1、分别取60干燥至恒重的当归及黄芪药材细粉5份,每份约0.50g,精密称定,置索氏提取器中,用80%乙醇回流提取2小时,残渣挥干溶剂后,再继续以水分别回流提取1.0h、2.0h、3.0h、4.0h、5.0h,反复洗至250ml量瓶中,加水至刻度,摇匀,精密量取1ml,置10ml具塞干燥试管中,采用改良后的苯酚-硫酸法测定吸光度,计算含量,结果见表1-1。表1-1 水提不同提取时间对当归含量测定的影响结果样品提取时间(h)当归多糖含量(%)黄芪多糖含量(%)11.07.5685.50122.08.5996.51133.08.5836.60044.08.5946.58955.08.5806.590从
2、表1-1可知,水提提取时间为2.0h时,药材含量达到最大值且保持恒定,延长提取时间药材含量变化不大,故选择提取时间为2.0h。2.1.4 供试品溶液的制备 分别取60干燥至恒重的当归及黄芪药材细粉约0.5g,精密称定,置索氏提取器中,用80%乙醇回流提取1小时,残渣挥干溶剂后,再继续以水回流提取2小时,反复洗涤残渣及烧瓶至250ml量瓶中,定容至刻度,摇匀,备用。2.1.5 最大吸收波长选择 取2.1.1项下对照品溶液,在200nm-700nm波长间进行紫外吸收光谱扫描,最大吸收波长为490nm,确定选择490nm作为检测波长。2.1.6 标准曲线的制备 精密量取对照品溶液1.0ml,2.0m
3、l,3.0ml,4.0ml,5.0ml,6.0ml,分别置50ml量瓶中,加水至刻度,摇匀。精密量取上述各溶液1ml,置具塞试管中,分别加5苯酚溶液0.6ml,混匀,迅速加入硫酸3.0ml,摇匀,于90水浴中15分钟,取出,置冰水浴中15分钟,取出,以相应试剂为空白,照紫外可见分光光度法(附录A),在490nm的波长处测定吸光度,结果见表1-2。以吸光度为纵坐标,葡萄糖取样量为横坐标,绘制标准曲线,可得回归方程:y=0.0045x-0.0011,r=0.9995(n=6)。葡萄糖在24.24145.44 g范围内,与吸光度呈良好的线性关系,结果见图1-1。表1-2 葡萄糖线性范围考察取样量(g
4、)吸光度24.240.11548.480.20972.720.33096.960.433121.200.554145.440.655图1-1 葡萄糖标准曲线Fig 1-1 Standard Curve of glucose2.1.6 精密度试验 精密量取同一供试品溶液,按标准曲线项下方法操作测吸光度,重复测定6次,求得吸光度值的RSD值为0.33%。结果见表1-3,说明仪器的精密度符合要求。表1-3 精密度试验结果测定次数吸光度A0.3870.3860.3890.3886RSD(%)0.332.1.7 稳定性试验 精密量取同一供试品溶液,按标准曲线项下方法操作,每10分钟测定一次吸光度,到1小
5、时后改为30分钟测一次,求得多糖含量的RSD值为1.02,结果见表1-4,测定值在120分钟内保持稳定。以下吸光度的测定均在120分钟内完成。表1-4 稳定性试验结果测定时间(min)多糖含量()8.491108.380208.602308.447408.647508.624608.536901208.5131.022.1.8 重现性试验 取60干燥至恒重的当归药材细粉6份,精密称定,按2.1.3项下方法制备供试品溶液,按标准曲线项下方法操作分别测定吸光度,计算多糖含量,求得多糖含量值RSD值为1.68,结果见表1-5,表明方法重现性良好。表1-5 重现性试验结果多糖含量(%)8.7108.8
6、958.5058.6098.519平均含量8.6401.682.1.9 加样回收率试验 取上述已知多糖含量的当归药材细粉6份,每份约0.125g,精密称定,精密加入浓度为2.111 mg/ml标准葡萄糖对照品溶液5 ml按2.1.3项下方法制备供试品溶液,按标准曲线项下方法操作分别测定吸光度,计算多糖含量,计算回收率,结果见表1-6。平均回收率为99.12%,RSD值1.96%。结果表明:本法回收率较好,方法可行。表1-6 加样回收率试验结果取样量(g)样品含量(mg)对照品加入量(mg)实测量(mg)回收率()平均回收率()0.124210.7010.5620.9797.250.125610
