细胞生物学实验讲义.docx

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细胞生物学实验讲义

细胞内DNA和RNA的显示

一、目的要求

1、掌握显示细胞内DNA和RNA的方法。

2、熟悉细胞内DNA和RNA的分布位置。

二、实验原理

核酸是酸性的，它们对于碱性染料派洛宁和甲基绿具有亲和力。

利用这两种染料的混合液处理细胞，可使其中的DNA和RNA呈现出不同的颜色，这种颜色上的差异由DNA和RNA聚合程度的不同所引起，因为甲基绿分子上有两个相对的正电荷，它与聚合程度较高的DNA分子有较强的亲和力，可使DNA分子染成蓝绿色；而派洛宁分子中仅一个正电荷，可与低聚分子RNA相结合使其染成红色。

这样细胞中的DNA和RNA可被区别开来。

三、器材与试剂

1、器材：

光学显微镜、载玻片、盖玻片、染色缸、染色架、注射器。

2、材料：

鸡血。

3、试剂：

0.2mol/L醋酸缓冲溶液、2%甲基绿染液、1%派洛宁染液、甲基绿·派洛宁混合染液。

4、试剂的配制

（1）2mol/L醋酸缓冲溶液：

用2ml注射器抽取1.2ml冰乙酸加入到98.8ml蒸馏水中，混匀。

再称取醋酸钠（NaAC·3H2O）2.72g溶于100ml蒸馏水中，使用时按2：

3的比例混合两液即成。

（2）2%甲基绿染液：

称取2.0g去杂质甲基绿溶于100ml0.2mol/L的醋酸缓冲溶液中即成。

甲基绿粉中往往混有影响染色效果的甲基紫，它们必须预先除去，其方法是将甲基绿溶于蒸馏水中，放在分液漏斗中加入足量的氯仿（三氯甲烷）用力振荡，然后静置，弃去含甲基紫的氯仿，再加入氯仿重复数次，直至氯仿中无甲基紫为止，最后放入40C温箱中干燥后备用。

（3）1%派洛宁染液：

称取1g派洛宁（吡罗红）溶于100ml0.2/L醋酸缓冲溶液中混匀。

（4）甲基绿派洛宁混合染液：

将2%的甲基绿液和1%的派洛宁液以5：

2的比例混合均匀即可。

该液应现配现用，不宜久置。

四、内容与方法

1、取鸡血一小滴在干净的载玻片一端，用另一载玻片的一端紧贴血滴，待血液沿其边缘展开后，以30~400角向玻片的另一端推去，制成较薄的血涂片，室温下晾干。

2、固定：

将晾干的血涂片浸入70%乙醇中固定10分钟，取出后在室温下晾干。

3、染色：

滴甲基绿派洛宁混合染液于血膜上，染色15min。

4、冲洗：

用蒸馏水冲洗标本片，并用吸水纸吸去玻片上多余的水分，但不要吸得过干。

5、分化：

将血涂片在95%酒精中迅速地过一下，进行分色，取出晾干。

6、观察：

光镜下可见细胞质呈现红色，细胞核呈绿色。

五、作业与思考

1、简述DNA和RNA的染色原理。

2、细胞核中核仁理论上应被染成何种颜色？

为什么？

  鸡血细胞体外融合

一、实验目的

（1）了解聚乙二醇诱导体外细胞融合的基本原理。

（2）通过PEG诱导鸡血细胞之间的融合实验，初步掌握细胞融合的基本方法。

（3）

二、实验原理

细胞融合又称体外细胞杂交，是指用人工方法使两个或两个以上的体细胞融合成异核体细胞，随后，异核体细胞同步进入有丝分裂，核膜崩溃，来自两个亲本细胞的基因组和在一起形成只含有一个细胞核的杂种细胞。

