微生物标本采集手册.docx

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微生物标本采集手册

微生物标本采集、运输、保存程序

1.目的

规范标本采集程序，保证实验室检测前样本质量。

2.范围

微生物实验室受理的标本。

3.职责

3.1医护人员和检验人员负责指导病人如何正确留取标本。

3.2门诊抽血人员和病房医护人员负责临床标本的采集，特殊标本由临床医师采集。

3.3由病房运输人员负责定时到临床各科室收集标本和运输标本；急症检验标本和值班采集的标本由临床科室相关人员直接送微生物室。

4.标本管理的安全性警示

4.1所有标本的采集和处理应在无菌操作、防止污染原则下认真进行；工作人员应做好个人防护如戴手套、防护服。

4.2所有标本应置于防渗漏、密封、不易破损的无菌容器中运送，条码应清晰注明标本的所有资料，并贴于标本容器，由运送人员在规定时间内安全送至微生物实验室。

4.3不能将已渗漏的标本运送至实验室。

5.标本的选择和采集

5.1在许多有正常菌群出现的感染部位（主要来自皮肤、粘膜、呼吸道、消化道），可能正常菌群过杂、过度生长，掩盖了真正的致病菌，会对培养结果产生影响。

因此采样时应避免有寄生菌的污染，保证每份标本能真实反映感染情况。

工作中如遇到不能向临床提供有意义信息的标本，可建议临床重取替代的标本或说明不处理的原因，此类标本见表。

无临床意义的标本及其替代标本或建议

标本类型

改进或建议（可替换的标本）

烧伤或伤口拭子

送组织块或抽吸物

结肠造口术排出物

不处理

压疮（拭子）

送组织块或抽吸物

Foley导管头（即尿道插管）

不处理

坏死性伤口拭子

送组织块或抽吸物

新生儿胃吸取物

不处理

恶露

不处理

牙周的损伤（拭子）

送组织块或抽吸物

肛周脓肿（拭子）

送组织块或抽吸物

静脉曲张性溃疡（拭子）

送组织块或抽吸物

呕吐物

不处理

5.2选择正确的采集部位、适当的时间、适当的设备采集标本。

5.3对于厌氧菌培养的标本，活检组织或针筒抽取物是最佳选择，厌氧菌拭子标本次之，但标本不可冷藏保存，应尽快送检，也可联系微生物室人员做床旁接种。

5.4采集足够量的标本，以保证检测的阳性率，量不足可能导致假阴性结果。

5.5每份标本的条码都应含有患者资料、标本类型、检验目的、采集部位、采集时间及送检医师等信息。

6.标本的运送

6.1所有用于常规细菌检验的标本须在采集后2h内送至微生物室，若延迟运送，必须置于运送拭子保存，脑脊液标本需15min内运送至微生物室。

6.2中段尿细菌培养标本置于2~4℃保存不能超过24h。

6.3厌氧菌培养标本，运送时间与标本量有关，标本量少时须在15~30min内送达，不能及时运送的组织标本必须保存于25℃以下厌氧转运系统中，并于24h内送检。

6.4疑似淋病奈瑟菌、脑膜炎奈瑟菌、流感嗜血杆菌等对低温敏感菌感染的标本应立即送检。

脑脊液、生殖道、眼、内耳等标本不可冷藏。

7.各类标本的采集

7.1血液和骨髓标本：

菌血症患者多数为间歇性发作，病原菌周期性出现于血液中，因此要求临床科室多次采集标本，建议每个患者在不同部位最少采集2套血培养以提高阳性率（每套含需氧和厌氧培养各1瓶）。

成人每次标本血量为每瓶8～10ml。

儿童每次血量3～5ml，注入小儿瓶，且一般只需做需氧菌培养。

血液和骨髓培养须特别注意消毒，因许多微生物，尤其葡萄球菌通常存在于皮肤表面或近表层处，易造成污染。

7.1.1采集容器：

根据申请单到微生物室领取血培养瓶，绿色瓶为成人中和抗生素培养瓶（用于已用抗生素的成人患者），黄色瓶为儿童血培养瓶（用于婴儿、儿童患者或部分标本量少的穿刺液或脑脊液），橘红色瓶为厌氧菌培养瓶（用于怀疑厌氧菌感染或针对某些营养要求较高的细菌）。

