在40下减压浓缩,并用冷冻干燥机冷冻干燥(LGJ-10D;四环科学仪器(北京)有限公司,中国)。然后将粗提取物样品储存于4冰箱直至使用。超高效液相色谱分析 超高效液相色谱(UPLC)分析使用配备有Waters的Acquity PDA检测器(美国Waters公司),并采用Acquity UPLC

3、TM BEH C18柱(100mm2.1mm,颗粒尺寸1.7m的超高效液相色谱仪;美国Waters公司)。柱箱温度固定在45。洗提液为:A,水0.1甲酸,B,乙腈/甲醇(20:80,V / V)。梯度程序为:10-30B(15min),30-100B(18min)以0.3/min恒定流动。当蒽醌化合物的峰值在280nm处时进行监测。在线记录从200到600nm的UPLC分析紫外可见吸收光谱。嗜水气单基因组DNA的提取 使用离心柱基因组DNA分离试剂盒从嗜水TPS-30中提取DNA。提取DNA的纯度通过吸光度比A 260/A 280(OD260/OD280 = 1.83)进行检查。DNA的浓度用

4、UV-2100分光光度计(信息中心)14在260nm处的吸光度(A 260 = 1.0外径为50g/ml)来确定。抗菌活性(MIC) 大黄提取物,其主要成分(蒽醌衍生物)的抗菌活性通过使用双重微量肉汤稀释法15测定。将生长至对数中期的肉汤在37下培养16小时,采用两倍稀释法将80l的测试样品转移到试管中,使最终浓度分别为6400,3200,1600,800,400,200,100,50,25,12.5,6.25和0g/ml,这就是以往装满1900l的LB培养基。细菌悬浮液(20l)加到每个试管中形成单位为106(CFU)/ ml的最终浓度。将试管在37下放置24小时。培养后,微生物的生长是通过

5、估算浊度的增加来确定的,用UV-2100分光光度仪在630 nm处测量MIC。计算菌株的完全抑制的最高稀释度。所有分析一式三份,并将各自的中值用于数据分析。细菌膜通透性 嗜水气单胞菌TPS-30,生长至对数中期,在37培养16小时,并收集,洗涤,并重新悬浮于1ml的去离子水中(吸光度在630nm处调节至0.2)。 将大黄素样品溶液2试管(10l)在37中放置任意时间。然后,将细胞悬浮液以10000rpm离心10min,并且将上清液稀释至100倍16。释放钾离子的量即由原子吸收光谱仪(美国Varian公司光谱学与机管局220)测定。透射电子显微镜 指数细菌与2 MIC大黄素在37下培养4小时后,

6、通过离心收集,去离子水洗涤两次。处理后,将细菌沉淀物固定,固定在2.5的戊二醛缓冲液中1小时。然后将细胞固定在1的四氧化锇缓冲液中1h,用1乙酸双氧铀将整块染色,脱水,分级乙醇浓度,并随后嵌入骨刺树脂。所用的缓冲液为0.1M的二甲胂酸钠(pH7.4)。制备聚乙烯醇缩甲醛的铜网切片,并用2醋酸双氧铀和柠檬酸铅17染色。青霉素作为阳性对照,和双蒸水作为阴性对照。正常工作条件下,用透射电子显微镜(H-7000;日本日立公司)进行观察。流式细胞仪分析 大黄素治疗后膜的完整性是使用碘化丙啶的流式细胞术分析 (PI)为探针 18 的。嗜水TPS-30,生长至对数期和大黄素在2 MIC的浓度混合4h,用磷酸

7、盐缓冲盐水(PBS)在37下洗涤细胞3次,并重新悬浮于106 CFU / ml的缓冲液中。37温度条件下,在大黄素处理过的细胞培养中的PI溶液(50g/ ml的终浓度)处理30min,随后多次用PBS洗涤除去未结合的染料。PI是在488nm处使用氩激光,将得到的荧光发射通过一个660-nm的长通滤光器收集。青霉素作为阳性对照,双蒸水作为阴性对照。使用FACScan仪器(刀魂,BO,USA)进行流式细胞分析。荧光测量 大黄素在没有和嗜水基因结合时存在的荧光光谱测量,使用F-7000荧光光度计(日本日立公司),在室温下激发波长为290nm(KEX = 290nm)。从360至560nm的荧光光谱的

