利用基因工程酵母生产抗疟疾药物前体青蒿酸.docx

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利用基因工程酵母生产抗疟疾药物前体青蒿酸

利用基因工程酵母生产抗疟疾药物前体--青蒿酸

Dae-KyunRo1*,EricM.Paradise2*,MarioOuellet1,KarlJ.Fisher6,KarynL.Newman1,JohnM.Ndungu3,

KimberlyA.Ho1,RachelA.Eachus1,TimothyS.Ham4,JamesKirby2,MichelleC.Y.Chang1,SydnorT.Withers2,YoichiroShiba2,RichmondSarpong3&JayD.Keasling1,2,4,5

（杨豫鲁翻译）

摘要：

疟疾这种疾病威胁着全球三至五亿人的健康，并且每年杀死超过一百万的人口。

抗药疟原虫突变系Plasmodiumfalciparum2,3的出现更严重阻碍了对这种疾病的控制。

虽然人工合成的抗疟药以及相关疫苗已经出现，但其针对疟疾的治疗效果仍需经受严格的临床检验4，5。

而青蒿素，一种从ArtemisiaannuaL（菊科植物，俗称青蒿）中提炼出来的倍半萜内酯环内过氧化物（C-15倍半萜），对抗药性疟原虫Plasmodiumspp的抑制效果非常明显。

可惜的是其供给量受自然因素等各方面限制，疟疾患者大都难以承受其昂贵的价格6。

青蒿素的人工全合成也非常困难，而且花费很大7。

不过利用微生物工程发酵合成其前体青蒿酸（一种合成青蒿素的可靠来源）,却是一个相对来说比较廉价、环保和高效的办法8，9。

这里我们将介绍如何通过基因工程途径改造啤酒酵母使其高效合成青蒿酸（最高可达100ug/L）：

对其甲羟戊酸途径进行调控，并且转入编码amorphadiene（ 等价于amorpha-4,11-diene，合成青蒿酸及青蒿素的最直接的前体原料）合酶和一种特异的细胞色素P450酶（CYP71AV1）的基因。

这两种酶均源自青蒿，而且后者经过三步氧化作用将amorpha-4,11-diene转变成青蒿酸。

青蒿酸合成后被转运到胞外并附着在酵母外表面上，这意味着通过简单且廉价的纯化过程就可以获得目标产物。

尽管这种基因工程酵母合成青蒿酸的能力相对于青蒿来说已经十分显著，仍需急切解决问题的是如何提高其生产效率从而扩大至工业规模生产，以便可以生产出足够多的青蒿酸来降低现有青蒿素的价格，让青蒿素综合疗法可以广泛地被应用到对疟疾的治疗中去。

内容:

我们通过三个步骤构建能合成青蒿酸的基因工程酵母：

（1）改造酵母焦磷酸法尼酯（FPP）生物合成途径中的相关基因，增加FPP的合成并且设法减少它作为固醇类物质的前体去合成固醇；

（2）将青蒿中的amorphadiene合酶基因ADS转入到高FPP生产株中，从而转化FPP为amorphadiene；（3）克隆青蒿中特异的细胞色素P450酶基因（这种酶通过三步氧化将amorphadiene氧化成青蒿酸）并使其在amorphadiene生产株内表达（见图1）。

青蒿素生物合成的第一步反应由ADS10催化，它已经被鉴定并且用于在大肠杆菌

图1|图中所示为同时表达CYP71AV1和CPR的基因工程啤酒酵母菌株EPY224中青蒿酸的合成途径。

蓝颜色显示的是啤酒酵母甲羟戊酸合成途径中被直接正调节的基因；紫色显示的是因upc2-1表达被间接正调节的基因；红线指示菌株EPY224中被抑制的ERG9；绿色箭头指示从焦磷酸法呢酯到青蒿酸的生物合成途径，这条途径已经从青蒿被完全引入到啤酒酵母当中，在CYP71AV1和CPR共同作用下经过三步氧化将amorphadiene转变为青蒿酸。