7.1.2采集时间或频率

7.1.2.1一般情况

在病人发热初期以及使用或更换抗生素前，于患者不同部位采集两套血培养标本（需氧、厌氧双份标本培养）。

对已使用抗生素患者，应在下次用药前或血药浓度低峰时采集标本。

7.1.2.2特殊情况

a急性感染性心内膜炎：

在经验性抗生素治疗前1～2h之内，于3个不同部位采集3套血培养标本。

如果24h内结果为阴性，则应继续采集2套血培养。

b亚急性感染性心内膜炎：

需在30min～1h内连续采集数套血培养，然后才开始抗菌药物的经验治疗。

C布鲁菌感染：

最佳采血时间为发热期，还可采取多次采血方法，即24h内于患者不同部位采集3～4套血液标本。

D原因不明发热：

从不同部位采集2～3套，间隔≥1h，如24h内为阴性，需再采集3套。

7.1.3采集方法

7.1.3.1皮肤消毒：

消毒肘静脉穿刺部位皮肤及周围，选择静脉或穿刺点，用75%乙醇从中心点向外消毒皮肤，再用碘酒按同样的方法消毒，待干后（0.5～1min）用乙醇棉球去碘迹，再用空针直接穿刺肘静脉。

7.1.3.2去除培养瓶上的封盖瓶帽，用75%乙醇棉球消毒橡皮塞，待干。

7.1.3.3用空针采集足够的血量先注入厌氧瓶，再注入需氧瓶中。

7.1.3.4标本采集后，用无菌棉签压迫穿刺点，拔出针头，叮嘱病人压紧穿刺点3min，将采血针放置到指定的利器盒中。

用75%乙醇去除血培养瓶上的血液并进行消毒。

7.1.3.5骨髓标本的采集：

穿刺采集的骨髓标本注入儿童血培养瓶内送检（培养瓶盖的消毒同上）。

7.1.3.6中心静脉留置导管血标本的采集：

用75%乙醇消毒导管及周围皮肤，再用碘酊按同样的方法消毒，待干（0.5～1min），拔去导管盖，消毒针心，先插入无菌注射器抽取至少0.5～1ml血液弃去，另取一无菌注射器抽取0.5～1ml血液注入儿童培养瓶内送检，然后在导管内注入肝素或无菌生理盐水。

7.1.4标本采集量

7.1.4.1成人：

5～10ml/成人瓶

7.1.4.2婴幼儿：

2～5ml/儿童瓶

7.1.5标本采集注意事项

7.1.5.1用75%酒精消毒瓶盖，不能用碘酒消毒。

7.1.5.2严格做好抽血部位的消毒及执行无菌操作。

7.1.5.3同时抽几个项目的血标本时，注入容器的顺序是先注入血培养瓶，同时做需氧和厌氧时，先将标本注入厌氧瓶，再注入需氧瓶，在标本量少的情况下，应先满足需氧瓶用量。

7.1.5.4已采集的血培养标本必须立即送检，如不能立即送检，可放置室温，勿放冰箱保存。

7.1.5.5病人信息标签不可覆盖血培养瓶的条形码。

7.1.5.6如诊断导管相关性血流感染，需同时经导管和静脉各采集血培养一套送检。

7.2脑脊液标本

7.2.1采集时间怀疑为脑膜炎的病人，在使用抗生素前应立即采集脑脊液进行培养。

7.2.2采集方法

7.2.2.1患者应禁食，由临床医生以无菌操作行腰椎穿刺（成人在第3和第4腰椎间隙或稍低处穿刺，防止损伤脊髓，小儿则在第4和第5腰椎间隙穿刺），抽取脑脊液2～3ml，按不同的检验项目分别注入不同的容器中，如为需氧菌、真菌培养和涂片检查，注入无菌试管中，加盖，半小时内送检；如为厌氧菌培养，注入厌氧血培养瓶送检。