细胞融合技术是研究细胞遗传、基因定位、细胞免疫、病毒和肿瘤的重要手段。

依据融合过程采用的助融剂的不同，细胞融合可分为：

1.病毒诱导的细胞融合，如仙台病毒；2.化学因子诱导的细胞融合，如PEG；3.电场诱导的细胞融合；4.激光诱导的细胞融合。

PEG是乙二醇的多聚合物，存在一系列不同分子质量的多聚体。

PEG可改变各类细胞的膜结构，使两细胞接触点处脂类分子发生疏散和重组，引起细胞融合。

该方法应用相对分子质量为400-6000的PEG溶液引起细胞的聚集和粘连，产生高频率的细胞融合。

融合的频率和活力与所用PEG的分子质量、浓度、作用时间、细胞的生理状态与密度等有关。

三、实验仪器、材料和试剂

（1）仪器、用具：

注射器、离心管、离心机、水浴锅、滴管、显微镜烧杯、容量瓶、载玻片、盖玻片、酒精灯等。

（2）材料：

鸡血细胞。

（3）试剂：

1）0.85%NaCl溶液

2）GKN液：

8.0gNaCl,0.4gKCl,1.77gNa2HPO4·2H2O,0.69gNaH2PO4·H2O,2.0g葡萄糖，0.01g酚红，溶于1L蒸馏水中。

3）50%（m/v）PEG溶液：

取50gPEG4000水浴融化后冷却至50~60℃加50m预热至50~60℃的GKN液，混匀，至于37℃备用。

4）Hanks原液（10×）：

80.0gNaCl,1.2gNa2HPO4·2H2O,4.0gKCl,0.6gKH2PO4,2.0gMgSO4·7H2O,10.0g葡糖糖，1.4gCaCl2

称取1.4gCaCl2，溶于30~50mL蒸馏水中。

取1L的烧杯及容量瓶各一个，先在烧杯中放入800mL蒸馏水，然后按上述配方顺序，逐一称取药品。

必须在前一药品完全溶解之后，方可加入下一药品，直到葡糖糖完全溶解后，再将已溶解的CaCl2溶液加入，最后加水至1L。

5）Hanks液：

Hanks原液100mL

蒸馏水896mL

0.5%酚红4mL

配好的hanks液保存于4度冰箱。

四、方法与步骤

1.制作鸡血细胞储备液

取来鸡血后，按照100U肝素/5mL全血的比例制成抗凝全血，然后再在其中加入4倍体积的0.85%NaCl溶液，制成红细胞储液，置于4℃冰箱内可供一周使用。

2.细胞悬液的制备

取鸡血细胞储备液1mL，加入4mL0.85%NaCl溶液，混匀后，1200r/min离心5min，弃去上清液，再加入5mL0.85%NaCl溶液按上述条件离心一次。

最后，弃去上清液，加入3mL的GKN溶液制成鸡血细胞悬液。

3.鸡血细胞的收集

吸取1mL鸡血细胞悬液放入离心管中，加入4mLHanks液混匀，1000r/min离心5min。

弃去上清液，用手指轻弹离心管底部，使沉淀的血细胞团块松散。

4.PEG诱导细胞融合（KEY）

吸取1mL37℃的50%PEG溶液，沿着管壁迅速加入然后立即轻轻摇匀（此步非常容易造成血液凝集，不要拿离水浴锅太长时间）。

37℃水浴两到两分半钟。

5.终止PEG作用

缓慢加入5mLHanks液，轻轻吹打混匀，置于37℃水浴锅中静置5min。

6.制备细胞悬液

用吸管轻轻吹打细胞团块分散（KEY），1000r/min离心5min,使细胞完全沉降。

弃去上清液，加800mLHanks，混匀。

7.镜检

在载玻片上滴一小滴细胞悬液，盖上盖玻片，先在10倍镜下找到细胞，再在40倍镜下看，如看到有疑似融合的，先调焦做第一次确定，如若确定通过，再用100倍镜确定（另外，视野较暗会比较容易观察）。

Feulgen反应

一、实验目的

学习Feulgen反应的原理与操作步骤。

二、实验原理

Feulgen反应是由Feulgen和Rossenbeck于1924年创立，是特异性显示DNA的最经典方法。

它主要包括DNA水解和显色两个反应步骤。

DNA在60℃条件下经稀酸（1mol/LHCL）水解，分子中的嘌呤碱基与脱氧核糖间的糖苷键断裂，在脱氧核糖的一端形成游离的醛基，这些醛基在原位与Schiff试剂反应，形成紫红色的化合物，因此，细胞内含有DNA的部位会呈现紫红色阳性反应。

福尔根反应即可进行DNA定位显示，又可用显微分光光度计惊醒定量分析。

Feulgen反应对组织中的DNA高度专一，组织中除DNA外还有多糖、RNA和其他自由醛基，固定液也可能产生一些醛基。

但是，自由的醛基可能被盐酸酸解消除，绝大多数RNA经1M盐酸在60℃温度下处理会降解为可溶性成分，而多糖在此反应条件下则不会产生裸露的醛醛基。

材料不经过水解或预先用热的三氯醋酸或DNA酶处理，得到的反应是阴性的，从而证明了Feulgen反应的专一性。

三、实验用品

1、材料：

洋葱根尖

2、器材：

解剖刀、镊子、水浴锅、载玻片、盖玻片、

3、药品与试剂:

1mol/L盐酸：

取82.5ml密度1.19g/ml浓盐酸加蒸馏水至1000ml。

Schiff试剂：

称取0.5g碱性品红加入到100ml煮沸的蒸馏水中（用三角瓶），时时震荡，继续煮5min（勿使之沸腾），使之充分溶解。

然后冷却至50℃时用滤纸过滤，滤液中加入10ml1mol/LHCl，冷却至25℃时，加入0.5gNa2S2O5充分震荡后，塞紧瓶塞，在室温暗处理静止至少24h（有时需2~3d），使其颜色褪至淡黄色，然后加入0.5g活性炭，用力震荡1min，然后用粗滤纸过滤于棕色瓶中，封严瓶塞，外包黑纸。

滤液应为无色也无沉淀，贮于4℃冰箱中备用。

如有白色沉淀，就不能在使用，如颜色变红，可加入少许偏重亚硫酸钠或偏重亚硫酸钾，使之再转为无色，仍可使用。

亚硫酸水：

200ml自来水、10ml10％偏重亚硫酸钠或偏重亚硫酸钾溶液、10ml1mol/LHCl，使用前，三者混匀使用。

四、实验步骤

1、将洋葱根尖放在1mol/LHCl中，在60℃水浴锅中保温8~10min。

2、蒸馏水水洗。

3、Schiff试剂遮光染色30min。

4、用新鲜配制的亚硫酸水溶液洗涤3次，每次1min。

5、水洗5min。

6、将根尖放在载玻片上，镊子捣碎，盖上盖玻片，压片。

7、镜检，细胞中凡是有DNA的部位应呈现紫红色的阳性反应。

8、找出根尖正在分裂的细胞，并找出它的前、中、后、末、间等五个时期。

对照组：

先将材料放在5%三氯醋酸中90℃水浴15min，其他步骤同实验组。

细胞凝集反应

一、实验目的

了解细胞膜的结构与功能。

二、实验原理

细胞膜是双层脂镶嵌蛋白质结构，脂和蛋白质又能与糖分子结合为细胞表面的分枝状外被。

目前认为：

细胞间的联系，细胞的生长和分化，免疫反应和肿瘤发生都和细胞表面的分枝状糖分子有关。

凝集素（lectin）是一类含糖（少数例外）的并能与糖专一结合的蛋白质，它具有凝集细胞和刺激细胞分裂的作用。

凝集素使细胞凝集是由于它与细胞表面的糖分子连接，在细胞间形成“桥”的结果，加入与凝集素互补的糖可以抑制细胞的凝集。

三、实验用品

1、土豆块茎

2、显微镜、粗天平、载玻片、滴管2支、离心管2支。

3、PBS缓冲液

NaCl7.2g

Na2HPO41.48g

KH2PO40.43g

H2O1000ml

4、2％的红细胞

四、实验步骤

1、2％的红细胞的制备：

取一定量的红细胞，用生理盐水洗5次，每次2000r/min，离心5min，最后按压积红细胞体积用生理盐水配成2％红细胞液。

2、称取去皮土豆块茎2g，加10mlPBS缓冲液，浸泡2h，浸提液中含有可溶性淀粉土豆凝集素。

3、用滴管吸取土豆凝集素和2％红细胞液各一滴，置于载玻片上，充分混匀，静置20min后，于倒置显微镜下观察血球凝集现象。

4、以PBS液加2％血细胞液作对照实验。

五、实验报告：

简图表示血细胞凝集原理。

细胞膜的渗透性

一、实验目的

了解细胞膜的渗透性及各类物质进入细胞的速度。

二、实验原理

将红细胞放入数种等渗溶液中，由于红细胞对各种溶质的透性不同，有的溶质可以渗入，有的溶质不能渗入，渗入的溶质能够提高红细胞的渗透压，所以水分进入细胞，引起溶血，溶质渗入速度不同，因此溶血时间也不同。