途径中间产物IPP,DMAPP和GPP分别代表异戊烯焦磷酸酯、二甲基丙烯焦磷酸酯和焦磷酸牻牛儿酯。

中合成amorphadiene11。

为了确定对是否要促进细胞内FPP的合成，我们将ADS基因插入由GAL1启动子控制转录的pRS425质粒中，然后在酵母细胞中表达，结果显示单独转入ADS基因的酵母只合成少量的amorphadiene（图2，菌株EPY201，4.4mg/L）。

图2|柱状图显示基因改造过程不同阶段啤酒酵母菌株的amorphadiene合成能力，这些菌株的详细介绍请见正文。

为减小实验误差，均在同一条件下培养144小时后取样测定，amorphadiene合成水平也被定量化。

纵坐标表示总产量，为平均值±标准差（n=3）。

所以，为了提高啤酒酵母合成amorphadiene的能力，我们对FPP合成途径进行了总共五次的基因工程改造。

几个与FPP合成相关的基因的表达被正调控，而另外几个促使FPP转变成固醇的基因被负调控。

同时为了保证宿主菌株的遗传稳定性，所有这些对宿主细胞进行的修饰都是通过染色体融合进行的。

具体过程如下：

首先，将一种截短的水溶性酶3-羟基-3-甲基-戊二酰辅酶A还原酶（我们所学生化书中为译为β-羟基-β-甲基-戊二酰辅酶A还原酶，简称HMGCoA还原酶，又简称tHMGR12，是固醇合成的限速酶）过表达，可提高amorphadiene的合成产量近五倍（图2，菌株EPY208）；其次，利用一个methioninerepressible启动子（PMET3）13，通过对编码鲨稀合酶（固醇生物合成途径中FPP合成后第一步）的ERG9基因进行负调控，可将amorphadiene的合成量再增加两倍（图2，菌株EPY225）；然后，尽管upc2-1,　一个可以加强UPC２（啤酒酵母中调节固醇合成的一个的通用转录因子）14活性的半显性突变体等位基因，在已有菌株EPY208背景下过表达（图2，菌株EPY210）对amorphadiene合成的提高起的作用并不显著，但结合对ERG9基因的负调控，其过表达可将amorphadiene的合成量提高到105mg/L（图2，菌株EPY213）；再次，在酵母染色体更远处在转进一个tHMGP拷贝可以将将其合成量再增加50%达到149mg/L（图2，菌株EPY219）；最后，虽然编码FPP合酶的基因（ERG20）过表达对amorphadiene合成总量（图2，菌株EPY224）的提高效果非常小，但在细胞密度降低的情况下其合成量却可增加10%。

将所有这些对基因的修饰综合在菌株EPY224上，amorphadiene的合成量已经达到了153mg/L,是之前所报道这种倍半萜（烯）最大合成水平的几乎500倍15。

（王易龙翻译）

现在我们已经得到了可以高效合成amorphadiene的酵母菌株，但为能将amorphadiene转变成青蒿酸，我们还需要找到并分离出青蒿中编码催化amorphadiene转变成青蒿酸的酶的基因。

青蒿素是一种倍半萜内酯衍生物，这些衍生物在菊科植物中普遍存在，是一类十分有特性的细胞次级代谢产物。

我们假定菊科植物在半倍半萜内酯的合成的前几步中利用的是源于同一祖先的合成酶，据此对菊科植物进行了一次基因组比较分析。

由于先前已经有文章报道过对青蒿的无细胞化验，并且证明在青蒿中是一种特异的细胞色素P450酶17对amorphadiene进行专一性羟化（图1）。

我们直接从由向日葵和莴苣这两种菊科作物提供的基因数据构建的已表达序列标志（EST）数据库中检索得到细胞色素P450已表达序列标志（ESTs）。

然后通过使用针对CYP71和CYP82家族（P450酶在菊科植物中最多的两个家族）高度特异的简并引物，从青蒿毛状体细胞的互补DNA库中分离出几个特定的P450片段。