7.2.2.2因脑膜炎奈瑟菌离体后能产生自溶素而迅速自溶，肺炎链球菌及流感嗜血杆菌离体后也易死亡，故脑脊液标本采集后必须立即送检。

如做细菌培养，需在30分钟内送达细菌室；如延迟送检，需注入血培养瓶中。

7.2.3注意事项

7.2.3.1对于不同项目检验的脑脊液标本所需最小标本量：

细菌培养≥1ml，真菌培养≥2ml。

7.2.3.2如标本不能及时送检，决不能置于冰箱保存，天气寒冷时要注意在保温条件下送检，以免病原菌死亡，影响检出率。

7.2.3.3如仅收集到1ml的脑脊液，应首先进行微生物检验，如＞1ml，则选择被血污染较少的部分进行微生物检验。

7.3痰及其它呼吸道标本

7.3.1痰标本的采集时间：

抗生素使用前，一般以晨痰为好。

7.3.2痰标本的采集方法：

7.3.2.1自然咳痰法：

患者自行采样。

告知患者在留痰前先用冷开水或无菌生理盐水反复漱口（有假牙的病人首先取下假牙），以减少常居菌的污染，然后用力咳出气管深处痰液（可轻拍背部），吐入无菌痰杯中送检。

7.3.2.2支气管镜下采集法：

病人采取仰卧位，吸入麻醉药，由医护人员操作经鼻插入气管镜：

①如需取器官刷洗物，则将毛刷插入双套毛刷管道，将毛刷从管道中推出并采集刷取物，然后将刷子拉回鞘内并将整个细胞刷装置推出双腔镜管道，拿出刷子，放置于装有生理盐水的无菌杯中送检；②如需取支气管肺泡灌洗液，则将痰液收集器连于气管镜，缓慢地注入10ml无菌生理盐水于管腔中，经过3~4次灌洗后，将痰液收集器中的标本送检；③如取肺组织活检（主要是针对抗酸杆菌和真菌培养），由医护人员在X线引导下操作，将活检镊子缓慢推进到管腔末端，并推出管腔进入肺组织，开启监视屏幕，将活检镊移入胸膜内2.5cm处，张开镊子推入肺组织采集标本，一般需采集3份标本，放入含1~2ml无菌生理盐水的无菌杯中送检。

7.3.2.3气管穿刺法：

当培养结果很关键、非侵入性检测没有效果的重症感染且怀疑需做厌氧菌培养时，通过气管穿刺或在环甲膜水平以下直接穿刺取肺分泌物，先麻醉、消毒穿刺部位，将针头刺进甲状软骨表面的皮肤并刺入气管，用注射器或抽取装置抽吸尽可能多的液体，如分泌物很少，则注入2~4ml无菌生理盐水以诱导咳嗽以便获取足量的标本，标本采集后立即排出空气，插入无菌的橡皮塞或注入厌氧运送培养基内送检。

7.3.2.4诱导咳痰：

对无痰、少痰或痰浓不易咳出者，可用45℃加温生理盐水雾化吸入，以使痰液易于咳出；对于小儿可采取轻压胸骨柄的方法。

7.3.2.5位体引流：

支气管扩张症患者，清晨起床后进行，可采集大量痰标本。

7.3.2.6结核分枝杆菌标本收集法：

检查结核分枝杆菌应收集24h痰液以提高阳性检出率。

7.3.3注意事项

7.3.3.1常规细菌培养标本须在2h内送至微生物实验室，疑为嗜血杆菌感染、肺炎链球菌感染时，标本采集后应立即送检。

7.3.3.2标本内切勿混入唾液及鼻咽分泌物。

7.3.3.3气管冲洗液中麻醉液可抑制细菌生长导致检出率下降。

气管刷采集的标本量很少，需先在无菌杯中加入生理盐水再放标本。

7.3.3.4气管镜标本和痰标本一般不适用于厌氧菌培养，痰标本不理想时可考虑采集支气管肺泡灌洗液标本。

7.3.3.5最好的标本应≤10个鳞状细胞/LPF。

7.4咽拭子、鼻咽拭子标本

7.4.1采集时间

在应用抗生素之前采集，以晨起后采集为宜。

7.4.2采集方法

7.4.2.1咽拭子采集：

嘱患者先用清水漱口，将病人的舌头向外拉，使悬雍垂尽可能向外牵引，用无菌拭子揩去溃疡或创面浅表分泌物，后用运送拭子越过舌根到咽后壁或悬雍垂的后侧（肉眼可见的红肿或白膜部位）反复涂抹数次，拭子要避免接触到口腔和舌粘膜，取样后插入运送拭子的培养瓶中，立即送检。

