1、6.-8 C, 12000r/m高速冷冻离心分离杂蛋白与目的蛋白;7.透析法除残余有机溶剂小分子;8.凸形梯度洗脱和 DEAE-52阴离子交换柱层析纯化目的蛋白 CK9.pH比色法测定酶活性;10.Aaso光吸收法测定酶浓度;11.酶的动力学参数(Ka, Vmax)的测定;12.CK的DTNB修饰反应动力学;13.酶表面可反应巯基数和总巯基数的测定;14.SDS-PAGE定亚基的分子质量和 CK纯度;15.凝胶层析测定CK分子质量。实验原理:肌酸激酶通常存在于动物的心脏、肌肉以及脑等组织的细胞浆和线粒体中,是一个与细胞内能量运转、肌肉收缩、 ATP再生有直接关系的重要激酶。肌酸激酶可逆地催化肌
2、酸与ATP之间的转磷酰基反应:CKCH3、脑型(BB)、杂化型(MB)和线粒体BB型主要存在于脑细胞中, MB型主型(MiMi)。MM 型主要存在于各种肌肉细胞中,要存在于心肌细胞中,而 MiMi型存在于线粒体内膜上。前 3种肌酸激酶为胞浆肌酸激酶。细胞在线粒体上发生氧化磷酸化,产生 ATP。但动物体内贮存能量的高能物质不是ATP而是磷酸肌酸。能量贮存和运送是通过磷酸肌酸穿梭机制 (creatine phosphaate shuttle)来完成的,这个机制包含了肌酸激酶的线粒体型和肌肉型两种同工酶。氧化磷酸化产生 的ATP在ATP-ADP转位酶(translocase)的帮助下被直接送到位于线
3、粒体内膜外侧的线粒 体型肌酸激酶所在部位 (I),线粒体型肌酸激酶将 ATP内的高能磷酸键转移到肌酸上,变成ADP和高能物质磷酸肌酸(H)。磷酸肌酸在胞内扩散到达肌原纤维 (myofibrils),肌原纤维的M-区带上结合了肌肉型肌酸激酶(川),这样,当肌肉收缩时,需要大量的ATP供给能量,肌肉型肌酸激酶催化磷酸肌酸转化为 ATP,而反应产生的肌酸再扩散回线粒体,重新磷酸化(W)。肌酸激酶同工酶具有重要的生理功能和医学应用价值。肌肉型肌酸激酶分子是有两个相同的亚基组成的二聚体。在催化过程中,该酶的最 小功能单位是亚基,亚基在二聚体中独立地起催化作用。根据目前已经测定的兔、人、 鸡、鼠肌酸激酶的
4、一级结构, M型亚基由387个氨基酸残基组成,分子质量为 43 OOOu左右,分子内有 8个巯基,但无二硫键。天然的肌酸激酶分子是一个紧密的球状结构。根据旋光色散研究的结果,这个酶的亚基大约有 25 %-30 %的a -螺旋,15 %左右的3-折叠。肌酸激酶的纯化方法有许多种,本实验采用的提纯方法为改进的 Kuby法。该酶的测活方法也有许多种,本实验采用的是 pH-比色法。肌酸激酶的测活方法(pH-比色法):肌酸激酶在催化正向反应时,随着 ATP向肌酸上转移磷酰基的同时,生成等摩尔的H +,其最适pH为7.5-9.0,在此范围内测定 H+的生成速度,可以作为酶活力的指标。 本实验采用百里酚蓝作
5、为 pH指示剂,在分光光度计上通过 pH-比色法测定肌酸激酶的活性,即在597nm波长下,监测吸光度的变化。在比色皿中酶催化反应生成的 H+使溶液的pH值降低,底物溶液的颜色逐渐由深紫红色变为黄绿色, 吸光度值A597不断降低。在pH-比色法中,肌酸激酶测活的底物溶液需要新配。配制方法见试剂部分。测活时,取1.0ml的底物溶液置于微量比色皿中,加入 10酶溶液,迅速盖盖,混匀后立即监测597nm处光吸收的变化,每15秒或30秒读一次吸光度值(A 597 ),共读取 8个数据点,用 A597对时间作图,从图中求出每 min吸光度值的变化,即 A597。并按 下式计算酶的比活力(U):U = 1.