接着利用BLAST分析法18将这些片段与向日葵和莴苣的ESTｓ比对，我们惊奇地发现有一个青蒿P450基因片段与来自以上两种植物的未知功能ESTs序列非常相似（氨基酸水平上达相似度达85-88%），而同其他非菊科植物的P450序列相似度较低（氨基酸水平上小于50%）。

这表明相对于非菊科植物，P450基因在这三个亲缘关系较远的菊科植物属中是高度保守的。

因此，从青蒿中分离出的这段P450基因是编码菊科保守性倍半萜内酯生物合成酶一个非常好的候选者。

随后相应的完整P450cDNA（CYP71AV1），一个编码495个氨基酸的开放阅读框，成功从青蒿中分离获得。

系统进化分析法显示CYP71AV1和其他的P450s（像催化类单萜羟化的CYP71D13/1819、催化倍半萜羟化的CYP71D2020以及二萜类化合物羟化的CYP71D1621）有很近的亲缘关系。

这进一步表明从青蒿中获得的P450在萜类化合物代谢中存在的潜在作用。

为了保证异源表达的CYP71AV1可以发挥正常功能，协同它进行氧化还原反应的天然配体，NADPH：

细胞色素P450氧化还原酶（CPR），同样从青蒿中成功分离，并且其生化活性已经在体外被证实。

（细胞色素c和NADPH　的米氏常数（Km）分别为4.3±0.7μM和23.0±4.4μM（平均值±标准差,n＝3））。

在配体分子CPR的参与下，我们研究了在活细胞体内CYP71AV1是否可以催化amorphadiene转变为多级氧化产物：

转基因酵母株EPY224中被转入了一个整合有CPR和CYP71AV1基因并且由半乳糖诱导启动子调控的基因载体，经半乳糖的诱导表达后，用醚对酵母细胞体和培养基分别进行抽提，并对馏分进行气象色谱—质谱联合分析（GC–MS）。

分析结果显示，在同时表达CYP71AV1和CPR的细胞株EPY224细胞体及其培养基中，一个独特的单色谱峰被检测出，但是在只表达CPR的EPY224中并未检测到这个峰，并且，几乎95%的这种特异化合物是来源于细胞体的。

而且这种化合物的电子碰撞质谱和保留时间与从青蒿中提取的青蒿酸的完全吻合（图3）。

在摇瓶培养条件下，同时表达CYP71AV1和CPR的EPY224菌株青蒿酸产量为32±13mg/L（平均数±标准差,n＝7）。

更为重要的是，其中间代谢产物，青蒿醇和青蒿醛在细胞体和培养基中被检测到的量几乎可以忽略（青蒿醇的量比青蒿素酸的5%还少，并且根本没有青蒿醛被检测出）。

我们证实，通过用碱性缓冲液（pH为9的Tris-HCL缓冲液中添加1.2M的山梨醇）清洗胞体沉淀物，绝大部分合成的青蒿酸（>96%）可以而被分离出，而且冲洗之后细胞体和培养基中的残留量仅为2%。

青蒿酸不仅可以被高效的转移到细胞外，且在酸性条件下经过质子化后会被束缚在细胞表面。

利用这个特点制定了一种便捷提纯方法：

用醚对清洗缓冲液进行抽提，然后经过一步简单的凝胶柱层析分离抽提物，就可以得到纯度高于95%的青蒿酸。

在一个一升发酵罐中，青蒿酸的产量为115mg，而通这种方法的，我们可以得到76mg的提纯产物。

最重要的是，经1Hand13C原子核磁共振检测显示，这种酵母合成青蒿酸与从青蒿中直接提取的青蒿酸分子结构完全一样，并且同先前的文献报道十分吻合22，23。

因此，可以确定我们所得到的这株转基因酵母能够直接合成结构功能上完全正确的青蒿酸。

（周景峰翻译）

转基因酵母在生产青蒿酸时需要的生物量与青蒿相比，其细胞体干重的4.5%相当于青蒿中1.9%的青蒿酸和0.16%的青蒿素，但是所需的时间非常短（酵母4-5天，而青蒿则需要几个月的时间）。