8、变化,测定为增加浓度(0,5.0,10.0和20mg/mL),加入大黄素与固定浓度(200mg/mL)19的Tris-HCl缓冲液(10mM,pH 7.2)的样品作为空白溶液,可用于所有样品。有竞争力的大黄素约束力和EB细菌脱氧核糖核酸竞争性结合的荧光测定,使用F-7000荧光光度计(日本日立公司)。将DNA溶解于2ml的Tris-HCl缓冲液(10mM,pH 7.2)中,将10g/ ml,10l EB(2M)溶液加入到DNA溶液后,在EB-DNA溶液置于37的恒温水中10分钟。不同浓度的大黄素(0,50,100,和200g/ml)加入到EB-DNA溶液,30分钟后,用荧光光谱测定各试验溶液,

9、激发535nm处,记录从550到720 nm的20,21光谱。此试验是在一个1厘米长度的石英池中进行。KI荧光猝灭 本实验是根据由郭某人19和宋某等22人描述的方法进行并稍做修改。大黄素的浓度调整为200g/ml;碘化钾(KI)溶解在Tris-HCl缓冲液(10mM,pH 7.2)中,最终至浓度为0,1,2,4,6,8,和10mmol的不同浓度。然后将不同浓度的碘化钾加入含有或不含DNA(10 g/mL)的大黄素溶液中。发射360至560nm的光谱并固定290nm激发波长。数据绘制按照Stern-Volmer方程23 F0/F=1+KSVQ;其中F0和F分别是在荧光强度下DNA的不存在或存在,

10、 KSV是斯特恩涹莫猝灭常数,Q是浓度的淬灭剂。结果大黄蒽醌类化合物的测定 大黄粗提取物的超高效液相色谱分析结果示于表1和图2。从不同种植区采集的5种大黄蒽醌类化合物的总含量范围为5.870.30至24.860.81mg/g。大黄的抗菌活性(MIC)与蒽醌含量相关(r = 0.9306,P 大黄素甲醚=大黄酚。考虑到抗菌活性和大黄素的含量,大黄素被选为该类抗菌机理的候选蒽醌衍生物。表2 五种蒽醌对嗜水气单胞菌的抗菌活性大黄素对嗜水细菌膜的透过性,通过大黄素处理后的细胞释放的钾离子的量的影响作为测定。当细菌细胞膜被破坏,在一定程度上,小的离子,如钾和磷酸倾向于滤出,我们可以监测从细胞中释放的胞质

11、成分。图3显示了细菌细胞培养后钾流出,诱导后钾离子外流显著。而增加孵育时间0.54h,当时间进一步增加,对轻微的变化进行了观察。为钾离子经过处理后释放量增加提供了证据,这就说明大黄素可能作用于细胞膜增加通透性,进而引起细胞离子泄漏。图3 大黄素对K离子嗜水TPS-30释放量的影响。细胞用大黄素预定次数处理,测定细胞中K离子的释放相对量在透射电子显微镜下观察,用大黄素处理过的细菌细胞的形态学变化。电子显微照片见图4。未经处理细菌的对照细胞保持完整,并呈现出光滑的表面(图4a)。而且,培养4h后,该细胞表现出重要的形态变化,例如细胞壁和膜破坏,而且观察到细胞胞质内容物泄漏(图4b,c)中,它类似于在先前的研究25。图4 嗜水TPS-30大黄素处理(b)或青霉素(C,阳性对照),以及未处理的透射电子显微镜观测(一)调查大黄素的抗菌作用是否作用于损伤的质膜中,细胞与大黄素和PI。 PI是一种荧光染料,可嵌入到核酸的可行性标记,这是为了穿透细胞并污染其丧失完整性的膜 26。检测单个细胞内部的PI是通过流式细胞仪分析。如图5,而

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