专业技能大赛实习报告.docx
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专业技能大赛实习报告
动物科学学院
2013专业技能大赛实习报告
专业:
动物科学
年级:
动科111
姓名:
罗师红
学号:
1109050106
指导教师:
刘若余
2013.7.13
目录
目标………………………………………………………………3
时间………………………………………………………………3
地点………………………………………………………………3
评委老师…………………………………………………………3
参与学生…………………………………………………………3
实验项目…………………………………………………………3
实验材料…………………………………………………………4
实验一……………………………………………………………4
实验二……………………………………………………………10
实验三……………………………………………………………15
实验四……………………………………………………………16
心得体会…………………………………………………………19
实践教学(竞赛)
一、目标
为了更好的让动物科学专业学生掌握动物生产基本专业技能,根据贵州大学2010年本科培养方案计划安排,结合动科院的实际情况,于本学期7月13日开展专业技能大赛。
目的是让动科专业的学生能够掌握基本的专业技能,提高学生专业学习的兴趣和实践动手能力,实现“科研、教学、实践”相统一。
二、时间
2013年7月13日
三、地点
贵州大学教学实验场,兽医院。
四、评委老师
杨胜林罗卫星、杨正德、许厚强、燕志宏、刘若余、张依裕、陈胜昌陈伟张福平陈祥赵佳福李辉。
五、参与学生
2010、2011、2012级动科班全体学生。
其中2010、2011级为参与者,2012级学生为观摩者。
六、实验项目
1、鸡的体尺测量、翅静脉采血、红细胞计数。
2、鸡的屠宰测定。
3、羊的体尺测量
4、猪的精液品质检查
七、实验材料
1、实验动物:
鸡1只,羊1只。
2、实验耗材:
手术器械1套,显微镜1台,血细胞计数板1个,计数器1个,EDTA-Na2和氯化钠各1瓶,盖玻片2块,吸血管1包,计数器5个,试镜纸10本。
八、实验过程及结果
实验一鸡的体尺测量、翅静脉采血、红细胞计数
[实验目的]
通过实习要求熟悉、掌握下列基本技能:
1、保定家禽的方法;
2、认识禽体外貌部位的名称;
3、家禽的体尺测量。
[操作方法]
1、保定家禽:
鸡的保定方法是先用右手放在鸡的背上,同时迅速用左手拇指和食指夹住鸡的右腿,无名指和小指夹住鸡的左腿,使鸡胸腹部置于左掌中,并使鸡的头部向着鉴定者从笼中取出,这样把鸡保定在左手上不致乱动,又可以随意转动左手,以便观察鸡体各部。
2、禽体外貌部位的识别:
按禽体各部位,从头、颈、肩、翼、背、胸、腹、臀、腿、胫、趾和爪等部位仔细观察。
鸡的头部有冠,冠有多种形状,如单冠、羽毛冠,玫瑰冠、豆冠、杯状冠、草莓冠等但在国内以单冠、玫瑰冠和豆冠比较普遍。
[家禽体尺的测量]
为了研究家禽生长发育和品种的体格特征,除用外貌观察叙述外,还可用体尺测量数据表示,目前在养鸡生产上,大群养鸡已不采用体尺测量,但对研究品种特征,进行品种调查时,体尺测量仍有一定意义。
①体斜长:
为了了解禽体在长度方面发育情况,用皮尺测量锁骨前上关节到坐骨结节间的距离。
②胸宽:
了解禽体的胸腔发育情况,用卡尺度量两肩关节间距离。
③胸深:
了解胸腔.胸骨和胸肌发育状况,用卡尺度量第一胸椎至胸骨前缘间的距离。
④胸骨长:
了解体躯和胸骨长度的发育情况,用皮尺度量胸骨前后两端间距离。
⑤胫长:
了解体高和长骨的发育,通常采用测量胫的长度的方法。
用卡尺度量跖骨关节,到第三趾与第四趾间的垂直距离。
⑥胸角:
了解肉鸡胸肌发育情况,采用测量胸角的大小来表示。
方法是将鸡仰卧在桌案上,用胸角器两脚放在胸骨前端,即可读出所显示的角度.理想的胸角应在90°以上。
在进行实习体尺测量之前应指出测量时用到的各种骨骼部位。
在测量后应把每项数据记载于体尺表中:
表1 鸡体尺测量结果表 单位:
㎏、㎝、
体重
体长
胸深
胸宽
胫长
胸骨长
0.7kg
19.2cm
4.0cm
6.1cm
8.6cm
9.5cm
[鸡的翅静脉采血]
一人用一只手保定住鸡头,另一只手保定住鸡的两脚和不采血的一只翅膀,在鸡身下垫一硬物,把鸡头朝上,使鸡心脏高于要采血的鸡翅膀,(这样便于血向下流)另一人用左手掌压住要采血的鸡翅膀,并用拇指和食指压紧要采血的静脉血管并稍微向两外侧用力,使血管紧贴于皮下不再晃动,右手拿采血注射器在左手拇指和食指压紧处(针头朝血管上端)轻轻刺入,针头与血管约成10度,待回血后用右手拇指和食指轻轻保持针头不要晃动,右手小指轻轻钩拉注射器,使血液慢慢流入注射器。
[鸡的红细胞计数]
[实验要求]
学习红细胞的方法。
[实验原理]
血液中血细胞的计算是使用血细胞计数板。
而且要用适当的溶液稀释后,放入计数板的计数室内,在显微镜下计算一定容积血液稀释中的血细胞个数,再将所得结果换算为1mm3血液中的血细胞个数。
[动物与器材]
鸡、血细胞计数板、血红蛋白吸管、1ml和5ml吸管、表面皿、显微镜、刺血针、酒精棉球、红细胞稀释液、白细胞稀释液、95%酒精、乙醚、1%氨水。
[方法与步骤]
1.采血及稀释用1ml吸管吸取0.38ml白细胞稀释液放入表面皿内备用。
另用5ml吸管吸取3.98ml红细胞稀释液放入表面皿内备用。
用酒精棉球消毒兔的耳缘静脉采血部位,用刺血针刺破血管,让血液自然流出,擦去第一滴血,待流出第二滴血时,用血红蛋白吸管吸血至刻度20mm3处,将血液吹入盛有白细胞稀释液的表面皿内,吸上清液冲洗沾在管壁上的血液。
立即将吸管洗净和干燥备用。
再用同样方法吸取血液至刻度20mm3处,将血液吹入盛有红细胞稀释液的表面皿内,轻轻摇匀。
2.血细胞计数板的结构计数板是一块特制的长方形厚玻璃板,板面的中部有4条直槽,内侧两槽中间有一条横槽把中部隔成二长方形的平台。
此平台比整个玻璃板的平面低0.1mm,当放上盖玻片后,平台与盖玻片之间的距离(即高度)为0.1mm。
平台中心部分各以3mm长,3mm宽精确划分为9个大方格,称为计数室,每个大方格面积为1mm2,体积为0.1mm3。
四角的大方格,又分为16个中方格,适用于白细胞计数中央的大方格则由双线划分为25个中方格,每个中方格面积为0.04mm2,体积为0.1mm3。
每个中方格又各分成16个小方格,适用于红细胞计数。
稀释后的血液滴入计数室前将表面皿摇振1-2min。
将盖玻片放在计数板正中,用小吸管吸取摇匀的释液血液,将一小滴血液滴在盖玻片边缘的玻片上,使释液血液借毛细血管现象而自动流入计数室内。
如滴入过多,溢出并流入两侧深槽内,使盖玻片浮起,体积改变,会影响计数结果,需用滤纸片把多余的溶液吸出,以深槽内没有溶液为宜。
如滴入溶液过少,经多次充液,易造成气泡,应洗净计数室,干燥后重做。
红细胞和白细胞的计数,各使用一计数室。
3.计数血液稀释液滴入计数室后,须静置2-3min,然后在低倍镜下计数。
计数时应循一定的路径,对横跨刻度上的血细胞,依照“数上不数下,数左不数右”的原则进行计数。