因此，转基因酵母菌珠的单位生产效率比青蒿高了近两个数量级。

P450酶三步氧化法曾在植物赤霉素生物合成途径中有过报道24，25。

我们通过体外酶法检测CYP71AV1是否在amorphadiene转化为青蒿酸的三个过程中都起到催化作用。

从啤酒酵母菌株YPH499中分离微体，这些微体仅表达CPR或者同时表达CPR和CYP71AV1。

将微体在不同的合成途径中间体（amorphadiene，青蒿醇，青蒿醛）条件下进行培养（图4）。

对照组微体仅表达CPR，没有催化任何合成途径中间体以到更高级的氧化产物。

但是我们发现包含CYP71AV1和CPR的微体将amorphadiene、青蒿醇和青蒿醛更加高效地转化成了青蒿酸。

这些体外实验毫无疑问地证明：

重组CYP71AV1可以在amorphadiene的C12位置催化三次氧化反应。

虽然先前已经有报道，使用青蒿蛋白提取物的体外酶法测定证明可溶性的醇醛脱氢酶和一种C11，13双键还原酶（作用于醛）参与青蒿素的生物合成17。

我们不排除在青蒿中存在其他的醇醛脱氢酶参与的催化反应，但是体外实验中重组的CYP71AV1将amorpha-4,11-diene高效转化为青蒿酸，完全显示出膜结合、多功能的CYP71AV1是青蒿素的生物合成中的关键促成因素。

