冰冻切片详细说明.docx
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冰冻切片详细说明
冰冻切片详细说明
冰冻切片详细说明
切片技术最早期是从冰冻切片开始，后来逐步有了发展和更新，冰冻切片弥补了石蜡切片和火棉胶切片之不足，石蜡切片和火棉胶切片需时太久，且在制片中要使用许多化学试剂，石蜡切片还需要加温过程，因而某些重要的不稳定的组织成分如脂类、酶以及抗体等，可能被溶解和破坏。
冰冻切片过程较简单，无须经过上述步骤，组织中的水分起着包埋剂的作用，组织经固定或不固定即可进行冰冻切片，切片厚度一般可在6-8微米，组织没有收缩，易保持生活时原有状态，是保存脂肪组织，许多神经组织特殊染色方法和组织化学方法，特别是酶的活性十分理想的切片方法，对于外科临床诊断和现代免疫荧光诊断，冰冻切片也很重要。
其缺点是组织过大不易冰冻，连续切片困难。
5微米以下切片不易成功。
但是随着现在冰冻包埋液的不断改进，已经能切出少于3微米的切片
一、直接冰冻切片法
冰冻切片多用于新鲜组织、甲醛固定组织和冰箱冷藏组织等。
组织块不经任何包埋剂而直接放在制冷台上冷却后再进行切片。
1．恒冷箱切片就是将组织在恒冷箱的切片机切片。
目前恒冷箱切片机的品种较多。
此种切片适用于科研和教学上的连续切片。
要求预先开动电源（预冷准备），配多种固定组织台，以便更换组织。
2．甲醇制冷器制冷箱为附有带导管的制冷台和制冷刀的甲醇循环装制，其冷却速度比较快，属于开放式，作一般常规冰冻切片用。
3．二氧化碳冰冻法将组织用蒸馏水洗后，放在冰冻切片机的冷冻台上，加蒸馏水少许。
打开冷冻台的二氧化碳开关，二氧化碳气体喷出，待组织出现冷霜时，将二氧化碳关闭，即可切片。
若组织冷冻过硬则切片易碎；组织冷冻硬度不足，则切片呈粥糜状，需用间歇方法继续冷却。
硬度一般在刚开始解冻时最合适，应迅速切片。
4．半导体致冷冰冻切片法将组织置半导体致冷台上，滴加少许蒸馏水，调好切片机的厚度。
先接通热器的循环流水，然后接通电源，电源的正负极切勿接反，用整流电源控制温度。
二、明胶冰冻切片法明胶包埋法一般多用于冰冻切片易破碎的组织，特别是某些有树枝状突起的组织，当其切片后投入水中时，常常引起分散，甚至发生丢失，某些间隙较多的组织，有时会因发生散乱而失去相互间的联系，可形成移位现象。
明胶冰冻切片正是适用于上述情况。
⑴环保组织固定液固定后必须充分水洗，洗净。
因甲醛对明胶有凝固作用，从而影响明胶溶液浸入组织内部,不宜选用含甲醛类固定液。
⑵组织水洗后浸入12.5%明胶水溶液（以1%石碳酸水溶液配制），于37℃温箱浸6-24h。
⑶移至25%明胶溶液内浸6-24h。
⑷25%明胶包埋，连同包埋器放入冰箱内使明胶迅速凝固，取出后在空气中蒸发10min。
⑸入环保组织固定液固定明胶块1-2日。
⑹蒸馏水洗后，置冰冻切片机或滑动式切片机切片。
切片可保存于10%甲醛液中。
⑺依检查目的而进行染色，染色后一般不经乙醇脱水及二甲苯透明，而用下述明胶溶液或其他类似的明胶溶液封片：
果糖26g,明胶1.1g，钾矾0.75g，麝香草酚水溶液1.15ml。
先将果糖溶于麝香草酚饱和液，置于56℃温箱内12h，加明胶后在水浴内加温熔化，
过滤后加钾矾。
于100ml溶液内加甲醛2ml防腐。
三、冰冻切片粘片法
1．蛋白甘油粘片法冰冻切片粘片法基本上按石蜡切片的粘片处理，但烘烤的温度不超过40℃。
待烤干后立即取出，时间过久或温度过高则切片易破碎。
烤干后用70%乙醇及蒸馏水洗后即可染色。