计数白细胞时,如发现大方格的白细胞数目相差8个以上;计数红细胞时,如中方格的红细胞数目相差20个以上,表示血细胞分布不均匀,必须把稀释液摇匀后重新计数。
4.计算
红细胞数:
将中央大方格中的5个中方格内数得红细胞总数乘以10,000,即得每mm3血内的红细胞总数,因为:
(1)稀释液3.98加入血20mm3(即0.02ml),使血细胞稀释200倍,换算成未稀释血时应乘以200。
(2)在计数室内只计数0.02mm3(即1个中方格的容积为0.2×0.2×0.1=0.004mm3,5个中方格的容积为0.0045=0.02mm3),换算成每mm3时应乘以50。
这样把5个中方格内数得的红细胞总数乘以10,000(即200×50=10,000)即得每mm3血内的红细胞总数。
5.实验结果
5个中方格内数得的红细胞总数为284个,再乘以10000
即每mm3血内的红细胞总数为2.84百万个。
实验二鸡的的屠宰测定
[实验目的与要求]
1、学习鸡屠宰方法和步骤,掌握屠宰率测定及计算方法。
2、了解鸡体内各器官的相互关系和解剖结构。
[材料和用具]
鸡一只、解剖刀、手术剪、镊子、解剖台、台秤、电子秤、温度计、瓷盘、骨剪、胸角器、皮尺、粗天平、吊鸡架、承血盆。
[内容和方法]
1、鸡的屠宰测定
(1)宰前的准备
①家禽屠宰前必须先禁食12-24h,只烘饮水,其目的既可节省饲料还可使放血完全,保证肉的品质优良和屠体美观。
②屠宰前为避免药物残留,应按规定程序停止在饲料中添加药物。
③称活体重。
(2)放血
①颈外放血法 左手握鸡两翅,将其颈向背部弯曲,并以左手拇指和食指固定其头,同时左手小指勾住鸡的一脚。
右手将鸡耳下颈部宰杀部位的羽毛拔净后用刀切断颈动脉或颈静脉血管,放血致死。
血放于承血盆中。
②口腔内放血法 将鸡两腿分开倒悬于吊鸡架上,左手握鸡头于手掌中并用拇指及食指将鸡嘴顶开,右手将解剖刀的刀背与舌面平等伸入口腔,待刀伸入至左耳部时将刀翻转使刀口朝下,用力切断颈静脉和桥形静脉联合处(附图8-1之I),然后再将刀抽出转向硬腭处中央裂缝中部(两眼间)斜刺延脑,破坏脑神经中枢。
此法使屠体没有伤口,外表完整美观,放血完全,死亡快。
以上两种方法待血流尽后立刻称体重求得血重。
此外,还有电刺法适用于火鸡、鹅等体重大的家禽。
(3)拔毛
①干拔法 应用口腔内放血宰杀的家禽可用干拔法,在血放尽后,将羽毛拔去。
注意勿损伤皮肤。
②湿拔法 在血放净后,用50-80℃的热水浸烫,让热水渗进毛根,因毛囊周围骨肉的放松而便于拔毛。
注意水温和浸烫时间要根据鸡体重的大小、季节差异和鸡的日龄而异,不宜太高温度和浸烫太久。
一般以能拔下毛而不伤皮肤为准。
拔毛顺序为:
尾—翅—颈—胸—背—臀—两腿粗毛—绒毛。
拔完羽毛后沥干水称屠体重并求毛重。
(4)屠体外观检查 检查屠体表面是否有病灶、损伤、淤血。
如鸡痘、肿瘤、胸囊肿、胸骨弯曲、大小胸、脚趾瘤、外伤、断翅或淤血块等。
(5)基本测量 用手术刀按附图8-2作第一切线、第二切线和尾根部切线。
测量以下指标:
①胸角宽 测量胸角宽常以胸角度表示,理想的胸角度应在90°以上。
方法用胸角器在胸骨前的吻突向下垂直,不要过紧夹住胸肌,自然夹角形成的角度数即为胸角宽度(附图8-3)
②皮下脂肪厚 从尾根部切线向上沿第一切线剥离两侧皮肤,用游标卡尺测量此处的皮脂厚。
游标卡尺应轻轻卡住,不要用力挤压③肌间脂肪宽 将胸部的皮掀开,在胸骨侧突的部位用游标卡尺测量脂肪带的宽度。
(6)分割、去内脏 割除头、颈、脚。
脚从踝关节分割并剥去脚皮、趾壳,头从枕寰关节处割下,颈部从肩胛骨处割下。
分别将头、颈、脚称重填入表中。
