间充质干细胞培养大全.docx
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间充质干细胞培养大全
1．间充质干细胞MSC基本形态
体外培养细胞根据它们在培养器皿是否能贴附于支持物上生长特征，可分为贴附型生长细胞，常表现为成纤维型细胞和上皮细胞。
悬浮型细胞在培养中悬浮生长。
间充质干细胞MSC基本形态：
形态与成纤维细胞类似，细胞在支持物表面呈梭形或不规则三角形生长，细胞中央有卵圆形核，胞质向外伸出2－3厘米个长短不同的突起。
可看到细胞成螺旋状生长。
2．干细胞应用与干细胞调控
干细胞的调控是指给出适当的因子条件，对干细胞的增殖和分化进行调控，使之向指定的方向发展。
2.1内源性调控
干细胞自身有许多调控因子可对外界信号起反应从而调节其增殖和分化，包括调节细胞不对称分裂的蛋白，控制基因表达的核因子等。
另外，干细胞在终末分化之前所进行的分裂次数也受到细胞内调控因子的制约。
（1）胞内蛋白对干细胞分裂的调控
干细胞分裂可能产生新的干细胞或分化的功能细胞。
这种分化的不对称是由于细胞本身成分的不均等分配和周围环境的作用造成的。
细胞的结构蛋白，特别是细胞骨架成分对细胞的发育非常重要。
如在果蝇卵巢中，调控干细胞不对称分裂的是一种称为收缩体的细胞器，包含有许多调节蛋白，如膜收缩蛋白和细胞周期素A。
收缩体与纺锤体的结合决定了干细胞分裂的部位，从而把维持干细胞性状所必需的成分保留在子代干细胞中。
（2）转录因子的调控
在脊椎动物中，转录因子对干细胞分化的调节非常重要。
比如在胚胎干细胞的发生中，转录因子Oct4是必需的。
Oct4是一种哺乳动物早期胚胎细胞表达的转录因子，它诱导表达的靶基因产物是FGF-4等生长因子，能够通过生长因子的旁分泌作用调节干细胞以及周围滋养层的进一步分化。
Oct4缺失突变的胚胎只能发育到囊胚期，其内部细胞不能发育成内层细胞团。
另外白血病抑制因子（LIF）对培养的小鼠ES细胞的自我更新有促进作用，而对人的成体干细胞无作用，说明不同种属间的转录调控是不完全一致的。
又如Tcf/Lef转录因子家族对上皮干细胞的分化非常重要。
Tcf/Lef是Wnt信号通路的中间介质，当与β-Catenin形成转录复合物后，促使角质细胞转化为多能状态并分化为毛囊。
2.2外源性调控
除内源性调控外，干细胞的分化还可受到其周围组织及细胞外基质等外源性因素的影响。
（1）分泌因子
间质细胞能够分泌许多因子，维持干细胞的增殖，分化和存活。
有两类因子在不同组织甚至不同种属中都发挥重要作用，它们是TGFβ家族和Wnt信号通路。
比如TGF家族中至少有两个成员能够调节神经嵴干细胞的分化。
最近研究发现，胶质细胞衍生的神经营养因子（GDNF）不仅能够促进多种神经元的存活和分化，还对精原细胞的再生和分化有决定作用。
GDNF缺失的小鼠表现为干细胞数量的减少，而GDNF的过度表达导致未分化的精原细胞的累积。
Wnts的作用机制是通过阻止β-Catenin分解从而激活Tcf/Lef介导的转录，促进干细胞的分化。
比如在线虫卵裂球的分裂中，邻近细胞诱导的Wnt信号通路能够控制纺锤体的起始点和内胚层的分化。
（2）膜蛋白介导的细胞间的相互作用
有些信号是通过细胞-细胞的直接接触起作用的。
β-Catenin 就是一种介导细胞粘附连接的结构成分。
除此之外，穿膜蛋白Notch及其配体Delta或Jagged也对干细胞分化有重要影响。
在果蝇的感觉器官前体细胞，脊椎动物的胚胎及成年组织包括视网膜神经上皮、骨骼肌和血液系统中，Notch信号都起着非常重要的作用。
当Notch与其配体结合时，干细胞进行非分化性增殖；当Notch活性被抑制时，干细胞进入分化程序，发育为功能细胞。
（3）整合素（Integrin）与细胞外基质
整合素家族是介导干细胞与细胞外基质粘附的最主要的分子。