7.4.2.2鼻咽拭子：

嘱患者先用清水漱口，用预先运送拭子伸入鼻腔至少深1cm处，在鼻内病灶边缘部分，先用力旋转拭子，停留10~15s后取出，插入拭子培养基中，立即送检。

7.4.3注意事项

7.4.3.1鼻咽部标本不能用来检测鼻窦感染的病原体，咽拭子培养不能用于会厌发炎的病人。

7.4.3.2鼻咽部标本培养主要用于诊断咽峡炎病人及念珠菌性口腔炎，常规只检测β-溶血链球菌和溶血隐秘杆菌及念珠菌。

7.4.3.3不建议用鼻咽部拭子标本做常规细菌培养。

7.5眼、耳、鼻标本

7.5.1采集时间

原则上应在使用抗生素之前采集。

7.5.2采集方法

7.5.2.1眼结膜标本：

分别用两支以无菌生理盐水蘸湿的无菌拭子在双眼结膜滚动采集标本，置于无菌试管，于15min内送至微生物实验室，建议床边直接接种于血平板培养基、沙保弱平板培养基上。

只有一只眼结膜感染，也建议采集两眼的标本同时送检以作对照，排除原有菌群的干扰。

7.5.2.2角膜标本：

在麻醉情况下，用刮勺或无菌棉拭子在溃疡或创伤边缘刮取碎屑，直接接种在血平板培养基和沙保弱平板培养基上，于15min内送至微生物实验室。

7.5.2.3眼晶状体、玻璃体抽取液：

无菌操作采集标本，立即直接注入培养瓶送检。

7.5.2.4耳标本：

中耳炎患者，不建议用拭子采集标本，可用注射器抽取鼓膜后的分泌物。

先用消毒液清洗外耳道，切开鼓膜，通过耳窥器用引流管采集液体，也可用22号针头弯曲成30°后穿刺入鼓膜吸取液体，进行床边接种，需做厌氧培养时放入厌氧运送培养基内送检。

7.5.2.5鼻腔拭子标本：

用运送拭子，伸进一侧鼻孔约2.5cm，与鼻黏膜接触，轻轻地旋转拭子蘸取黏膜上分泌物，缓慢抽出，插入拭子培养基中立即送检。

7.5.3注意事项：

正常人的中耳及鼻窦内是无菌的，而耳、鼻标本易被黏膜上的正常菌群污染，在采集标本时应避免。

耳、鼻部位的细菌感染病原菌往往来源于口腔，口腔中既有需氧菌也有厌氧菌，故其周围组织器官的感染不仅要考虑需氧菌，也要考虑厌氧菌存在的可能性。

7.6尿液标本

7.6.1采集时间

应用抗生素前，晨起第一次尿液，以中段尿为宜，必要时行导尿术或膀胱穿刺，应严格执行无菌操作。

7.6.2采集方法

7.6.2.1女性中段尿：

先以肥皂水清洗外阴部，再以灭菌水洗净，用灭菌纱布擦拭，用手指将阴唇分开排尿，弃去前段尿，留取中段尿约10ml于无菌尿杯内，加盖立即送检（存放时间不超过2h）。

7.6.2.2男性中段尿：

翻转包皮，用肥皂水清洗尿道口，再以灭菌水清洗，留取中段尿约10ml于无菌尿杯内，加盖立即送检（存放时间不超过2h）。

7.6.2.3儿童、婴儿尿液标本

先以无菌生理盐水棉球清洗其外阴部或外生殖器，将无菌尿杯对准尿道口，用胶布固定好，待尿排出后立即送检。

7.6.2.4直接插导管采集尿标本：

一般插入导管后先弃去前段15ml尿后再留取送检标本。

尽量不采用导管采集标本，因为此操作极易将尿道细菌带入膀胱，增加医源性感染危险。

7.6.2.5滞留导管集尿：

先夹住导尿管，但不能超过30min，用75%乙醇消毒导管的专门采样口，用针筒抽取新鲜尿液5～10ml，置于无菌尿杯中送检。

滞留导管会增加膀胱细菌感染的机会，尽可能不采用。

7.6.2.624h集尿法：

用于结核分枝杆菌检查。

将24h尿收集于一清洁容器中，添加适当的防腐剂，取沉渣10ml送检。

7.6.2.7膀胱穿刺法：

此法常用于患儿、泌尿道厌氧菌感染或脊柱损伤病人等。

脐以下至尿道之间区域的皮肤经碘酒消毒后，再以75%乙醇擦拭，局部麻醉穿刺点部位，用无菌注射器在耻骨联合与脐连线上高于耻骨联合2cm处进针刺入膀胱，行膀胱穿刺，吸取10ml尿液后排出注射器内的空气，针头插于无菌橡皮塞上立即送检。