三、实验材料和试剂

1、器材

50ml小烧杯，10ml移液管，试管，试管架。

2、材料：

动物血液

3、试剂：

0.17mol/L氯化钠、0.17mol/L氯化铵、0.17mol/L醋酸铵、

0.17mol/L硝酸钠

0.12mol/L草酸铵和0.12mol/L硫酸钠

0.32mol/L葡萄糖、0.32mol/L甘油、0.32mol/L乙醇和0.32mol/L丙酮

四、实验方法

1、动物血液的稀释：

取1份血液，加入10份0.17mol/L氯化钠溶液即可。

2、低渗溶液：

取试管一支，加入5ml蒸馏水，再加入0.5ml稀释的血液，注意观察溶液颜色的变化，由不透明的红色逐渐澄清，说明红细胞发生破裂造成100％红细胞溶血，使光线比较容易透过溶液。

3、红细胞的渗透性：

取试管一支，加入0.17mol/L氯化钠溶液5ml，再加入0.5ml稀释的血液，并轻轻摇动，注意颜色有无变化？

有无溶血现象？

为什么？

取试管一支，加入0.17mol/L氯化铵溶液5ml，再加入0.5ml稀释的血液，并轻轻摇动，注意颜色有无变化？

有无溶血现象？

若发生溶血，记下时间（自加入稀释血液到溶液变成红色透明澄清所需时间）。

分别在另外几种溶液中进行同样的实验。

步骤同上。

五、实验结果讨论与分析

将观察倒的现象列入下表，对实验结果进行比较和分析。

试管编号

是否溶血

时间

结果分析

1.5mlNaCl＋0.5ml稀释血液

2.5mlNH4Cl＋0.5ml稀释血液

3.5mlNH4Ac＋0.5ml稀释血液

4.5mlNaNO3＋0.5ml稀释血液

5.5ml草酸铵＋0.5ml稀释血液

6.5mlNa2SO4＋0.5ml稀释血液

7.5ml葡萄糖＋0.5ml稀释血液

8.5ml甘油＋0.5ml稀释血液

9.5ml乙醇＋0.5ml稀释血液

10.5ml丙酮＋0.5ml稀释血液

人外周血细胞培养及染色体制备

Ⅰ微量全血培养

1966年以前基本上用Moorhead等1960年建立的人体外周血白细胞培养技术，它的优点是方法比较完善。

缺点是取血量较多，手续较麻烦。

近三十年来国内外绝大多数均采用微量全血培养技术，不但取血量少，而且可略去一些操作过程，如离心、分离血浆等，计数时，既方便，也节省人力与物力，便于推广应用。

一、实验目的

在体外培养外周血淋巴细胞，制备人的染色体

二、实验原理

在活体情况下，进入外周血的小淋巴细胞不能进行增殖，存活一定时间后就死去，由新进入外周血的小淋巴细胞补充。

但在人工离体培养条件下，培养基中的PHA（phytohemagglutinin,植物血细胞凝集素）有刺激小淋巴细胞转化并进行分裂的能力。

此时如加入适量秋水仙素（或秋水酰胺），便可使许多分裂细胞停滞于中期。

采用常规制片技术，即可得到大量含染色体的标本。

三、实验用品

材料

人静脉血

器材

超净工作台、恒温箱、离心机、显微镜、移液管（5ml）、链霉素瓶（或25ml组织培养方瓶）、血浆瓶（100ml）、注射器（1ml、2ml）、烧杯（100ml）、量筒（50ml）、剪刀、镊子、酒精灯、精密PH试纸

试剂

RPMI-1640液（或Eagle’s液），小牛血清、肝素、PHA、双抗（青、链霉素）、5%NaHCO3、2%碘酒、75%酒精、2ug/ml秋水仙素（或2ug/ml秋水酰胺）、淋巴细胞培养基组成，包括人工合成培养液、血清、PHA、肝素、抗菌素等。

人工合成培养液有很多种，一般常用的有TC-199、McCoy5A、HamF-10、HamF-12、RPMI-1640等，PHA（,植物血细胞凝集素）是从豆子（四季豆、雪山大豆、鸡子豆等）经0.85%生理盐水浸渍后提取的一种糖蛋白。

四、实验方法

培养基的制备

将无菌室紫外线灯开放1~2小时，洗和刷手，穿上无菌衣，拖鞋进入无菌室，开启超净工作台，关闭超净工作台的紫外线灯。

用75%酒精擦洗手和各种试剂瓶，然后将RPMI-1640培养液（或其他培养液）、血清、肝素、双抗、PHA等移入工作台上。

取10ml培养瓶（链霉素瓶）1个，内装：

RPMI-1640液4ml

小牛血清1ml

肝素（600IU/ml）0.03ml

PHA（5mg/ml）0.04ml

青、链霉素（青霉素10000IU/ml、链霉素10000ug/ml）0.05ml

（1ml注射器、5#针头、5滴，相当于最终浓度为青霉素100IU/ml，链霉素100ug/ml）

混匀后吸一滴测PH，如偏酸，可加5%NaHCO3，、如偏碱，可加1mol/LHCl，调整至PH6.8~7.0

采血

用肥皂和水洗净供血者之手，再用2%碘酒、75%酒精擦指尖，待酒精完全挥发干后，用无菌采血针或三棱针刺破指尖，用无菌吸管吸血0.3~0.4ml移入培养瓶，轻轻摇动，使血与培养液混匀即可培养。