图3：

气相层析质谱法（GC-MS）分析从青蒿蒿和转基因酵母中获得的青蒿酸

a．表达CPR或者CPR和CYP71AV1的啤酒酵母菌株细胞体使用碱性缓冲液冲洗后，经酸化和醚抽提提纯。

青蒿酸用乙烷从青蒿的叶子里提取。

在进行GC-MS分析之前，每个样品的甲酯化产物需经三甲基硅烷-重氮甲烷提前处理。

内标物（IS）是4-辛基苯甲酸的甲酯化物。

b，c．从酵母（b）和青蒿（c）中得到的青蒿酸的质谱和保留时间。

RT表示保留时间，以分钟计。

图4：

体外酶法测定CYP71AV1的活性。

从啤酒酵母菌株YPH499中分离获得的微体表达CPR（对照组）或者CPR和CYP71AV1（CYP71AV1组）。

a-c．每一种酶的测定分别加入（a）10µMamorphadiene，（b）25µM青蒿醇，或者（c）25µM青蒿醛。

底物的色谱峰用星号标出。

醚提取物经过衍生，并用GC-MS在不同的粒子模式下分析（mlz：

121，189，204，218，220和248）。

酶反应的产物按照预期得到：

1，青蒿醇（保留时间13.20分钟）；2，青蒿醛（保留时间11.79分钟）；3，青蒿酸（保留时间13.58分钟，甲酯化后检测）

总的来说，我们采用改造FPP生物合成途径的方法获得了能高水平生产青蒿酸的啤酒酵母菌株。

该方法通过表达amorphadiene合成酶，一种新型的细胞色素P450和与之相关的来自青蒿的氧化还原酶来提高青蒿酸的产量。

据了解，相关转化青蒿酸到青蒿素或其他派生物的化学方法可能还有许多待改进之处8，9，但微生物法生产青蒿酸是获得此类高效抗疟疾药物切实可行的方法。

保守分析证明，在使产品效价最优化的情况下，青蒿素结合治疗法将会远远降低于现在用于疟疾治疗的价格。

除了节省费用之外，这种生物合成方法不会受到像天气和政治气候等因素的影响，但这些因素可能会对植物的培育造成影响。

进一步说，从微生物里得到的青蒿酸可以采用对环境友好的方式提取，而不用担心像植物能够产生其他的萜烯致使产物受到污染，从而减少了纯化的费用。

方法：

对于啤酒酵母的增殖与鉴定、CYP71AV1和CPR基因的克隆以及青蒿醇和青蒿醛的半合成等实验过程中所使用的手段方法的详细描述请见补充信息。

化学和植物材料：

青蒿酸标准品购买于ApinChemicals公司或者直接用己烷从青蒿叶片萃取。

青蒿植株被栽培在加州大学伯克利分校的温室当中，并且都是从种子开始培育的。

GC—MS法分析Amorphadiene：

用GC—MS对不同株系的啤酒酵母的Amorphadiene合成量进行测定，使用十二烷阻止Amorphadiene的挥发。

为了定量衡量Amorphadiene产量水平，用于测定标准曲线的Amorphadiene（90%纯）是通过大肠杆菌菌株发酵制备的。

青蒿酸的胞内发酵，纯化及化学分析：

将经过预培养的在600nm（A600）下吸光度达到0.05的EPY224菌株（已经被转入pESCURA:

:

CPR或者pESCURA:

:

CPR/CYP71AV1）接种到25ml合成培养基中。

该培养基不含组氨酸、亮氨酸、甲硫氨酸和尿嘧啶，但是添加有0.2%的葡萄糖、1.8%的半乳糖以及1mMol定量的甲硫氨酸。

300C下恒温培养120小时，然后将培养混合物进行离心，留下细胞体。

再用50mMTris-HCl缓冲液（pH9.0）冲洗细胞体，加入2M的HCl将缓冲液的pH调至2.0，用混入4-烷基苯甲酸（10ug/ml）的乙酸乙酯进行萃取。

萃取馏分经50ul2M的四甲基硅烷-重氮甲烷和10%的甲醇衍生。

在进行GC-MS分析前，产物还要经过以（1：

1）的醚和戊烷为洗脱剂的凝胶色谱提纯。

（阳震翻译）

最后，提纯的产物经气相色谱质谱仪（70eV，AgilentTechnologies）分析，毛细管柱为DB5（0.25毫米内径×0.25µ×30m，J&WScientific）。

气相色谱的加热程序从80℃（保持2分钟），以每分钟20℃的梯度递增到140℃。

产品分离时由5℃/min的速度增加到220℃。

采用火焰电离色谱检测标准品时为了定量，没有使用相同的气相加热程序对柱子进行净化。

发酵及产物的核磁共振分析:

使用1升的生物反应器（New-BrunswickScientific），在30℃的条件下，培养酵母菌93个小时。

2%的半乳糖的诱导酵母细胞，600nm下测OD值为1.7，最终的细胞浓度OD值A600达到5.0。

搅拌速度从100rmp变到500rmp，每分钟通氧0.5L，使得溶氧量始终保持在40%，青蒿酸使用碱洗的方法从细胞沉淀物中提取出来，再使用含有78%的乙烷，20%的乙酸乙酯和2%的乙酸的硅胶管柱提纯。

分离得到的青蒿酸（纯度大于95%）的结构采用CollegeofChemistryNMRFacilityattheUniversityofCalifornia提供的1H和13CNMR500MHz核磁共振仪进行分析。

体外酶法测定:

用重组质粒pESCURA:

:

CPR或者pESCURA:

:

CPR/CYP71AV1与1升的啤酒酵母YPH499培养物，加入2%的半乳糖转化24小时。

微体使用聚乙二醇法沉淀，然后超高速离心去除前面提到的细胞里的蛋白质杂质26。

取大约500µg的微体蛋白，100mMpH7.5的磷酸加缓冲液,10或者25µM的培养基，100µMNADPH和一个NADPH的重建体系（5mM葡萄糖-6-磷酸和2个单位的葡萄糖-6-磷酸脱氢酶）。