2．Lillie明胶粘片法将切片放入1%明胶水溶液数分钟，捞出置于载玻片上，将多余液体倾去。
入环保组织固定液中固定5min,水洗10min，即可染色。
3．乙醇明胶粘片法切片浸入0.1%或0.75%明胶溶液（以40%乙醇配制）数分钟，捞于载片上，经室温短时干燥，入氯仿1min,经95%及70%乙醇洗去氯仿，再经蒸馏水洗后染色。
四、冰冻包埋液包埋切片OCTCompound法
现在国内外有许多厂家用高分子材料配制成冰冻切片包埋液，将冰冻包埋液直接可直接在切片机组织卡盘（chuck）上加少许包埋液，在其固化前嵌入组织块，然后再于组织周围加入少许包埋液稳定。
常规切片，厚度2-100微米。
或者在盛标本的包埋模具内，挤出适量冰冻包埋液，放入组织块或细胞沉淀块，加包埋剂完全淹没组织块，如有气泡可用针头或吸头吸出。
速冻：
将盛有组织细胞和包埋液的模具，正置于切片机冷室内冰冻10分钟，至包埋液固化。
也可将盛有组织的模具置于液氮或-40-70度冰箱冰冻固化保存，用前取出置于切片机冷室内平衡温度（否则损坏刀片）。
冰冻包埋液是由高分子聚合物组成的透明粘稠液体，速冷时固化，其冰冻速度和软硬韧度与组织细胞相近，因此能保证最佳O.C.T.，并具有支持填充、减少皱褶和断裂的作用。
能切出2-3微米的超薄切片。
国内较好的品牌有西奈山冰冻包埋液。
冰冻切片——组织块的准备
1.调整好组织与刀片的方向
这是冰冻切片准备中极为重要的方面，使用冰冻切片组织包埋液可以使这项工作变得简单，在我的工作中我总结出一些经验可供参考。
a.脂肪放在最后切。
脂肪由于硬度不够，对绝大多数组织均合适的温度却切不好脂肪组织，如果一刀下去，组织中的脂肪先接触刀片，就会破碎并使整个片子损坏。
如果脂肪最后接触刀片，则切片过程不受干扰。
最糟糕的情况是脂肪部分先接触刀片而没有冰冻切片包埋液（如西奈山品牌）的保护，冰冻包埋液可以给片子提供一个起始的缓冲，如果没有包埋，脂肪就会切碎并把整个片子破坏。
当切片过程中由于脂肪的出现而影响质量时，我要么把摇柄转回去尽量避免，要么把脂肪挖出来。
b.组织与刀片垂直或成角是关键。
让我们假设组织由起始端、中间部分及末尾端三部分构成，起始端容易卷缩，或受到刷子的损害，还可能由于操作者的犹豫而引起片子的厚薄不均，这些都增加了假象的风险。
末尾端在贴片时容易拉长，最好的是中间部分，最不可能出现假象，并且组织学上最干净，这是片子中最理想的部分。
非常坚实的组织容易产生横皱，切片时应包埋成角且尽可能的加温。
成角包埋就像坐着船冲浪一样，如果你直线行驶，就会承受波浪线上最大的冲击，如果成角行驶，波浪线就会拉伸，所受的颠簸也会减小。
跟公路上的减速脊一样的原理。
上皮和粘膜贴附的组织如皮肤，胃肠，膀胱，子宫，颈部等，应当使上皮面垂直于刀片（见下图）。
2.组织块的温度
任何组织都有一个理想的切片温度，在此温度下切片，组织片以平滑均一的形式流过刀片，几乎没有卷缩。
当温度、组织类型、刀片均处于理想状态时，切片十分流畅，几乎不用刷子。
如果温度太低，片子容易卷曲和破碎；如果温度太高，片子就会皱成一堆。
如果需要加温，只需要把大拇指置于组织块面几秒钟；如果需要降温，可以使用机子的精确低温包埋系统，简单的做法就是把过冻的冻台放在组织面上几秒钟，大多数的冰冻切片机都有一种热吸收器可以使用。
3.组织块的填涂——基本的修复
填涂可以解决组织块自身的缺陷，下面我举几个具体的例子。
（1）扁平包埋组织的填涂