7.6.3注意事项

7.6.3.1尿液采集要求严格无菌操作，且必须注明标本采集方法。

7.6.3.2尿液采集后，常温下须在2h内送至微生物实验室，4℃保存不能超过24h。

7.6.3.3做细菌培养的尿液标本不得添加防腐剂。

7.6.3.4症状明显（如尿急、尿频、尿痛）的病人，1份标本已足够，治疗48～72h后再采集第2份标本送检。

对于症状不明显的病人，需采集2～3份标本送检。

7.6.3.5怀疑肾结核时，应连续3d采集晨尿。

经多次收集的尿液或24h尿不能用于细菌培养。

7.6.3.6长期留置导尿管的病人不能从导尿袋放出尿液进行细菌培养，因尿液在袋中滞留时间太长，容易滋生细菌，常规尿液细菌培养没有临床意义。

7.7穿刺液、引流液标本

因许多微生物，尤其葡萄球菌属通常存在于皮肤表面或近表皮处，易污染，应注意彻底消毒。

同时应尽可能留取多量标本。

7.7.1采集时间

使用抗生素前，停止用药1～2d后、下次用药前，或选择血药浓度较低时抽取。

7.7.2采集方法

7.7.2.1穿刺液：

用2%碘酊充分消毒皮肤，用注射器以无菌操作的方法抽取或引流体内可疑感染部位的液体（胸腔积液、腹水、胆汁、心包液、关节液或鞘膜液等），用无菌胶塞将注射器针头封住，于30分钟内送检。

如不能立即送检则将取得的穿刺液以无菌操作直接注入需氧血培养瓶内，如疑为厌氧菌感染，可注入厌氧血培养瓶内。

7.7.2.2引流液：

用70%酒精消毒导管采集部位，用注射器从引流管无菌采集2～5ml。

标本不能直接从引流袋放出，因为引流液在袋中潴留时间太长容易滋生细菌。

7.7.3采集标本量

胸腔积液及腹水一般抽取5～10ml，心包液、关节液一般抽取1～5ml。

7.7.4注意事项

尽量以标本的原始状态送检，勿用拭子送检；也不建议将拭子浸入液体标本中送检。

7.8脓液及烧伤创伤感染分泌物标本

7.8.1采集时间

使用抗生素前，停止用药1～2天后，下次用药前，或血药浓度较低时采集；烧伤创面标本早期应在深Ⅱ度烧伤溶痂和Ⅲ度焦痂分离期采集，后期则应采集深部烧伤标本于运送拭子立即送检。