整合素与其配体的相互作用为干细胞的非分化增殖提供了适当的微环境。
比如当β1整合素丧失功能时，上皮干细胞逃脱了微环境的制约，分化成角质细胞。
此外细胞外基质通过调节β1整合素的表达和激活，从而影响干细胞的分布和分化方向。
2.3干细胞的可塑性
越来越多的证据表明，当成体干细胞被移植入受体中，它们表现出很强的可塑性。
通常情况下，供体的干细胞在受体中分化为与其组织来源一致的细胞。
而在某些情况下干细胞的分化并不遵循这种规律。
1999年Goodell等人分离出小鼠的肌肉干细胞，体外培养5天后，与少量的骨髓间质细胞一起移植入接受致死量辐射的小鼠中，结果发现肌肉干细胞会分化为各种血细胞系。
这种现象被称为干细胞的横向分化（trans-differentiation）。
关于横向分化的调控机制目前还不清楚。
大多数观点认为干细胞的分化与微环境密切相关。
可能的机制是，干细胞进入新的微环境后，对分化信号的反应受到周围正在进行分化的细胞的影响，从而对新的微环境中的调节信号做出反应。
3．间充质干细胞MSC生长过程
潜伏期→指数增生期→停滞期
（1）潜伏期（latentphase） 细胞接种后,先经过一个在培养液中呈悬浮状态的悬浮期。
此时,细胞质回缩, 胞体呈圆球形，然后细胞贴附于载体表面,称贴壁,悬浮期结束。
细胞贴壁速度与细胞种类, 培养基成分,载体的理化性质等密切相关。
一般情况下，原代培养细胞贴壁速度慢,可达10-24 小时或更多, 而传代细胞系贴壁速度快, 通常10-30分钟即可贴壁。
细胞贴壁后还需经过一个潜伏阶段，才进入生长和增殖期。
原代培养细胞潜伏期长，约24-96小时或更长, 连续细胞系和肿瘤细胞潜伏期短，仅需6-24小时。
（2）指数增生期（logarithmicgrowthphase）
这是细胞增殖最旺盛的阶段，分裂相细胞增多。
指数增生期细胞分裂相数量可作为判定细胞生长是否旺盛的一个重要标志。
通常以细胞分裂相指数（Mitoticindex,MI ）表示，即细胞群中每1000个细胞中的分裂相数。
一般细胞的分裂指数介于0.1%-0.5% ，原代细胞分裂指数较低，而连续细胞和肿瘤细胞分裂相指数可高达3％－5％。
指数增生期的细胞活力最好时期，是进行各种实验最佳时期，也是冻存细胞的最好时机。
在接种细胞数量适宜情况下，指数增生期持续3－5 天后，随着细胞数量不断增多、生长空间减少，最后细胞相互接触汇合成片。
正常细胞相互接触后能抑制细胞运动，这种现象称接触抑制现象（contact inhibition）。
而恶性肿瘤细胞无接触抑制现象，能继续移动和增殖，导致细胞向三维空间扩展，使细胞发生堆积（piled up）。
细胞接触汇合成片后，虽然发生接触抑制，但只要营养充分，细胞仍能进行增殖分裂，因此细胞数仍然在增多。
但是，当细胞密度进一步增大，培养液中营养成分减少，代谢产物增多时，细胞因营养枯竭和代谢产物的影响，导致细胞分裂停止，这种现象称密度抑制现象（DensityInhibition）。
（3）停滞期（Stagnatephase） 细胞数量达到饱和密度后，如不及时进行传代，细胞就会停止增殖，进入停止期。
此时细胞数持平，故也称平台期（Plateauphase）。
停滞期细胞虽不增殖，但仍有代谢活动。
如不进行分离传代，细胞会因培养液中营养耗尽、代谢产物积聚、pH下降等因素中毒，出现形态改变，贴壁细胞会脱落，严重的会发生死亡，因此，应及时传代。
4．间充质干细胞MSC培养的合适气体环境
干细胞相关的培养液都必须在5％CO2的气体环境中培养使用。
否则会对细胞产生影响。
气体是哺乳动物细胞培养生存必需条件之一，所需气体主要有氧气和二氧化碳。
氧气参与三羧酸循环，产生供给细胞生长增殖的能量和合成细胞生长所需用的各种成分。
开放培养时一般把细胞置于95%空气加5%二氧化碳混合气体环境中。
二氧化碳既是细胞代谢产物也是细胞生长繁殖所需成分，它在细胞培养中的主要作用在于维持培养基的pH值。
