1、5) 靶序列变异:靶序列发生突变或缺失,影响引物与模板特异性结合,或因靶序列某段缺失使引物与模板失去互补序列,其PCR扩增是不会成功的。2. 假阳性假阳性:出现的PCR扩增条带与目的靶序列条带一致,有时其条带更整齐,亮度更高。常见原因有:1) 引物设计不合适:选择的扩增序列与非目的扩增序列有同源性,因而在进行PCR扩增时,扩增出的PCR产物为非目的性的序列。靶序列太短或引物太短,容易出现假阳性。需重新设计引物。2) 靶序列或扩增产物的交叉污染:这种污染有两种原因:一是整个基因组或大片段的交叉污染,导致假阳性。这种假阳性可用以下方法解决:操作时应小心轻柔,防止将靶序列吸入加样枪内或溅出离心管外。
2、二是空气中的小片段核酸污染,这些小片段比靶序列短,但有一定的同源性。可互相拼接,与引物互补后,可扩增出PCR产物,而导致假阳性的产生,可用巢式PCR方法来减轻或消除。3. 出现非特异性扩增带PCR扩增后出现的条带与预计的大小不一致,或大或小,或者同时出现特异性扩增带 与非特异性扩增带。非特异性条带的出现,其原因:一是引物与靶序列不完全互补、 或引物聚合形成二聚体。二是Mg2+离子浓度过高、退火温度过低,及PCR循环次数过多有关。三是酶的质和量,往往一些来源的酶易出现非特异条带而另一来源的酶则不出现,酶量过多有时也会出现非特异性扩增。其对策有:必要时重新设计引物。减低酶量或调换另一来源的酶。降低
3、引物量,适当增加模板量,减少循环次数。适当提高退火温度或采用二温度点法。4. 出现片状拖带或涂抹带PCR扩增有时出现涂抹带或片状带或地毯样带。其原因往往由于酶量过多或酶的质量差,dNTP浓度过高,Mg2+浓度过高,退火温度过低,循环次数过多引起。减少酶量,或调换另一来源的酶。减少dNTP的浓度。适当降低Mg2+浓度。增加模板量,减少循环次数。二、 一代测序结果常见问题及分析原始数据图片为:图1分析后无干扰峰的常规序列图为:图2常见问题有:1. 钉子峰图3产生原因:样品或毛细管内有气泡或灰尘、结晶等固体小颗粒反射激光,所以信号很高,而且所有波长(4色)都有。解决办法:灌胶时不要产生气泡;使用过的
4、毛细管在取下一段时间后,重新安装前要清洗;要经常擦去灰尘;样品纯化干净。 2. PCR产物测序时出现重叠峰1) 单一位点(图4)或两个位点(图5)的碱基缺失导致测序结果移码 图4 图5碱基缺失常见在PCR产物中,特别是从基因组中扩增得到的PCR片段,如上图所示,单一位点或两个位点的缺失会导致测序结果移码,影响碱基的判读。解决策略:将PCR产物克隆到质粒(如T载体)中挑单克隆测序,或将PCR产物进行PAGE纯化(至少琼脂糖充分电泳后切胶纯化)后再进行测序。或使用反向引物继续测序,以矫正缺失位点并达到测通的目的。如果可以确定该PCR片段中不应该有缺失的位点,那么可以改变PCR反应条件,重新扩增。2
5、) 测序引物碱基缺失 图6测序引物有碱基缺失(一般是引物的5端缺失),和模板的碱基缺失有些类似,所不同的是模板碱基缺失一般是在一段正常测序序列后才出现移码,而引物碱基缺失的话,则从测序一开始就出现移码,表面在图形上便是一开始就是严重的峰形重叠。重新合成引物,或将引物进行PAGE纯化。3. 克隆测序时出现峰形重叠 图7 产生原因:所挑选的重组子不是单克隆,所提供的测序用质粒中含有两种以上插入片段不同的质粒;或是送测序的菌液污染。 解决策略:重新挑单克隆的菌落(划线分离单菌落),提质粒或送菌液再次测序。4. 样品有杂合/突变位点 图8范本中有杂合型突变,也就说范本本身在这个位点出现突变;或者是从基
6、因组中扩增出来的杂合位点。如果范本有杂合突变或缺失,那么测序图形中其他的位点一般都是单一的峰形,然后突然在某一个点出现重叠峰(如图中箭头所示)。建议将DNA片段克隆到载体再测序。5. Poly A/T结构 图9 图10如图9、10所示,在Poly A/T结构出现后,测序酶容易在模板上滑动,导致Poly A/T结构后的峰形变得杂乱,出现移码现象。使用反向引物对模板进行测序,测到该poly结构处,即可完成模板全长的拼接。6. G/C特殊结构区 图11序列中存在一个GC特殊结构区,在该区域后,信号迅速减弱。上图的下半部分是对测序反应进行优化后的测序结果,在GC特殊结构后,测序信号得到一定程度的改善,