包埋扁平的组织时，只有一层薄薄的包埋物贴附在底面，而且包埋物会轻微地收缩与组织块分离，如果想以最小的休整开始切片，那么收缩的空间必须填涂上包埋物，如果不填涂，切片时组织便会与包埋物分离，从而很难获得一张完整的片子。
下面这个简单的技巧可以使你获得一个整齐的组织面。
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（2）针头的移除
在工作中经常会收到布满针头的标本，有时候针头会穿过整个组织，导致刀片的损坏并使片子一分为二，下面有一种简单的解决办法。
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接到标本后快速冰冻。
2、切片厚度6—7微米。
3、切片完整，无污染，无皱褶。
4、切片完成后立即固定。
5、染液，脱水液必须及时更换。
6、封固前必须经酒精脱水，环保组织液透明，湿封。
7、封片时不得有气泡，不得有树胶外溢。
8、标签必须贴于玻片左侧，编号字迹必须清楚。
9、制片工作一般应在15—20分钟内完成。
10、冰冻报告后及时将“冰对”组织放入环保组织固定液内。
11、每天操作完成后，及时对机器进行清理和消毒。
（3）缝线的移除
同样的方法移除组织块中的缝合线
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（4）挖凿的技术
当组织块中某些部分不需要或阻碍我们获得高质量的切片时，我们就可以将它挖除掉。
最好的例子就是脂肪组织干扰切片，常见于切除的淋巴瘤用于检查是否癌转移。
如果脂肪先于组织块中的其他部分接触刀片，你首先可以试着转动组织块，如果不行，就可以将它挖掉，然后用冰冻包埋液填充。
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学会看片子
这里指的是片子滑过刀片时就要辨别出质量的好坏，如果到镜下才发现片子的缺陷那就无法挽救。
1.观察片子的厚薄
尽管冰冻切片机可以设置厚度，但人为辨别片子的厚度是否合适仍然很重要。
片子太薄看起来象半透明的镜纸，片子太厚看起来混浊、柔性差，对我来说，5-6um的片子较合适，象一张薄的打印纸。
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3.片子上的条纹
垂直于刀片的细条纹为刀片缺口所致，这往往是切到钙化组织、针头或缝线的结果。
4.波浪线样的横皱
这是切片机零件松动的征象，可能需要修理，切片时刀片有移动或支撑刀片的机子有移动时，往往有这种规则的条纹出现。
为了获得干净整齐的片子，所有固定刀片、刀架、支撑台、支撑栓子及切片机的旋钮、螺钉、轴承都必须上紧，并且不带有垃圾残骸，支撑台或刀片下面有一点包埋物都会影响切片的质量。
脂肪组织的处理
脂肪组织无疑是冰冻切片者的绊脚石，道理很简单脂肪不会结冰，把温度降低让脂肪变硬可以切出较薄的片子，但是这个温度对同一组织中的其他成分来说显得太低而不合适切片，当脂肪破碎影响切片时这个问题就变得明显，下面是一些我的经验总结。
1.尽可能的削掉不需要的脂肪组织
当我准备切淋巴结时，我会先检查一遍，小心翼翼地除掉表面及髓内的脂肪，结内的脂肪用解剖刀刮擦掉，被膜线附近的脂肪用刀切除，这样就不需要切开整个淋巴结被膜。
有人会说，我把一些组织去掉后，可能导致漏判一些阳性的淋巴结，但我的经验是好的干净的片子比含有太多脂肪的差片子更容易获得阳性的结果。
当你在休整组织或切片的过程中脂肪组织意外出现时，你也可以使用前面的挖凿技术。
2.调整组织块的方向使脂肪最后接触刀片
