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豚鼠饲养管理讲课稿

 

豚鼠饲养管理

成绩

生命科学学院课程论文

(2016至2017学年度第2学期)

 

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提交日期:

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评阅日期:

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实验豚鼠饲养管理方法探讨

摘要:

动物饲养条件能够影响实验动物的生长发育、生理功能与机体代谢,从而影响到实验结果的真实性、准确性和科学性。

豚鼠是试验研究中用途较多的动物之一,但因其活动反应敏感,且具有一些特殊的生物学特征和生理解剖特点,因此,对豚鼠的实验室饲养和管理有一些特殊的要求,受到科研工作者的关注和重视。

关键词:

豚鼠;饲养管理;GLP

Abstract:

Animalfeedingcaninfluencethegrowthanddevelopment,physiologicalfunctionandmetabolismofexperimentalanimals,thusaffectingtheresultsoftheauthenticity,accuracyandscientific.Theguineapigisoneoftheexperimentsusemoreanimal,butbecauseofitsactivitieswithanatomicalcharacteristicsofsensitivereaction,withsomespecialbiologicalcharacteristicsandphysiologicalanatomy.Therefore,therearesomespecialrequirementsonguineapigfedandmanagement,bythemajorityofresearchersconcernandattention.

Keywords:

guineapig;feedingmanagement;GLP

豚鼠(Caviaporcellus)(英名Guineapig),属哺乳纲、啮齿目、豚鼠科、豚鼠属。

豚鼠具有对多种病菌、病毒极为敏感、体内不能合成维生素C、血管反应敏感和听觉敏锐,并且血清中补体含量极高等特点,因而被广泛应用于医药生物学的研究、药品生物制品的质量鉴定和药理学等方面的实验。

目前,豚鼠在生物医学研究中的使用量继大小鼠及家兔之后位居第四[1]。

豚鼠对外界环境较为敏感,在普通条件下饲养生存能力较弱,生理状况易受饲养环境中多种因素的影响,容易患病甚至死亡[2]。

因此,建立一套科学的、可行的、规范的饲养管理方法对豚鼠饲养过程中就显得尤为重要。

为此,拟结合我们在豚鼠饲养管理的一点经验和体会,对实验豚鼠饲养管理方法进行总结。

[3]

1饲养方式

豚鼠的饲养多为传统池养、笼养以及塑料盒饲养等方式。

传统的池养方法容易操作,成本较低,豚鼠直接接触地面,更符合其快速奔跑的习惯,但这种方法使饲养面积使用效率降低,不利于笼具清洗、消毒,不适用于饲养微生物控制较严格的实验动物。

笼养一般采用不锈钢笼具,分层饲养可节省空间,便于清洗。

但该方法受饲养空间的限制,保温性差,豚鼠易发生脱毛、足底溃疡,有时会导致并发症发生而使存活率降低等[4],影响动物质量。

大塑料盒饲养是目前豚鼠饲养方式中较好的一种,较大的空间可满足豚鼠喜活动,爱群居的需要。

大塑料盒可铺垫料,使豚鼠有陆地的感觉,保温性好。

相关研究表明,在检疫期间,大塑料盒饲养更有利于豚鼠体质量的增加,提示在更换环境等应激情况下,大塑料盒饲养更有利于豚鼠由应激状态向正常生理状态的恢复[5]。

2饲养条件

2.1普通设施条件的建立与应用

本着经济实用的原则,我室在原有设施的基础上,改建成了66.7m2(7.44m×8.97m)的豚鼠饲育室。

单走廊,无缓冲间,便于饲育室出口不直接对外;玻璃窗加防昆虫的纱窗,二台冷暖空调及定时通风换气系统。

[6]水泥预制板地圈,每圈面积0.96m2(1.2m×0.8m),其中相邻两圈设一活动开口,可以随时关闭或开启。

该设施获得重庆市实验动物管理委员会的检查验收通过。

2.2饲育室氨浓度 

检测管比长度法(快速测定法)于每天上午8时、下午18—19时抽取饲养室6—8个取样点,每个取样点距笼圈0.5m,连续7天,即一个换笼周期。

2.3 温度、相对湿度变化 

统计人工记录的每天上、下午的温度、湿度资料,按月计算其平均温度及相对湿度,显示为上下起伏的曲线,说明开放系统饲育室内环境温度、湿度受外界气候影响而波动的特性。

[7]本室冬季采用电暖炉保温,辅以消毒干谷草垫窝,此间各月平均温度为11.41±2.34—16.68±2.16℃,偏低;夏季空调降温,平均最高温度为25.94±1.99℃,控制在标准上线29℃以下。