7、但是离一般的测序结果还是相差甚远。针对该类型的模板,一般应从反向进行测序,然后在该特殊结构区附近将两个方向的测序结果拼接起来,得到完整的序列。7. 基因中含有重复序列 图12样品中含有重复序列导致的测序结果和Poly A/T的结果一样,会导致复制框滑动,较短的重复序列会导致测序结果出现移码;而较长的重复序列会使信号衰减。反向测序有时能够顺利的通过重复序列区域(但不是一定都能够),通过多次的测序结果比对,拼接可以得到全序列结果。8. 背景峰杂1) 模板杂 图13 产生原因:与目的片段条带大小只相差几个碱基的非特异性PCR扩增产物是无法用肉眼区分开的。但是DNA测序反应敏感而客观,可以直接反应出模
8、板本身的情况。如上图所示,该反应的背景信号较高,不利于碱基的判读。改变PCR条件,重新扩增。或者可以将该PCR产物克隆到质粒中,初步筛选后进行单克隆测序。2) 引物不纯 图14引物不纯造成移码现象,与模板杂在峰图上均表现为背景峰杂,但是引物不纯在峰图上表现的更有规律,一般在每一个主峰前都有一个同一碱基的小峰。重新合成引物,或者将引物进行PAGE纯化后再进行测序。9. 模板不单一1) 菌液为非单克隆 图15上图是pGEM-T载体测序的结果,在83位点处测序结果出现双峰,即测序结果在载体部分很准确,而进入插入片段后出现双峰的情况。这是由于在接种时没有挑单菌落导致的,当两个以上的正常的克隆(插入片段
9、方向相反),或正常克隆与空载体混在一起,而通过酶切和PCR鉴定很难看出异常,尤其在T-A克隆时经常碰到。重新涂平板挑单菌落测序。需要注意的是,重新进行PCR反应或者酶切鉴定仅能证明该克隆含有插入片段,并不足以证明模板的单一。2) PCR产物不纯 图16在197bp前测序峰表现为杂或有明显套峰,且在197bp位置有一个高高的A峰,这个A峰标志着此PCR产物中有一个片段大小为200bp左右的小片段。(注:PCR产物测序都是以A高峰终止。)对PCR产物切胶纯化,再进行测序。10. 回文结构 图17位点94至137是一个回文结构,该结构导致后面的信号衰减,出现错误的判读。使用反向引物对模板进行测序,测
10、到该回文结构处,即可完成模板全长的拼接。11. 酒精峰和染料峰 图18Big dye测序反应试剂盒(BDT)中的big dye mix稀释过度出现染料峰,纯化的酒精没有挥发干净则会出现酒精峰,一般情况下这样的峰形出现在前200bp的某部分,大部分情况下是不影响测序结果的。重新安排反应。12. 测序一开始就出现双峰 图19样品本身被污染,这常常发生在样品为质粒和菌液的情况中。当使用通用引物测序时,如果刚好和样品中的几个质粒均能结合,那么就会出现这种情况,而且在同一位置上还可能有不止两个峰形。样品不是单一模板,这常常发生在样品为PCR产物的情况中。通常PCR样品含非特异性扩增,存在两条分子量很接近
11、,采用琼脂糖电泳无法分开的条带,在测序时容易发生这种情况。样品中存在两个引物结合位点,这常常发生在样品中存在重复序列的情况下。当引物恰好设计在重复序列中时,那么在重复序列以外的部分就会出现双峰的情况。划平板挑取单克隆测序;优化PCR体系或者克隆后测序;选用特异性引物。13. PCR测序结果出现N值 图20该结果信号很强,峰型整齐,但是在该测序结果中有多个位置有重叠峰,出现N值。造成该情况的主要原因很可能是该PCR产物中有突变体的存在。在每个突变位点上有一个重叠的峰,由于仪器无法正确识别该处的碱基,就只能以N值代替。暂无较好地解决办法14. 瀑布效应 图2115. 大分子荧光物质污染 图2216. 轻微荧光污染1) 图23 2) 图2417. 宽峰 图2518. 测序结果无信号 图26在确认引物、质粒抽提浓度、反应安排等条件无问题的情况下,测序结果峰型杂乱且信号值小于100的结果;此时则判定结果为测序无信号。两次测序无信号,则会取消实验。
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