反应在24℃下轻微搅拌作用24小时。

反应完成之后加酸至pH为2，然后使用乙醚抽提。

产物采用与上面所述相同的气相加热程序。

使用包含了相对于产物典型的六种离子（121，189，204，220和248）的固定离子检测（SIM）法进行检测。

更过补充信息请查阅在线网页

致谢：

感谢提供官方CYP数据的Nelson教授，进行从青蒿中提纯青蒿酸工作的Ockey教授和McPhee教授的。

感谢提供pδ-UB的N.A.Da.Silva,提供pRH127-3和pRH973的R.Y.Hampton,提供pBD33和pBD36的J.Rine。

感谢菊科基因组计划的R.Michelmore和其他成员对本项目的支持。

最后感谢梅林达-比尔盖茨基金会、美国农业部、美国国家科学基金会、InstituteforOneWorldHealth、AkibeneFoundation、UniversityofCaliforniaDiscoveryGrant、theDiversaCorporation提供资金支持。

参考文献：

[1]WorldHealthOrganization.WorldMalariaReport2005.（WHO,Geneva,2005）.

[2]Korenromp,E.L.,Williams,B.G.,Gouws,E.,Dye,C.&Snow,R.W.MeasurementoftrendsinchildhoodmalariamortalityinAfrica:

Anassessmentofprogresstowardtargetsbasedonverbalautopsy.LancetInfect.Dis.3,349–-358（2003）.

[3]Marsh,K.MalariadisasterinAfrica.Lancet352,924（1998）.

[4]Hoffman,S.Savethechildren.Nature430,940–-941（2004）.

[5]Vennerstrom,J.L.etal.Identificationofanantimalarialsynthetictrioxolanedrugdevelopmentcandidate.Nature430,900–-904（2004）.

[6]Enserink,M.Infectiousdiseases:

Sourceofnewhopeagainstmalariaisinshort

supply.Science307,33（2005）.

[7]Schmid,G.&Hofheinz,W.TotalsynthesisofQinghaosu.J.Am.Chem.Soc.105,624–-625（1983）.

[8]Acton,N.&Roth,R.J.Ontheconversionofdihydroartemisinicacidintoartemisinin.J.Org.Chem.57,3610–-3614（1992）.

[9]Haynes,R.K.&Vonwiller,S.C.Cyclicperoxyacetallactone,lactolandethercompounds.USpatent5,310,946（1994）.

[10].Mercke,P.,Bengtsson,M.,Bouwmeester,H.J.,Posthumus,M.A.&Brodelius,P.E.Molecularcloningexpression,andcharacterizationofamorpha-4,11-dienesynthase,akeyenzymeofartemisininbiosynthesisinArtemisiaannuaL.Arch.Biochem.Biophys.381,173–-180（2000）.

[11]Martin,V.J.,Pitera,D.J.,Withers,S.T.,Newman,J.D.&Keasling,J.D.EngineeringamevalonatepathwayinEscherichiacoliforproductionofterpenoids.NatureBiotechnol.21,796–-802（2003）.12.Donald,K.,Hampton,R.&Fritz,I.Effectsofoverproductionofthecatalyticdomainof3-hydroxy-3-methylglutarylcoenzymeAreductaseonsqualenesynthesisinSaccharomycescerevisiae.Appl.Environ.Microbiol.63,3341–-3344

[13]Gardner,R.G.&Hampton,R.Y.Ahighlyconservedsignalcontrolsdegradationof3-hydroxy-3-methylglutaryl-coenzymeA（HMG-CoA）reductaseineukaryotes.J.Biol.Chem.274,31671–-31678（1999）.

1[4.]Davies,