切片时尽量避免脂肪先接触刀片，因为脂肪会脱离包埋物，在切片上留下一个洞，如果不能避免，也要在其周围加上包埋物，让包埋物先接触刀片。
3.保证刀片、台面的干净及组织块的冷冻程度
切片机的台面和刀片必须保持干净，假如你弄碎了一张片子必须即时用一块干纱布清理干净，但要防止刀片割手，如果你发现切出来的片子有条纹或者堆积成束，可能是组织粘着在刀片的下方了，必须除掉刀片上的组织，并将刀片清理干净。
组织块越冷就越容易切脂肪，只是其他非脂肪组织就变得坚硬难切，同时水性的组织会裂开，这就有必要在切片温度的最冷端和最温端取一个二者兼顾的中间值，以使脂肪和非脂肪组织都能切好。
我一般将组织块冻在-24度，可以获得满意的结果，冷冻喷雾剂有用，但要注意先清掉切片机内的污秽。
4.灵活地转动摇柄而不犹豫
假如组织块是脂肪和结缔组织的混合物，那要好切于纯脂肪组织，有时候按照我前面所讲的技巧来做，片子会出乎意料的好。
用运动的刷子快速粘住组织片并把它拖上台面，不要把刷子和组织片压上台面，以免粘在一起使切片完全中断。
同样，好的刀片也很重要，如果你能用刷子敏捷地做出这套动作，那你肯定也能对脂肪组织切出理想的片子，脂肪在片子上会留下空的间隙，但它们之间的纤维条却保存完好。
下面这块乳腺癌及其周围有数毫米覆盖着墨水的脂肪组织，假如你调整好组织块的方向使脂肪边缘垂直于刀片，肿瘤组织就切得好，脂肪切片的角度会有变动，也会留下空隙，但总有一条墨迹线指示着边缘的所在。
很多时候我都用这种方法来区别肿瘤和脂肪组织。
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冰冻切片的基本技术
1.从锋利的刀片开始
我发现使用新的锋利的刀片时常常做出高质量的片子。
我觉得在医疗场合中某些尽量省钱的做法显得有些因小失大。
一般我对每位患者的标本都使用一组新的刀片，当片子的质量开始下降时，我会立刻更换刀片。
某些组织如质地较硬的胶原和钙化组织会使刀片很快变钝，因此，经常更换刀片显得很有必要，有时候我在切片过程中要连续更换2-3次刀片。
2.坐着还是站着
我切片时总是坐在一张凳子上。
要学会把刷子作为一种便捷的辅助工具来操作，从而精细地控制显微厚薄程度的片子。
切片时俯身弯腰，颈部过伸的姿势有些不妥，要尽量处于放松和舒适的姿势以便能最大程度控制你的左手。
3.刷子
我是一位刷子的使用者。
我相信要想切好片子首先学会使用刷子。
刷子的作用就在于粘住片子并把片子弄到台子上。
冷冻的片子会自发的卷缩并从刷子上脱离下来，因此，我使用一把有硬毛、夹取面宽的刷子。
我发现来自中国的野猪毛十分坚硬，非常管用。
你可以花3美元从工艺店买一把1/4英寸长的#2号扁平无色的刷子，把毛削成一个角度。
由于是个有角的头端，加上握持刷子成一定的角度，这样刷子与组织接触时就会象扫帚一样的平。
我不能理解为什么有人使用脆弱的骆驼毛刷子，组织片很容易从这些柔软的毛上掉下来。
4.握持刷子
左手象拿笔一样握持刷子，将第五指轻压于台面上以稳定握笔的手（或根据手和切片机尺寸的大小置于你感觉合适的地方），这样可以保证操作者动作的灵活及可控性。
我把刷子削成一个角度，大致与左手握持刷子的角度相同，这样使刷子平着接触组织的1/4。
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5.摇柄的旋转
以连续均匀的力量转动切片机的摇柄，且要毫不犹豫。
我看到很多冰冻切片者手握着刷子在开始切片时总要停一下，缓慢的抓取组织，然后再开始转动摇柄。