7、.8221.61102.180.125710.8321.3399.4399.121.960.125410.8021.2298.670.125510.8121.39100.190.125010.7721.0196.972.1.10 当归药材中多糖含量测定 取60干燥至恒重的当归药材细粉三份,每份约0.25g,精密称定,按2.1.3项下方法制备供试品溶液,按标准曲线项下方法操作测定吸光度,计算多糖含量,求得当归药材中平均多糖含量为8.58,结果见表1-7。表1-7 当归药材中多糖含量测定结果平均多糖含量()0.25018.440.24988.548.580.25008.762.2 黄芪药材中多糖含
8、量测定方法本试验采用比色法对药材中的含量进行测定,建立了含量测定方法。2.2.1 对照品溶液的制备 精密称取经105干燥至恒重的无水葡萄糖对照品0.03260g,置100ml量瓶中,加水溶解并稀释至刻度,摇匀,即得(每1ml中含无水葡萄糖0.3260mg)。2.2.2 0.2%蒽酮-硫酸溶液的配制 称取蒽酮粉末0.2g,置100ml棕色量瓶中,加硫酸至刻度,摇匀,即得。2.2.3 供试品溶液的制备67 取黄芪药材粗粉约1g,精密称定,置圆底烧瓶中,加水100ml,加热回流1.5h,用脱脂棉滤过,再重复提取2次,三次滤液合并,浓缩,移至100 ml量瓶中,加水至刻度,摇匀。精密量取2 ml,加乙
9、醇10 ml,搅拌,离心,取沉淀加水溶解,置25 ml量瓶中,并稀释至刻度,精密量取2 ml,置10ml具塞干燥试管中,备用。2.2.4 供试品溶液制备方法的考察与确定 2.2.4.1 加水量的考察 取黄芪药材粗粉4份,每份约1g,精密称定,置圆底烧瓶中,分别加水50ml、100ml、150ml、200ml,加热回流1h,用脱脂棉滤过,滤液浓缩,移至100 ml量瓶中,加水至刻度,摇匀。精密量取2 ml,加乙醇10 ml,搅拌,离心,取沉淀加水溶解,置25ml量瓶中,并稀释至刻度,精密量取2 ml,测定吸光度,计算含量,结果见表1-8和图1-2。表1-8 不同溶剂用量对含量测定的影响结果加水量
10、(ml)4.8121007.8741507.7022007.774图1-2不同溶剂用量对含量测定的影响结果从表1-8和图1-2可知,加水量为100ml时,药材含量达到最大值且保持恒定,故选择加水量为100ml。2.2.4.2 提取时间的考察 取黄芪药材粗粉5份,每份约1g,精密称定,置圆底烧瓶中,加水100ml,分别加热回流0.5、1.0、1.5、2.0、2.5 h,用脱脂棉滤过,滤液浓缩,移至100 ml量瓶中,加水至刻度,摇匀。精密量取2 ml,加乙醇10 ml,搅拌,离心,取沉淀加水溶解,置25ml量瓶中,并稀释至刻度,精密量取2 ml,测定吸光度,计算含量,结果见表1-9和图1-3。表
11、1-9 不同提取时间对含量测定的影响结果0.57.5988.1251.58.5972.58.585图1-3 不同提取时间对含量测定的影响结果从表1-9和图1-3可知,提取时间为1.5h时,药材含量达到最大值且保持恒定,延长提取时间药材含量变化不大,故选择提取时间为1.5h。2.2.4.3 提取次数的选择 取黄芪药材粗粉5份,每份约1g,精密称定,置圆底烧瓶中,加水100mll,加热回流1.5h,分别再重复提取0、1、2、3、4次,用脱脂棉滤过,滤液浓缩,移至100 ml量瓶中,加水至刻度,摇匀。精密量取2 ml,加乙醇10 ml,搅拌,离心,取沉淀加水溶解,置25ml量瓶中,并稀释至刻度,精密量取2 ml,测定吸光度,计算含量,结果见表1-10和图1-4。表1-10 不同提取次数对含量测定的影响结果提取次数(次)7.8698.75010.1309.9739.702图1-4 不同提取次数对含量测定的影响结果从表1-10和图1-4可知,次数对多糖提取有影响,随着次数增加多糖含量上升,提取次数为三次时,药材含量达到最大值且保持恒定,增加提取次
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