6、3 A597VA 稀释倍数 (mol / (min *mg)C 2b其中:1.3为吸光度的变化换算成 H +的系数。Va =1.0ml (底物溶液),Vb =0.01ml (加入的酶溶液)。C:加入酶溶液的浓度。酶溶液浓度C的测定按其在280nm处的吸光度值来确定,其百分吸光 系数为 E1% 1cm=8.8。即: C=如10稀释倍数8.8四、 试剂:1.KCI : 0.01mol/L, 200ml。 (0.15g KCI 加水至 200ml)2.NH4OH : 1.7mmol/L , 1000ml。(取 0.12ml 浓氨水,加 H2O 至 1000ml)3.柠檬酸铵:0.05mol/L ,
7、pH9.0 , 1000ml。(称 12.15g 溶于 1000ml H 2O)4.Tris-HCl : 0.1mol/L , pH8.0 , 1000ml。(称 Tris 12.1g,取 HCl 23ml,调 pH 为 8.0, 加水至1000ml)5.NH4CI:研细,10g。6.NH40H : 5mol/L , 100ml (公用)7.MgSO4: 2.0mol/L , pH8.5, 20ml。(公用)8.MgA C2: 0.07mol/L , pH9.0 , 100ml。9.NaOH : 0.2, 0.5, 1.0, 2.0, 5.0( mol/L )。10.HAc : 0.2mol/
8、L。11.95% CH3CH2OH (乙醇)12.粗盐13.底物溶液的配制:通常一次配制20ml,当天使用。配制方法:取 10ml 48mmol/L 的肌酸溶液,加入 1.0ml O.1mol/L 的 MgAC2,2.0ml 0.1 % 的百里酚蓝(称100mg百里酚蓝,加20ml乙醇溶解后再加水 60ml) ,1.0ml 0.1mol/L pH9.0 的Gly-NaOH 缓冲液,称48mg ATP溶于此溶液,再补加水5.0ml,用0.10.2mol/L NaOH 仔细调此溶液的颜色为深紫红色(吸光度为 1.82.2)即可。五、 实验步骤:(一)、兔肌肌酸激酶的分离纯化:1.将兔子化冻后取大腿
9、肌 50g,去除结缔组织和神经后剪碎。 加200ml 0.01mol/L KCl ,用组织打碎机(或食品加工机)和高速分散器各粉碎 3次以上,每次不超过30s,以防 过热。2.冰浴搅拌提取15-30min,用8000r/min , 0C,离心10min,弃去沉淀,测上清体积 为W,取样0.5ml。V1=81.0ml 。3.在其余上清中加入研细的 NH4CI至浓度为0.1mol/L (逐滴加入)。加入的 NH4CI 的量:Mnh4ci=5.35 X V1=0.431 g。用 5moI/L NH 4OH 调 pH 至 9.0 (最适 pH 值),冰浴搅拌 30min (0C)。4.加入1.5倍V1
10、体积的95%冷乙醇,20C搅拌2.5h。以热变性法用 60%的有机溶剂 变性除杂蛋白。1.5V1=121.50mI8C, 8000r/min 离心 10min。弃沉淀,测上清液体积为 V2,取样0.5ml。V2=155.5ml5.其余上清液中加入 Va ml的2 mol/L MgSO 4(pH=8.5),至终浓度为 0.03moI/L。VA 2A 0.03, VA=2.37mIVa V21.5VA=3.55mI再补加1.5 VA体积的95%冷乙醇,逐滴加入,搅拌 30min, 8C, 8000r/min离心10min,弃去上清。6.沉淀加1/10 V1体积的MgAc2 (0.07moI/L ,
11、 pH=9.0)溶解悬浮(冰浴)。冰浴搅拌1h后,0C, 12000r/min离心10 min,弃去沉淀,测上清体积为 V3,取样0.5ml。V3=13.2ml7.其余上清液用0.5-1mol/L NaOH 调pH=8.0。置冰盐浴内缓慢加入 Vb体积的95%的冷乙醇至终浓度为 36%。VB的计算式:(V3- MgAC2的加入量 厂0.6+ V 0.36V3+ Vb本实验中:VB=2.64ml 。8.搅拌30min后,8C, 12000r/min离心10 min,弃去沉淀,测上清体积为 V,取 样 0.5ml。V4=14.5ml.9.其余上清置于冰盐浴中,缓慢加入 Vc体积的95 %的冷乙醇至
12、终浓度为 50%。Vc的计算式:乂 .36+ % = 0.5V4 + Vc本实验中Vc=4.06ml。10.搅拌 30min 后,8C, 12000r/min,离心 10 min,弃上清,沉淀溶于 4ml pH 9.00.05mol/L的柠檬酸铵溶液,即为 V5,取样0.2ml。(以NH4OH调pH值)V5=4.6ml.11.对此缓冲液透析过夜。透析袋内加液量控制在 1/2到1/3左右,最外面加上冰浴,每小时换一次缓冲液,4-5h。12.再对1.7mmol/L的NH4OH透析,0C, 12000r/min 离心10 min,弃去沉淀,测上 清体积为V6,取样0.5ml。V6=4.5ml.13.
13、其余的V6溶液用此NH4OH透析液调蛋白的质量浓度约为 5g/L后用恒流泵上样至DEAE-52离子交换层析柱,用0.01mol/L pH 8.0的Tris-HCl平衡缓冲液洗至基线平。将上样时未被吸附液和冲洗前阶段液体收集,得穿过峰体积,即为 V8。取样0.5ml。14.用凸形梯度洗脱法洗脱兔肌肌酸激酶, 收集活性峰(峰管测活),合并得到V7样品,取样0.5ml,其余冰冻干燥得到最终的兔肌肌酸激酶样品。离子交换柱层析:取约10mL湿的DE-52阴离子交换纤维素,抽干后在 0.5mol/L NaCl-NaOH溶液中浸泡 30min,水洗至中性,在0.5mol/L HCl中浸泡30min,水洗至中
14、性,在0.5mol/L NaOH 中浸泡30min,水洗至中性抽干,然后再用 0.01mol/L pH8.0Tris-HCI平衡缓冲液浸泡过夜。在本次实验中,我们使用的柱子是做过一次兔肌肌酸激酶分离的旧柱子, 所以直接用 50ml 1moI/L NaCI上泵洗柱,再用 0.01mol/L pH8.0 Tris-HCI 平衡缓冲 液平衡。最终柱高约 4cm。凸形梯度洗脱液体系:Ci (混合瓶):0.01 mol/L,pH8.0,Tris-HCl,50ml,(瓶塞不漏气); C2 (贮液瓶):0.10mol/L, pH8.0,Tris-HCl,150ml ; 洗脱速度:0.2-0.3ml/min ; 收集体积:2-3ml/ 管/10-15min。从上样开始收集,洗脱完毕,逐管测定 A280。选择A280较大的管测活,绘制洗脱图。凸形梯度洗脱用在此处的优点: 在前几十管分离杂蛋白时, 盐梯度增长很快,而后几十管洗脱兔肌肌酸激酶时,盐梯度变化缓慢,
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