平均相对湿度最高为88.22±5.04%,最低为73.72±9.14%,其中,6、7、10、11和12月份超过80%[8]。

这与当地的气候条件密切相关。

2.4 通风换气[9] 

良好的通风换气是保证室内空气新鲜,减少氨气等有害气体对动物产生危害的有效措施,同时还能调节室内温、湿度及其空间分布。

本室设计二台300mm换气扇定时机械排风,经测定风速计算得出该饲育室换气次数为11次/小时。

2.5 光照度 

可见光对动物体的多种功能,特别是有节律地调节其生理活动的神经内分泌机能,具有关键性作用。

过强的光照对动物有害,容易引起某些雌性动物的吃仔现象和哺育不良。

一般说来,动物室内宜安装若干个低瓦数光源。

[10]本室以日光灯为光源,采用12小时明暗交替的光照制度。

经轻工部电光源质量监督检测中心重庆站测定,照度值范围为230—280Lx。

[11]

2.6 噪声 

动物室的噪声主要来自动物的生活活动、工作人员的行动和操作、机械系统的运转及附近工厂机器噪声等。

豚鼠对噪声非常敏感,易引起流产。

在管理上选用功率适宜的风机是开放系统控制噪声的重要的措施之一。

[12]本室经重庆市中区环境监测站的监测,噪声值为32—46dB。

[13]

2.7 垫料处理 

在地圈饲养方式下,我们选用谷壳作垫料,根据国家实验动物管理条例垫料需消毒的要求,对于普通动物,采用了烘烤消毒法,即温度为80—90℃下烘烤6小时左右[14]。

经我们多年的监测和实践证明,此法简便易行。

2.8 设施使用前的消毒处理 

同屏障系统一样,开放系统目标饲育环境的建立离不开消毒。

[15]根据经验及文献资料,我们选用新洁尔灭、来苏尔、克螨特或杀虫剂I(自制)、福尔马林—高锰酸钾为主要消毒剂。

首先用前三者交替全面擦拭地面、笼圈,其主要目的在于抹去地面等的碎屑及微细尘末,并在其表面滞留一层消毒液。

食具等用毒性极低的天然植物杀虫剂I处理。

然后再用福尔马林—高锰酸钾熏蒸(剂量约为40ml/m3)。

[16][17]

3管理要求

良好的管理是维持实验动物等级,保证动物正常生长、繁殖的重要手段。

在实际工作中,必须坚持“硬件较差软件补”这一根本原则。

3.1 选择责任心强、热爱本专业的工作人员,不断进行业务培训,增强“无菌”意识。

3.2 保持饲料相对稳定,保证足够的营养水平[18]。

豚鼠自身不能合成维生素C,对于一级豚鼠,常加喂青草,但必须洗净,经高锰酸钾等处理。

3.3 杜绝野生动物侵入,尤其是野鼠,在一级动物的管理工作中必须足够重视,也许会引起豚鼠离乳率低和传播病原菌甚至掉级。

3.4 严格执行卫生防疫制度,地圈方式下,实行双笼圈交替饲养,每周至少换笼1次,换笼后必须立即消毒备用。

[19]

3.5 炎热夏季控制交配繁殖。

据观察,在室温较高的夏季继续交配繁殖的豚鼠易早产、流产,初生仔鼠存活率低,且有损雌性鼠的健康。

[20,21]

4饲料、垫料及饮用水[22]

4.1饲料豚鼠属草食性动物,嚼肌发达且胃壁较薄,其盲肠特别发达,对粗纤维的消化能力强,其生物学特性要求在饲养繁育过程中应饲喂粗纤维含量较高的青草或干草,以满足其代谢需要。

相关研究表明,饲料中粗纤维的含量应占总量的10%—15%左右,若粗纤维不足,可出现排粪障碍、脱毛和互相吃毛等现象[23]。

李贵才等[24,25,26]研究也表明,饲喂粗纤维含量较高的全价颗粒饲养,不仅可以防止豚鼠脱毛,且对仔鼠体质量的增长有利。

因此,在豚鼠饲养过程中必须考虑粗纤维的种类和含量。

此外,豚鼠对某些必需氨基酸特别是精氨酸的需要量较高。

根据GB14924.3-2010《实验动物配合饲料营养成分》[27]要求豚鼠维持饲料中蛋白质的含量应占17%—20%。

杜建华等[28,29]研究表明,饲喂高蛋白(17.5%)配方饲料的豚鼠其体质量日增加明显高于饲喂低蛋白(14.3%)配方饲料的豚鼠。

4.2垫料应选择不具机械损伤且不含甲醛等有害物质的垫料,豚鼠易患呼吸系统疾病,粉尘较多的垫料不宜使用。

目前常用垫料主要有木屑、刨花、粉碎玉米芯等,国外现有吸附力较强的膨化系列垫料。

过去在国内有研究者使用青干草、稻草或麦草作垫料,供动物自由摄取,以满足豚鼠对粗纤维的需要。

有研究报道,枫树、桦树、白杨、山毛榉等硬木削片中含有维生素C,豚鼠可通过咀嚼以补充其对Vc的缺乏[30]。

豚鼠喜燥恶湿,应注意垫料的更换,现在在豚鼠日常的饲养管理过程中,当豚鼠数为每盒8只—10只时,2d更换1次垫料可保证其饲养环境的干燥。

[31]