大多数细胞的适宜pH为7.2-7.4，偏离这一范围对细胞培养将产生有害的影响。
一般情况下，细胞耐酸性比耐碱性大一些，在偏酸环境中更利于细胞生长。
5．细胞培养板的选择
细胞培养板依底部形状的不同可分为平底和圆底（U型和V型）；培养孔的孔数有6、12、24、48、96、384、1536孔等；根据材质的不同有Terasaki板和普通细胞培养板。
具体选择时根据培养细胞的类型、所需培养体积及不同的实验目的而定。
（1）平底和圆底（U型和V型）培养板的区别和选择
不同形状的培养板有不同用途。
培养细胞，通常是选用平底的，这样便于镜下观测、有明确的底面积、细胞培养液面高度相对一致。
因此做MTT等实验时，无论是贴壁和悬浮细胞，一般选用平底板。
测吸光值一定要使用平底的培养板。
要特別注意材质，标示“TissueCulture（TC）Treated”是养细胞用的。
U型或V型板，一般在某些特殊要求時才使用。
如在免疫学方面，当做两种不同淋巴细胞混合培养時，需要二者相互接触刺激，这时一般会选用U型板，因为细胞会由于重力的作用而聚集在很小的范围内內。
圆底培养板还会用于同位素掺入的实验，需要用细胞收集仪收集细胞的培养，如“混合淋巴细胞培养”等。
V型板常用做细胞杀伤、免疫学血凝集实验。
细胞杀伤这种实验也可用U型板替代（加入细胞后，低速离心）。
（2）Terasaki板和普通细胞培养板的区别
Terasakiplate主要是用于晶体学研究，产品设计便于对晶体的观察与结构分析。
有两种sitting 和handingdrop两种方法，两种方法应用产品的外形结构也不同。
材料上选择crystalclasspolymer ，特殊的材料有利观察晶体结构。
细胞培养板主要是PS材料，材料是treatedsufface，便于细胞贴壁生长与伸展。
当然还有浮游细胞的生长材料，同时还有lowbindingsurface
（3）细胞培养板与酶标板的区别
酶标板一般要比细胞培养板贵，细胞板主要做细胞培养，也可以用来测蛋白浓度；酶标板包括包被板和反应板，一般不用做细胞培养，它主要做免疫酶联反应后的蛋白检测，需要更高的要求和特定的酶标工作液。
（4）常用不同培养板的孔底面积及推荐加液量
不同孔板所加培养液的液面都不宜太深，一般在2~3mm范围，结合不同孔的底面积就可算出各培养孔的适宜加液量（参考下表）。
若加液量过多会影响气体（氧气）交换，而且在搬动过程中易溢出造成污染。
具体所加细胞密度依实验的目的不同灵活掌握。
常用的培养器皿
培养器皿
底面积（cm2）
加培养液量（mL）
可获细胞量
96孔培养板
0.32
0.1
105
24孔培养板
2
1.0
5×105
12孔培养板
4.5
2.0
106
6孔培养板
9.6
2.5
2.5×106
4孔培养板
28
5.0
7×106
3.5cm培养皿
8
3.0
2.0×106
6cm培养皿
21
5.0
5.2×106
9cm培养皿
49
10.0
12.2×106
10cm培养皿
55
10.0
13.7×106
25cm塑料培养瓶
25
5.0
5.2×106
75cm塑料培养瓶
75
15~30
2×107
25cm玻璃培养瓶
19
4.0
3×106
100cm玻璃培养瓶
37.5
10.0
6×106
250cm玻璃培养瓶
78
15.0
2×107
2500cm旋转培养瓶
700
100~250
2.5×108
注：
各种单层生长的细胞在培养皿中长满的细胞数，主要取决于器皿底表面积和细胞体积的大小。
上表以293细胞为例给出的可获细胞量仅作参考。
6．如何选用细胞培养基
培养基是维持体外细胞生存和生长的基本溶液，是组织细胞培养时最重要的条件。
细胞培养基大致有：
（1）合成培养基
主要成分为：
氨基酸、维生素、碳水化合物、无机盐、辅助物质（核酸降解物、氧化还原剂等）。