或用2ml注射器，7#针头，先吸取肝素少许湿润针筒，从肘静脉采血1~2ml，每个培养瓶接种全血0.3ml左右。

亦可去产院取脐带血作培养。

培养

在37±0.5℃温养箱中培养68~72小时，终止培养前6~10小时加秋水仙素（2ug/ml），（或秋水酰胺2ug/ml）用1ml注射器接5#针头加3~4滴，使最终浓度为0.05~0.2μg/ml。

Ⅱ人淋巴细胞染色体标本的制作

一、实验目的

初步掌握染色体标本制作方法及其原理

了解人染色体的形态与数目

二、实验原理

被秋水仙素（或秋水酰胺）停滞于中期的大量分裂细胞，用低渗溶液处理（一般用KCL或其他低渗液）使样品中的红细胞膜破裂，并使分裂细胞和转化的淋巴细胞膨胀，结合离心技术，即可去掉红细胞碎片。

再用固定液（甲醇：

冰醋酸=3：

1）使已膨胀的分裂细胞和转化的淋巴细胞膜破裂，随着分裂细胞膜破裂，染色体被释放出来，并且将其形态固定下来（通过低渗和固定，同时也使细胞质和染色体上部分蛋白质丢失）。

然后采用空气干燥法制片，即可得到满意的染色体标本。

三、实验用品

材料

培养三天的人血

器材

恒温水浴（37±0.5℃）、相差显微镜，水平离心机，药物天平（称量100g），烧杯（100ml），尖底离心管（10ml），吸管，清洁载玻片（制片前放置于40%乙醇溶液中，冰箱4℃至少保存1小时），量筒（50ml），废液杯（500ml），磨口试剂瓶（100ml），酒精灯，橡皮头，试管架，定时钟

试剂

低渗液：

0.4%KCL

固定液：

甲醇，冰醋酸每次在使用前按3：

1新鲜配制

3.Giemsa原液配制

Giemsa染粉1g

甘油（AR）33ml

甲醇（AR）45ml

将染粉倾入研钵，加几滴甘油，在研钵内研磨至无颗粒为止。

此时将全部剩余甘油倒入，置（60±0.5℃）温箱中保温2小时，加入甲醇搅拌均匀，保存于棕色瓶中备用

4.0.067mol/L磷酸盐缓冲液配制（pH6.8）

Na2HPO4.12H2O11.81g

（或Na2HPO4.2H2O5.92g）

KH2PO44.50g

用蒸馏水溶解至1000ml

四、实验方法

经37±0.5℃培养72小时的外周血细胞，终止培养前6~10小时加秋水仙素（2μg/ml），（或秋水酰胺2μg/ml），最终浓度为0.01~0.02μg/ml。

1.由温箱取出培养瓶，用吸管将贴在瓶壁上的细胞轻轻冲散，并用吸管移至尖底离心管内。

2.以1500r/min离心8min。

3.用吸管小心吸去上清液，连同细胞和上清液约留1ml，随即用吸管将细胞团块轻轻冲散。

4.加入8ml0.4%KCl（或0.075mol/L）液，于37±0.5℃水浴低渗处理10min。

同时配置固定液（甲醇3份，冰醋酸1份）。

5.预固定：

加1ml新配置的固定液于已低渗的细胞中，用吸管吹打均匀。

立即以1500r/min离心8min，用吸管除净全部上清液及沉淀上层较透明部分（红细胞碎片）。

6.加新配置的固定液5~6ml，固定20min。

7.1000r/min离心6min，如此反复固定2~3次。

8.固定的细胞经离心后，吸去上层固定液，视管底的细胞多寡加入少量新配置的固定液，将细胞团块轻轻打散成悬液。

9.在干净、湿、冷之载玻片上加2~3滴细胞悬液，在酒精灯上文火烘干（在比较干燥的地方可以不用）。

10.在相差显微镜下观察有无分裂相，如果分裂相不多、分散不好,染色体短,就不要再继续试验。

如果只是分散不好，可用固定液重固定一次，再滴片。

11.在相差显微镜下选择分裂相多，染色体分散好的，用Giemsa染色。

12.Giemsa原液和磷酸盐缓冲液（pH6.8）1:

10配置成Giemsa磷酸盐缓冲液染液，将玻片标本面朝上平放于玻璃支架上，每片滴加染液3~4ml，染色10min。

13.自来水细流冲洗1~2s，空气干燥。

即可作显微摄影，进一步分析用。

五、实验结果

取一张人的淋巴细胞染色制片，用Giemsa染液染色。

在低倍镜下可观察到中期分裂相。

可见散在中期分裂相间的被去掉细胞膜和细胞质的转化大小不同的间期淋巴细胞核。

六、作业

1.先在低倍镜下观察中期分裂相的形态，再提高倍镜观察，计算一个中期分裂相的染色体数目。

2.选择分散适度，染色体不重叠的中期分裂相，绘制染色体图，注明染色单体，着丝粒，长短臂，次缢痕和随体的位置，以及染色体的类型，并注明性别。

3.在制作人的淋巴细胞染色体标本时应注意些什么问题？

动物细胞培养

细胞培养是用无菌操作的方法将动物体内的组织（或器官）取出，模拟动物体内的生理条件，在体外进行培养。

使其不断地生长、繁殖，人们借以观察细胞的生长、繁殖、细胞分化以及细胞衰老等过程的生命现象。

细胞培养的突出优点，一是便于研究各种物理、化学等外界因素对细胞生长发育和分化等的影响；二是细胞培养便于人们对细胞内结构（如细胞骨架等）、细胞生长及发育等过程的观察。

因而细胞培养是探索和指示细胞生命活动规律的—种简便易行的实验技术，同时我们也不可忽略的另一个因素，那就是它脱离了生物机体后的—些变化。

细胞培养技术目前已广泛地被应用于生物学的各个领域。

如分子生物学、细胞生物学、遗传学、免疫学、肿痛学及病毒学等

本实验分三次进行.即清洗与消毒、鸡胚原代和传代细胞的培养与观察。

Ⅰ清洗与灭菌

一、实验目的

1.了解细胞原代培养、传代培养的基本操作方法；

2.掌握细胞培养过程中的无菌操作技术；

3.学习倒置显微镜的使用及培养细胞的观察。

二、实验原理

清洗与消毒是组织培养实验的第一步，是组织培养中工作量最大，也是最基本的步骤。

体外培养细胞所使用的各种玻璃或塑料器皿对清洁和无菌的要求程度很高。

细胞养不好与清洗不彻底有很大关系。

清洗后的玻璃器皿，不仅要求干净透明，无油迹，而且不能残留任何物质。

如有毒的化学物质，也可能影响细胞生长。

灭菌手段的选择十分重要，对不同的物品需采用不同的灭菌方法。

假如选用的方法不对，即使达到了无菌却使被灭菌药品丧失了营养价值、生物学特性或其他使用价值也不行。

以下在每种灭菌步骤中都介绍其使用范围。

三、实验材料、用品

材料：

无臭氧型紫外灯，微孔滤膜（直径25）：

孔径为0.22μm，微孔滤膜（直径90）：

孔径为0.22μm，过滤器（直径25）。

药品：

70％或75％酒精，0.1％新洁尔灭，煤酚皂溶液（来苏儿水），0.5％过氧乙酸，乳酸，37％甲醛，高锰酸钾，NaOH，盐酸，重铬酸钾，浓硫酸（工业），DEPC水[体积分数0.1％的焦炭酸二乙酯。

仪器：

超净台，干燥箱，高压锅，过滤器，过滤泵。

四、实验步骤

（一）清洗

1.新玻璃器皿的清洗先用自来水刷洗，再浸泡5％稀盐酸以中和玻璃表面的碱性物质和其他有害物质。

2.使用过的玻璃器皿的清洗

（1）使用过的培养用品应立即浸入清水，避免干涸难洗。

（2）用洗涤剂清洗玻璃器皿，自来水清洗数遍，倒置自然干燥。

（3）浸酸性洗液过夜。

（4）从酸性洗液捞出后自来水冲洗10~15次去除残余酸液，蒸馏水涮洗3次，倒置烘干。

（5）包装（牛皮纸或一般纸）。

（6）高压（15磅20min）或干热（170℃2h）灭菌。

（7）贮存备用。

3.胶塞的处理

（1