依我的经验看来，这种动作增加了起始切片假象的可能，会使片子的厚度不均匀，也增加了处理脂肪类组织的难度。
我切片时，象前面所说的那样手握刷子，以一种连续的动作抓取组织，这个动作与刀片接触组织同时开始并贯穿于整个过程。
6.刷子的移动
组织块移向刀片时刷子也要同步地向下移动，当组织块刚好接触刀片时刷子轻轻停在其底部2mm处并迅速抽离。
正是刷子的向下移动使你能连续地抓取组织，当开始的几毫米组织穿过刀片时便有自发卷曲的现象，这时，运动中的刷子立刻粘住其游离的边缘部分并水平地拖向切片者。
刷子的运动路径是一个朝下的“肘”形，然后再朝向你自己，连续不断。
但要注意有时候把组织压向台面时会使组织粘在台面上，可能会导致碎片，应尽量避免。
当然预先将组织包埋起来可以使刷子不用接触到组织，切片也容易多了。
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7.贴片
可以从切片机的台面上也可直接从组织块面粘贴组织片，我一般采用前者。
片子切好后，手持玻片在片子上方，向下以一个角度粘住片子的一角，在静电作用下片子会吸附在玻片上并迅速融化。
当然在周围涂一些包埋物对贴片有利，这种多余的包埋物可以保护片子的边缘免受皱缩的损坏。
有时候碰到贴片困难，我会在切到最后2mm包埋物的时候停下来，让片子留在组织块上，然后倒转摇柄，使组织块退离刀片，再用刷子从边缘把组织片摊平，这样就可以从组织块面贴片了，这对卷曲的片子或者脂肪组织非常管用。
8.快速固定
我右手转动摇柄也同时拿着玻片，片子一切好，立刻粘起片子并将它浸没于环保固定液中。
环保固定液需置于方便够到的地方，我一般将染色架放在染色缸的旁边，先将片子置于环保固定液液中固定，然后插于染色架上。
如果组织固定延迟会出现风干的假象，我的经验是组织片还在切片机的台面时，风干效应很小，当组织片粘在有温度的玻片上时就会出现明显的风干假象，表现为核的细节丢失及胞浆液的溢出。
下面几张图片是延迟15秒固定和立刻固定的相同组织的比较，差异非常明显
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9.切片的厚度
对于一般的手术病理我推荐切6um厚，这种厚度使染色更加饱满，层次清晰，病理学家通常在2x和4x的放大倍数下可以获得更多的信息。
太薄的片子在这种放大倍数下显得苍白，容易忽略一些细节。
6um的片子可以有更多的时间去避免风干假象，也会减少冰晶所造成的细胞核空洞。
当然特殊情况下可能需要更厚或更薄的片子。
10.为什么会掉片
我不能确定组织片粘附到玻片的具体机制，但我相信可能与组织内的液体与玻片发生分子交联有关。
下面我例出几种染色过程中组织片脱落的情况：
1）本身非常干燥或过度脱水的组织；
2）组织片的周长与面积比过大，象细条形的组织容易受染色缸内液体涡旋应力的影响而脱落，同样包括薄的纤维囊肿及不规则的坏死组织，太厚的组织也不例外；
3）反蓝用的氨水浓度太高；
4）少数情况需要使用100%的乙醇固定；
5）一张玻片贴多个片子时，片子周围的包埋物相互重叠
冰冻切片的局限
1.时间的限制
确实在冰冻切片室经常受到快速出结果的压力，我的经验是欲速则不达，急躁和慌乱容易出错。
我们最好的办法就是树立自信，良好的态度及教育外科医生，受到加快制片的催促时应当学会从各方面抵制压力，假如你是一位专业的受过良好训练的冰冻切片家，从切片到染出一张片子只需要几分钟，如果你对组织的处理很粗糙，这个过程可能要几分钟到十分钟，碰到比较大的复杂的组织需要多重染色则需要的时间会更多，对病理学家来说，阅片需要几秒到数十秒的时间，有时候需要搜寻一些细小的线索，翻阅书籍，或向同行咨询等，所需时间会更多。