常用的有：
①199细胞培养基及其改良品种。
1950年由Morgan等设计，除BSS外，含有53种成分，添加适量的血清后，可广泛用于多种细胞培养、病毒学、疫苗生产等。
199（HB）细胞培养基，主要应用于Vero细胞、地鼠肾细胞转瓶培养生产狂犬、乙脑等疫苗，具有高缓冲性能，能够有效提高病毒滴度。
②BME细胞培养基。
基础Eagle培养基（BasalMediumEagle），1955年由Eagle设计，BSS＋12种氨基酸＋谷氨酰胺＋8种维生素。
简单、便于添加，适于各种传代细胞系和特殊研究用，在此基础上改良的细胞培养基品种有MEM、DMEM、IMDM等。
③MEM细胞培养基。
低限量Eagle培养基（MinimalEssentialMedium），1959年修改配方，删去赖氨酸、生物素，增加氨基酸浓度，适合多种细胞单层生长，是一种最基本、适用范围最广的培养基，是一种被广泛应用的培养基。
需要注意的是，MEM细胞培养基有含Earle's平衡盐的类型，也有含Hanks'平衡盐的类型；有高压灭菌型的，也有过滤除菌型的；还有含非必需氨基酸的类型。
生产和科研时，应根据实际情况注意选择合适的MEM细胞培养基。
另外，因MEM培养基营养成分所限，针对生产之特定细胞培养与表达时，并不一定是使用效果最佳或者最经济的培养基。
④DMEM细胞培养基及其改良品种。
DMEM由Dulbecco改良的Eagle培养基，各成份量加倍，分低糖（1000mg/L）、高糖（4500mg/L）。
细胞生长快。
附着稍差的肿瘤细胞、克隆培养用高糖效果较好，常用于杂交瘤的骨髓瘤细胞和DNA转染的转化细胞培养。
例如CHO细胞表达生产乙肝疫苗、CHO细胞表达EPO。
⑤IMDM细胞培养基。
IMDM是由Iscove's改良的Eagle培养基，增加了几种氨基酸和胱氨酸量。
可用于杂交瘤细胞培养，以及无血清培养的基础培养基。
⑥RPMI-1640细胞培养基。
Moore等人于1967年在RoswellParkMemorialInstitute研制，针对淋巴细胞培养设计，BSS＋21种氨基酸＋维生素11种等，广泛适于许多种正常细胞和肿瘤细胞，也用做悬浮细胞培养。
⑦Fischer’s细胞培养基。
用于白血病微粒细胞培养。
⑧HamF10、F12细胞培养基。
1963年、1969年由Ham设计，含微量元素，可在血清含量低时用，适用于克隆化培养。
F10适用于仓鼠、人二倍体细胞，F12适用于CHO细胞。
⑨DMEM/F12细胞培养基。
DMEM和F12细胞培养基按照1:
1比例混合效果最佳，营养成分丰富，且可以使用较少血清，或作为无血清培养基的基础培养基。
（2）低血清细胞培养基
主要应用于VERO细胞、BHK21细胞等细胞在转瓶、微载体反应器中的培养。
（3）无血清培养基
是设计用来在无血清条件下促使特殊类型的细胞生长或进行专门应用的培养基。
需要添加生长因子和或细胞因子，含有个别蛋白或大量蛋白组分。
（4）替代天然培养基
培养基中不包含有蛋白、水解产物或未知结构的组分，所有的成分均有已知的化学结构。
面对如此多的细胞培养基，对细胞培养基的选用，建议：
①可以查阅相关文献，或在购买细胞株时咨询选用最适合细胞株的培养基，或购买相配套的细胞培养基产品。
②许多培养基都适合多种细胞株的培养，可以采用现有的培养基进行试验。
③根据细胞株的特点、实验的需要来选择培养基。
如小鼠细胞株多选1640；进行细胞杂交、基因转移实验，可选择IMDM。
④结合细胞特性及培养基的培养效能，用多种培养基培养目的细胞，观察其生长状态，可以用生长曲线、克隆形成率等指标判断，根据实验结果选择最佳培养基。
注：
目前也有不少商业化的msc培养基，如百恩维的间充质干细胞无血清培养基，间充质干细胞培养基（低血清）
7．如何维持培养液pH
配好的培养液变碱（变紫红）是正常的现象。