为防止屠体污染,开腹前先挤压肛门,使粪便排出。
在胸骨剑突与泄殖腔之间切一切,掏出内脏,仅留肺脏和肾脏。
(7)屠宰测定项目
①活重;指在屠宰前停饲12h后的重量。
②放血重;禽体放血后的重量。
③屠体重;禽体放血、拔毛后的重量(湿拔法需沥干)。
④胸肌重;将屠体胸肌剥离下的重量。
⑤腿肌重;将禽体腿部去皮,去骨的肌肉重量。
⑥半净膛重;屠体重去气管、食管、嗉囊、肠、脾脏、胰腺和生殖器官。
留下心脏、肝脏(去胆)、肺脏、肾脏、腺胃、肌胃(去除内容物及角质膜)和腹脂的重量。
⑦全净膛重;半净膛重去心脏、肝脏、腺胃、肌胃、腹脂及头、颈、脚。
留肺脏、肾脏的重量(鸭、鹅保留头、颈、脚)。
⑧腹肌重;包括腹脂(板油)及肌胃外脂肪。
⑨翅膀重;从肩关节切下翅膀称重。
分割翅分为三节:
翅尖(腕关节至翅前端)、翅中(腕关节与肘关节之间)和翅根(肘关节与肩关节之间)。
2、泌尿生殖系统和消化系统的观察
(1)准备
①屠宰方法、屠体外观检查,同前述。
②切开胸侧壁与大腿间的皮肤,用力掰开髋关节,让其脱臼。
这样屠体可稳定地呈仰卧姿势。
③在胸剑突下方横切一刀,切口伸向腹部两侧。
再从切口下缘沿腹部中线纵向切开腹腔,露出腹腔脏器。
④从腹壁两侧,沿椎骨肋与胸骨肋结合的关节处,纵向向前剪开至肩关节处,再用骨剪剪断锁骨和乌喙骨。
稍用力向上掀开整个胸壁,露出胸腔脏器。
(2)观察 先总体观察胸腔、腹腔各脏器位置,并观察气囊。
①生殖系统
母鸡观察:
a.卵巢:
识别卵泡、卵泡囊外的血管和卵泡带(破裂缝)以及排卵后的卵泡膜;b.输卵管:
观察输卵管的漏斗部(伞部、腹腔口、颈部)膨大部(蛋白分泌部)、峡部、子宫部、阴道部和输卵管在泄殖腔的开口等部分的位置、形态及分界处。
公鸡生殖器官:
睾丸、附睾和输精管的形态、位置。
②消化系统 首先摘除母鸡输卵管,然后剪开口腔,露出舌和上颌背侧前部硬腭中央的腭裂(位于相对于两眼位置,为斜刺延脑位置)。
从上至下依次观察:
口腔(喙、舌、咽);食管和嗉囊(鸭为纺锤形的食道膨大部);腺胃(切开露腺胃乳头突起);肌胃(切开露出角质膜);小肠(十二指肠、空肠、回肠)以及胰腺、胆囊、肝脏;大肠(盲肠、直肠)以及盲肠扁桃体;泄殖腔。
③泌尿系统 摘除消化器官,露出紧贴于鸡腰部内侧的泌尿系统,包括肾脏、输尿管和泄殖腔。
④其他脏器 观察 心脏、肺脏、脾脏、法氏囊、胸腺、坐骨神经和卵黄柄(美克耳氏憩室)等等。
实验三羊的体尺测量
[羊的外貌部位名称]
羊的体型外貌在一定程度上能反映出生产力水平的高低,为区别、记载每个羊的外貌特征,就必须识别羊的外貌部位名称。
[羊的体尺测量]
1.目的意义:
测量体尺用于确定羊的生长发育情况。
2.注意事项:
测量时,场地要平坦,站立姿势要端正。
3.测量工具:
测杖、卷尺和圆形测定器。
4.测定项目:
主要有体高、体长、胸围、管围、十字部高、腰角宽等,根据目的而定,但必须熟悉主要的测量部位和基本的测量方法。
表2 羊体尺测量结果表 单位:
㎏、㎝、
体长
体高
胸宽
胸深
胸围
腕围
69cm
56cm
18cm
29cm
75.3cm
9.8cm
实验四精液品质测定
[实验目的]
熟悉肉眼检查精液品质的方法
掌握精子活率的检查方法
掌握精子密度计数法测定精液密度方法
[实验材料]
材料:
新鲜公猪精液
器械及用品:
显微镜、载玻片、玻棒、0.9%Nacl溶液、3%
盐水、血球计数板、计数器、5ml试管、移液管(50ul、1000ul)。
[实验内容]
肉眼检查精液品质
精子活率的评定
精液密度的检测
肉眼检查精液品质
射精量:
将采集的精液倒入有刻度的试管或集精杯中,测量其容量。