4.3饮用水实验豚鼠常采用饮水瓶、饮水盆及自动饮水装置饮水。

在饲养过程中必须注意饮水装置的清洁消毒。

饮用水无需蒸馏、离子交换和反渗透,以便有利于动物对微量元素的需求。

依据本中心制定的相关标准操作规程(SOPs),每年委托广州分析测试中心对实验豚鼠饲料、垫料以及饮用水进行检测[32]。

根据《实验动物配合饲料卫生标准》(GB14924.2-2001)[34]、《实验动物豚鼠配合饲料》(GB14924.5-2001)[37]及《生活饮用水卫生标准》(GB5748)[38]要求,确定实验豚鼠饲料、垫料和饮用水检测项目及指标(见表1[39,40,41])

5维生素C

维生素C是维持机体健康、促进机体发育和调节生理功能所必须的一类有机化合物[42]。

和灵长类动物一样,豚鼠体内缺乏左旋葡萄糖内酯氧化酶,亦不能合成维生素C,对维生素C的缺乏特别敏感。

当其缺乏时可引起坏血病、生殖功能下降、生长不良和抗病力降低,最后导致死亡,因此必须从外界补充[43]。

一般而言,体质量100g的豚鼠每日必需4—5mg的维生素C[44]。

相关资料显示[45],对于长期饲养的豚鼠,维生素C的有效补充有利于预防豚鼠胆囊结石的形成。

在实际饲养过程中,通常将维生素C添加到饲料或饮用水中即可。

豚鼠消化系统抗病能力较差,易患急性肠炎[46],直接饲喂新鲜蔬菜和水果时应清洗消毒、晾干后饲喂。

但对于冬季较长的地区,不能长年食用新鲜的蔬菜,加之青菜长时间存放使其营养成分特别是维生素C和水分易被破坏和丢失[47,48],且易腐败变质,对实验动物质量及实验研究造成影响。

饲喂新鲜蔬菜可用于普通级豚鼠对维生素C的需要,但不适合清洁级豚鼠的饲育。

饮水或饲料中添加维生素C是目前豚鼠补充维生素C的有效方式。

用维生素C代替青绿蔬菜,不仅有效地保证了豚鼠的正常生长发育,而且大幅度降低了饲育成本,为清洁级豚鼠的饲育提供了有利保障[51]。

实验豚鼠常处于一定水平的应激状态,对维生素C的消耗较大,建议应根据动物饲养的情况添加适量的维生素C。

[52,53,54]维生素C结构中有二烯醇结构,性质极活泼,易受空气、水分、光线、温度及微量金属离子的作用而氧化、水解。

相关研究报道,维生素C在自然光照、温度、pH条件下,只考虑溶氧因素的影响,在72h内维生素C丢失率为50%。

因此,饲喂的维生素C饮用水应新鲜配制,以保障其有效的利用。

[55]

6小结与展望

豚鼠在实验研究中常出现较高的患病率或死亡率,如何降低豚鼠在实验过程中的死亡,是保证各项实验研究顺利进行的前提条件之一,同时也充分体现了实验动物伦理的“3R原则”。

建立一套科学的、可行的、规范的降低豚鼠患病率或死亡率的饲养管理方法,对从事实验动物和科学研究的工作者具有极强地指导作用和重要的现实意义。

[57]因此,在实际研究工作中应合理控制豚鼠饲养间的温度、湿度、噪声以及氨浓度等环境因素;提供较大的饲养空间以满足豚鼠活动及群居的需要,设立独立的采食台,保障其干燥的饲养环境;提供全价营养饲料,保证充足的饮水及维生素C,科学控制饲料、饮水给予的数量及速率,减少豚鼠患胃肠扭转的概率[58,59]。

今后我们将尝试研制一种降低豚鼠应激反应的抗应激添加剂或改良豚鼠配合饲料用以饲喂豚鼠,同时提高豚鼠微生物等级,尽快达到清洁级或SPF级,这样将极大降低环境因素对豚鼠的生长、繁殖带来的不利影响,大大提高动物健康保障,减少常见病和多发病的发生频率,保证实验工作的顺利进行。

[60]

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