暴露在空气中的培养液，因为大气中二氧化碳的浓度很低，培养液中的HCO3-被渐渐耗掉，培养液的pH值也逐渐升高，变成了紫红色。
如果培养基pH值偏碱的程度不大，可将装培养液的瓶口拧松，放置于二氧化碳培养箱中一段时间，让培养箱中的CO2进入培养液，pH值就可以纠正。
如果pH值偏离的程度很大，可以通过添加少量无菌的HCl 或者NaOH调节pH，便可以使用。
将配制好的培养基小剂量分装，可以避免反复开盖引起其中的二氧化碳逸出而造成pH升高。
同时因NaHCO3遇热不稳定，会分解释放出CO2，而使培养基的pH升高，偏碱。
因此在配置使用培养的过程中应注意：
（1）动作迅速，不可使培养液长时间处于较高室温下；
（2）配置过程中，混匀时切不可加热。
混匀后应立即放入4°C冰箱，待过滤时再取出；
（3）使用完毕应尽快将瓶口封好，放于4°C冰箱保存。
通过在培养液中同时添加Hepes也可以有效的稳定pH值。
Hepes（羟乙基哌嗪乙硫磺酸）是一种非离子两性缓冲液,它在pH7.2～7.4范围内具有较好的缓冲能力。
其最大优点是在开放式培养或细胞观察时能维持较恒定的pH值。
在这种培养条件下，细胞培养瓶的盖子应拧紧，以防止培养液中所需的少量碳酸盐散入空气中。
该缓冲液使用的终浓度为10～50mmol/L，一般培养液内含20mmol/LHepes便可达到缓冲能力。
Hepes的使用方法有以下两种：
（1）Hepes可按所需的浓度直接加入到配制的培养液中，再过滤除菌。
每1000ml培养液中加入2.38克HEPES，溶解后用1NNaOH 调pH至7.2，过滤除菌后使用。
此时HEPES的使用浓度为10mmol/L。
（2）配成100x贮存液（1mol/L），使用前取99mL 培养液加入lmL贮存液，最终应用浓度仍为10mmol/L。
1mol/L （100x）Hepes贮存液配制方法：
取23.8gHepes溶于90ml双蒸水中，用1NNaOH调pH至7.5～8.0，然后用水定容至100mL，过滤除菌，分装小瓶（2mL/瓶），4℃或-20℃保存。
8．血清与干细胞的培养
干细胞在体内存在的量很少，处在一个个环境相对稳定的“niche”中，所以一旦完成分离进入体外环境，最重要的就是保证细胞的活力不受影响，那么就必须提供一个相对稳定的培养环境。
这些环境就是靠培养基和培养箱来提供了。
培养液中最重要的莫过----血清，特别是对干细胞来说。
所以为了最优的干细胞培养效果，推荐选用对应的干细胞专用血清。
牛血清是最常用的，但是根据血清的来源不同又可以分为小牛血清、新牛血清、胎牛血清。
胎牛血清应取自剖腹产的胎牛；新牛血清取自出生24小时之内的新生牛；小牛血清取自出生10－30天的小牛。
显然，胎牛血清是品质最高的，因为胎牛还未接触外界，血清中所含的抗体、补体等对细胞有害的成分最少，所以也成为了干细胞培养的首选。
培养中如何正确的使用血清？
避免不好的影响呢？
血清的浓度：
对大部分的干细胞，最佳的血清浓度是10%。
过高的血清浓度会导致细胞出现分化的现象，如果是需要高浓度的血清，培养的时间也不能超过两周，否则会导致细胞分化能力下降。
过低的血清会导致细胞的增殖速度下降。
血清的溶解：
必须在4℃进行，最好过夜溶解。
这样可以减少沉淀的产生，避免营养物质的流式。
同时也要避免血清的过滤，如果需要过滤可以和培养基一起过滤。
细胞培养液中添加的血清有牛血清、马血清、人血清等，其中牛血清是最常用的血清，分为胎牛血清和新生小牛血清。
胎牛血清是从母牛破腹取出的胎牛中分离出的血清，价格昂贵。
新生小牛血清是从刚出生的尚未哺乳的小牛中分离出来的血清，如厂家能做到这一点，新生小牛血清的质量与胎牛血清的质量相差不大。
如小牛出生后已哺乳，从这种小牛中取出的血清中可能含有较多的生物活性物质，其质量明显不如前两种。
血清的质量，种类及使用的浓度都有可能影响细胞的生长，而不同批次的血清支持细胞生长的能力也不同，尤其是对克隆细胞的生长，某些批次血清可能含有毒性或抑制细胞生长的物质。