考虑到外科医生的处境，我们必须动作迅速，但是当所做的结论会更改手术的进程时，我们会显得格外谨慎。
我们会要求提供患者的详细资料以便得到正确的答案，即使耽误几分钟，总比重做手术或提供错误的结论所付出的代价小很多，如果连续碰到几例患者，或复杂的病例，多个标本，那我们只有寻求帮助，当然，在手术不过急的依赖冰冻切片的结果时，这些事情尽量不做。
不要粗糙地准备和阅读片子，这是最可能出错的地方，同时，也要识别超出你个人能力的处境，很多需要寻求外界咨询的场合，我象一根树桩一样站在那里阅片，几分钟都无法得出结论，就象看到一只从来没有在后院出现过的老虎一样。
这个时候我会不顾一切的寻找就近的帮助，并且告诉我的外科医生要耐心的等待。
2.特殊染色的局限
这个问题讨论起来很难，我们只能面对，当今时代如果没有免疫过氧化物酶染色和基因突变的检测，仍然无法对淋巴瘤和肉瘤及其他类似的疾病进行分类，也许不久的将来能有快捷的方法用于冰冻切片，但是现在，确实是一个缺陷。
3.冰冻假象
这是水的特性，水在结冰时因氢键的交联而膨胀，正是这个原因，冰块才能浮在水面上。
我相信组织在冰冻时候的变化与水结冰膨胀是密切相关的，在此，我会尽量解释冰冻片子和石蜡片子的差异。
象处理其他病理假象一样，正确的识别这些冰冻假象有助于我们不至于误判。
4.冰晶的形成
含水量特别多的组织冷冻时会出现肥皂泡样的空隙，我认为当组织中的水分凝固时形成球形的冰晶，挤压纤维组织条而产生泡沫样的形状。
下面的冰冻对照显示当组织片进一步处理时泡沫样的水分又重新分布于间质，而未曾冷冻的组织显示出间质的水肿。
这些水分巨多的组织在切片时很难保证不裂开，应尽可能高切片的温度
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5.挤压假象
细胞实性的组织会受到冰泡膨胀的挤压，这在水肿组织非常明显，下面的肾细胞癌提供了一个很好的例子，中间的图片显示肾小管被透明的冰晶所挤压，右边的图片为来源于同一组织的非冷冻切片。
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6.核染色质的改变
中间这张片子先前冷冻过，显示染色质特别明显，与左边冰冻后立刻固定的图片相比，核的密度更大，更深染，注意到冰冻片中胞浆含有较多的空泡，也是冷冻假象的一种。
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冰冻切片操作流程
接到标本后快速冰冻。
2、切片厚度6—7微米。
3、切片完整，无污染，无皱褶。
4、切片完成后立即固定。
5、染液，脱水液必须及时更换。
6、封固前必须经酒精脱水，环保组织液透明，湿封。
7、封片时不得有气泡，不得有树胶外溢。
8、标签必须贴于玻片左侧，编号字迹必须清楚。
9、制片工作一般应在15—20分钟内完成。
10、冰冻报告后及时将“冰对”组织放入环保组织固定液内。
11、每天操作完成后，及时对机器进行清理和消毒。
冰冻切片在小鼠肠道Trafficking中应用
我最近在做小鼠肠道的一个基因的Trafficking，要求标本结构特别清楚漂亮，开始总是做得不是很满意，现在摸索出了一点经验，片子染色后做Confocal非常漂亮。
和大家共享一下：
1.杀死小鼠，取出一段空肠，用冰PBS液冲洗掉粪便等脏物；