各种家畜的平均射精量(ml):
牛6(4~8),羊1.0(0.75~1.2),猪250(200~300),马70(30~100)。
如果精液量太少,表明有问题(健康原因或采精不当)。
色泽、气味:
家畜的精液通常为乳白色,因畜种和个体不同而有浓淡的差异。
马、猪精液稀薄,灰白色;牛、羊精液浓密,为浓乳白色。
无味或略带腥味。
云雾状的观察:
取原精液一滴于载波片上,不加盖玻片,用低倍显微镜观察精液滴的边缘部分。
可见牛、羊精液翻腾滚动的云雾状态。
猪、马精液无此现象。
精液活率评定
精子活动形式:
直线运动、旋转运动、原地摆动。
评价精子活率是根据直线前进动的精子数量的多少来确定。
精子活力=直线运动精子精/总精子数×100%,十级制——在显微镜下估计直线前进运动精子所占百分数,直线前进运动精子为100%者评为1.0级;90%者评为0.9级,依此类推。
精子的密度检测
精子密度计数板(器)简介
精子计数室长宽各1mm,面积1mm2高度0.1mm,体积0.1mm3
由双线或三线组成25个(5X5)中方格,每个中方格内有16个小方格(4X4)共计400个小方格
精液的稀释
稀释液:
3%氯化钠溶液,用以杀死精子,便于计数猪精液稀释10倍方法:
用移液管吸200ul精液和1800ul(1.8ml)3%NaCl稀释液,在试管中稀释.
3.用移液器注入精液
4.精子计数
首先用100倍找到计数室,再用400倍找到计数室的第一个中方格。
5.计算精子密度计算
精子密度=5个中方格总精子数×5×10×1000×10
倍
注意:
为了减少误差,必须进行2-3次计数,求出
平均数,即为所确定的精子数。
6.实验结果
第一次5个中方格总精子数为745个,第二次5个中方格总精子数为867个.
取两次的平均数5个中方格总精子数为806个,所以实验结果为精子密度为:
0.403亿个/ml
九、心得体会
通过这次大赛,我主要从两个方面来概述:
一、不足之处:
第一,做实验不够仔细、认真。
细节决定成败,对于这次比赛,实验本身不是很难,很大部分出错在细节上面,细微差异会对整个操作流程有很大影响。
第二,对每个实验的熟悉程度还是不够。
原本以为自己在血细胞计数弄清楚了,但是在比赛时,遇到血细胞计数都不会做,虽然根据自己的分析做了,但是并不能保证自己做的是对是错。
因此,自己并没有做到把每个实验涉及的每个相关业务都弄清楚明白。
第三,骄兵必败,谦虚使人进步,骄傲使人落后。
无论题目是简单还是困难,实验小还是大,我们都必须谨慎小心,不要轻视它,应该做到每一步、每一个环节都稳、准、正确。
二、比赛感悟:
第一,大赛有助于提高综合素质。
首先,学会在错误和失败中成长,在每一次的练习过程中,我们会遇到各种各样的错误,学会从错误中学习,在失败中成长,我们经历的每一次错误和失败都能更好的激发我们的斗志,激励我们勇往直前。
其次,要学会随机应变,当遇到突发状况,如何在巨大的压力和时间紧张的情况下处理好突发状况,需要我们沉着冷静的思考和随机应变的能力。
最后,团队的合作起着至关重要的作用,一个涣散的团队是不可能取得成功的,优秀的团队成员应该优势互补,各司其职。
第二,有助于将所学的专业知识融会贯通、综合运用。
涉及的知识面比较广,
第三,对自己的成长很有很大帮助。
一次次的比赛,从阅历上,给自己增添了一笔色彩,也拓展了自己的视野。
在竞争激烈的比赛中,我们能够脱颖而出,但是,在如今这个现实的社会中,我们也必须给自己一个定位,超越自我,才能赢得掌声。
在这次比赛中,感谢学院领导及老师对我们的大力支持,感谢队友之间的团结互助,比赛是短暂的,收获是长久的,祝愿我们的明天会更好!