注意以下几点：
（1）需要长期保存的血清必须储存于-20℃或-80℃低温冰箱中。
4℃冰箱中保存时间切勿超过1个月。
由于血清结冰时体积会增加约10％，因此，血清在冻入低温冰箱前，必须预留一定体积空间，否则易发生污染或玻璃瓶冻裂。
（2）瓶装血清解冻需采用逐步解冻法：
-20℃或-80℃ 低温冰箱中的血清放入4℃冰箱中溶解1天。
然后移入室温，待全部溶解后再分装。
在溶解过程中需不断轻轻摇晃均匀（小心勿造成气泡），使温度与成分均一，减少沉淀的发生。
切勿直接将血清从-20 ℃进入37℃解冻，这样因温度改变太大，容易造成蛋白质凝集而出现沉淀。
影响使用效果！
（3）热灭活是指56℃, 30 分钟加热已完全解冻的血清。
加热过程中須規則搖晃均勻。
此热处理的目的是使血清中的补体成分（complement）灭活。
除非必须，一般不建议作此热处理，因为热处理会造成血清沉淀物显著增多，而且还会影响血清的质量。
补体参与反应有：
细胞毒作用, 平滑肌细胞收缩, 肥大细胞和血小板释放组胺, 增强吞噬作用, 促进淋巴细胞和巨噬细胞发生化学趋化和活化。
（4）切勿将血清在37℃放置太久，否则血清会变得浑浊，同时血清中的有效成分会破坏而影响血清质量。
（5）血清中的沉淀物 絮状物：
主要是血清中的脂蛋白变性及解冻后血清中纤维蛋白造成，这些絮状物不会影响血清本身的质量。
可用离心3000rpm,5 分钟去除，也可不用处理。
显微镜下“小黑点”：
经过热处理过的血清，沉淀物的形成会显著增多。
有些沉淀物在显微镜下观察象“小黑点”，常误认为血清受污染。
一般情况下，此小黑点不会影响细胞生长。
9．胎牛血清（FBS）是否需要灭活
灭活的目的是去除血清中的补体成分，避免补体对细胞产生细胞毒害作用。
胎牛血清（FBS）对许多细胞系均有促生长作用，主要适用于细胞株的保藏及特殊用途的细胞株的体外培养。
胎牛血清是取自剖腹产的胎牛。
因为胎牛还未接触外界，血清中所含的抗体、补体等对细胞生长有害的成分最少，质量是最高的。
所以不必要灭活。
10．细胞的细菌、真菌污染及排除
真菌污染是细胞培养过程中最常见的一种，尤其在梅雨季节进行细胞培养更易污染。
污染培养细胞的多为烟曲霉、黑曲霉、毛霉菌、孢子霉、白念珠菌、酵母菌等。
霉菌污染后多数在培养液中形成白色或浅黄色漂浮物。
一般肉眼可见，较易被发现，短期内培养液多不混浊，倒置显微镜下可见于细胞之间纵横交错穿行的丝状、管状、及树枝状菌丝，并悬浮飘荡在培养液中。
很多菌丝在高倍镜可见到有链状排列的菌珠；念珠菌或酵母菌形态呈卵形，散在细胞周边和细胞之间生长。
镜下看时，要将培养瓶用酒精棉球擦干净，以防止与瓶外尤其瓶底外面生长的菌丝相混淆。
真菌污染后，细胞生长变慢，但最后由于营养耗尽及毒性作用而使细胞脱落死亡。
细菌是一种原核细胞微生物，其大小以微米（μm）计。
常见的污染细菌有革兰氏阴性菌和大肠杆菌、假单胞菌等，革兰氏阴性菌中白色葡萄球菌等比较常见。
一旦发生细菌污染较易发现，多数情况下培养液短期内颜色变黄，表明有大量酸性物质产生，出现明显混浊现象；有时静置的培养液液体初看不混浊，但稍加振荡，就有很多混浊物漂起。
倒置显微镜下观察，可见培养液中有大量圆球状颗粒漂浮。
必要时可取少量培养液涂片染色检查以证实细菌种类；有的培养液改变不明显而又疑有污染，可取出少量培养液用普通肉汤接种或用未加双抗药物的培养液接种，也可取10ml细胞悬液以100rpm离心5min，沉淀中加入无抗生素的培养液2ml，置于37℃培养，24h可得结果。
污染后细胞发生病理改变，胞内颗粒增多、增粗， 最后变圆脱落死亡，造成试验失败和细胞株（系）丢失。
细菌和真菌污染多在传代、
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