2.将肠段套在钝头注射器上，把头端用细线（就手术用的那种很细的肠线）栓紧，然后用小镊子轻柔的将肠腔翻转过来（这一步很关键！
）注意不要损伤绒毛；
3.放入西奈山环保组织固定液中4度1小时固定；
4.用冰PBS洗两遍；
5.放入30%蔗糖溶液（蔗糖溶于PBS，不是H2O）中，4度过夜，其中蔗糖溶液是肠道组织的8倍；
6.次日将组织放入西奈山OCT冰冻冰冻包埋液中，4度缓慢震摇1-2小时；
7.包埋组织。
这一步我试过很多方法，开始我是垂直包埋，我想这样可能切片可以见到整个肠腔，绒毛都向外张开，保证是纵切面可以看到绒毛的全貌，后来发现并非如此，因为组织很软，很难让它能确保垂直包埋进去。
后来就直接平放进去然后切片时掌握角度也可以看到整个肠腔和绒毛的形态。
剪开包埋我也试过，我还试过做“瑞士卷”，就是剪开后反方向又卷成圆筒状包埋，但都不如现在的方法，因为剪开后又重新卷成圆筒状会损害绒毛组织。
当然如果是结肠就无所谓，不用翻转，怎么弄都漂亮。
因为我的实验主要是要观察这个基因内化迁移的情况，对绒毛的要求比较高，要把微绒毛、terminalweb和肠上皮细胞的基底侧、apical侧都要显示的非常清楚。
有关细胞和组织学技术
一、细胞和组织
免疫组织化学技术是用标记物或显色物标记的抗体检测细胞和组织内的抗原，从而达到诊断和研究疾病的目的。
抗原的准确显示和定位与制备的细胞和组织标本质量的好坏有着密切的联系。
由于各种抗原的生化、物理性质不同，如温度高低、酸碱度强弱及各种化学试剂的作用均可影响抗原的免疫学活性，良好的细胞和组织学结构将有助于抗原的准确定位。
因此，细胞和组织标本的采集制备在免疫组织化学技术中占有十分重要的位置。
（一）细胞标本的取材
目前，免疫组化技术已经应用于细胞学诊断，如鉴别低分化癌与恶性淋巴瘤、黑色素瘤、低分化肉瘤等。
CEA应用于胸腹水中间皮瘤与癌的鉴别。
McAb应用于淋巴白血病和恶性淋巴瘤的分类分型。
近年来，培养细胞的免疫组化技术在鉴定细胞的种类、分化程度、表面抗原特点以及肿瘤结构成分改变等方面的研究均起到了积极作用。
细胞标本的取材有以下3种方法:
1．印片法 主要应用于活组织检查标本和手术切除标本。
新鲜标本以最大面积剖开，充分暴露病变区，将载玻片轻轻压于病变区，脱落的细胞便粘附在玻片上，立即浸入细胞固定液内5-10min，取出后自然干燥，低温保存备用。
优点是简便省时，细胞抗原保存较好。
缺点是细胞分布不均匀，玻片上细胞重叠，影响标记效果。
2．穿刺吸取涂片法 主要应用于实质器官的病变区，如肝、肾、肺、淋巴结、软组织等。
用细针穿刺吸取病变区内液体成分，如穿刺液较少，可直接涂抹在载玻片上，力求细胞分布均匀。
如穿刺液较多，细胞丰富，可用洗涤法：
将穿刺液滴入盛有1-2mlHanks液（RPMi1640液）的试管内，轻轻搅拌，以500rpm低速离心5-10min后，弃上清液，将沉淀制成细胞悬液（浓度约2×106细胞/ml），吸取1滴于载玻片上，轻轻涂抹，待涂片略干即可固定。
该法穿刺吸取直接涂片的优点是操作简便，细胞形态保持较好。
缺点是细胞分布不均匀。
洗涂法片虽可弥补这一缺点，但操作复杂，细胞常常发生变形。
3．体液沉淀涂片法 主要用于胸水、腹水、尿液、脑脊液等体液多、细胞少的标本。
体液采取后，必须及时处理，更不宜加固定液。
根据标本内细胞数量的多少选用不同的处理方法：
①细胞数量极多者，可吸取少量液体直接涂在玻片上。
②细胞数量较少者，可将液体自然沉淀
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