7.8.2采集方法

7.8.2.1开放性脓肿的脓肿性分泌物：

先以无菌生理盐水或75%乙醇冲洗拭去溃疡表面渗出物，尽可能抽取置于注射器内送检。

如用拭子送检，则用1支灭菌棉拭子和1支运送拭子擦取溃疡基地部或边缘部位的分泌物后，插入运送拭子培养基内立即送检，一支涂片检查，一支用于细菌培养。

此类标本不适合做厌氧菌培养。

7.8.2.2封闭性脓肿：

一般不主张拭子送检。

以碘酊消毒脓肿局部皮肤或黏膜表面后，用注射器穿刺（一般穿刺中心部位）抽取脓液3～10ml注入无菌试管或成人血培养瓶内送检。

疑为厌氧感染时，应做床边接种或注入厌氧培养瓶内（3～10ml）送检。

最佳方法是采集组织送检，用注射器将脓肿内容物吸出后切开脓肿引流，取部分脓肿壁送检。

如做厌氧菌培养，需置于厌氧运送培养基内送检。

7.8.2.3大面积烧伤的创面分泌物：

以无菌生理盐水或75%乙醇清洗伤口表面后用运送拭子取多部位创面的底部脓液或分泌物，插入运送拭子培养基内送检。

此种标本只能做需氧菌培养。

7.8.2.4压疮溃疡：

用无菌生理盐水清洗溃疡表面，采集活检标本，如用拭子，则用力采集损伤底部，运送拭子送检。

7.8.2.5脓疱或水疱：

75%乙醇消毒、干燥，用针头（小儿用23号针头）挑破脓疱，拭子采集脓疱液和基底细胞标本，运送拭子送检。

7.8.3注意事项

7.8.3.1烧伤的创面、压疮溃疡、脓肿标本均不提倡采集表面或表皮组织，优选组织活检或抽取物。

7.8.3.2不提倡采集动物咬伤12h内的伤口，除非存在感染指征。

7.9导管标本

7.9.1采集方法

用75%乙醇清洁导管周围的皮肤，无菌操作将约5cm导管尖端放入无菌杯中立即送检，以防导管干燥。

7.9.2注意事项

尖端与皮端导管标本需分别放置在无菌杯中送检，并清晰注明。

7.10粪便标本

7.10.1采集时间

7.10.1.1腹泻病人在急性期用药前采集。

7.10.1.2沙门菌感染的肠热症患者在发病2周后采样。

7.10.1.3胃肠炎患者在急性期采集新鲜粪便，即在腹部痉挛发病6h内采集脓血便或液状便。

7.10.2采集方法

7.10.2.1自然排便法：

自然排便后，挑取脓血、黏液便2～3g作常规性病原菌培养；液体便取絮状物2～3ml，直接放于无菌杯内送检。

7.10.2.2直肠拭子法：

不易获得粪便时可采用直肠拭子法采集，将无菌拭子用生理盐水湿润后插入肛门4～5cm（幼儿2～3cm），在肛门括约肌处柔和地旋转，于肛门隐窝处取样，可在拭子上明显见到粪便，然后插入无菌管或采用运送拭子立即送检。

7.10.2.3霍乱弧菌培养：

用微生物实验室准备的霍乱弧菌培养专用碱性胨水培养基，自然排便法或直肠拭子法取样，用无菌操作法放入培养试管，加塞送检。

7.10.3注意事项

7.10.3.1除排便困难的患者外，不推荐用拭子做常规性病原菌培养，诊断腹泻最好是粪便标本而非拭子采样的标本。

7.10.3.2患者不能自行直肠拭子采集，直肠拭子法采集的标本不能用于检测艰难梭状芽孢杆菌。

7.10.3.3标本不能混入尿液、消毒剂及其他化学药品。

7.10.3.4标本需1h内送至微生物实验室，如疑为大肠埃希菌O157：

H7、耶尔森菌、弧菌、弯曲菌和气单胞菌、艰难梭状芽孢杆菌等感染，应增加有针对性的培养。

7.10.3.5建议每日采集3次标本进行粪便微生物培养，连续采集3d。

7.10.3.6住院时间超过3天或入院诊断不是胃肠炎的病人不做常规粪便培养。

7.11生殖系统标本

7.11.1采集时间

使用抗生素前，停止用药1～2d后，下次用药前，或药物浓度较低时采集。

7.11.2采集方法

7.11.2.1宫颈分泌物：

用无润滑剂的扩阴器暴露宫颈，拭去宫颈口黏液后，将运送拭子插入子宫颈口1～2cm并旋转一周，停留大约10s后取出，放回运送拭子培养基中，立即送检。

7.11.2.2阴道分泌物：

拭去过多的分泌物和排出液，用运送拭子在阴道后穹窿部黏膜处采集分泌物送检，如需涂片检查，则再取一个普通拭子的标本。

7.11.2.3女性尿道分泌物：

嘱患者排尿1h后采样，先拭去尿道口的渗出物，将无菌拭子插入尿道，在耻骨联合处按摩尿道，采集尿道分泌物于运送拭子送检。

7.11.2.4男性尿道分泌物：

翻转包皮，用肥皂水清洗尿道口，清水冲洗，用男性专用无菌拭子插入尿道2～4cm旋转后停留至少20s，取出拭子放入无菌管送检。

也可用挤压的方法从尿道挤出渗出物，用运送拭子送检，如需涂片则用另一普通拭子送检。

7.11.2.5前列腺分泌物：

用肥皂水和清水清洗尿道口及附近皮肤，从肛门直肠处按摩前列腺获得分泌物，用无菌杯采集或用运送拭子送检。

7.11.2.6前庭大腺脓液：

前庭大腺囊肿的脓液可直接用手指挤压或用注射器吸取，收集于无菌杯或运送拭子立即送检。

7.11.2.7子宫内膜标本：

用抽取装置收集标本，不能用拭子采集，因可能造成宫内感染或阴道菌群失调。

7.11.2.8盆腔感染的标本：

在后穹窿通过穿刺术收集标本，输卵管和卵巢标本则需通过外科手术的方法来获取。

7.11.2.9儿童生殖道标本：

用拭子进行阴道分泌物的采集，应尽可能做培养。

对于男孩，建议用触压的方法进行渗出物的采集。

7.11.3注意事项

7.11.3.1恶露标本不作为培养标本，一般选择组织活检或针头抽吸标本。

7.11.3.2细菌性阴道炎不主张做细菌培养来判别，推荐用革兰染色方法来确定。

7.11.3.3疑为淋病奈瑟菌感染，采集的标本应床边接种淋病奈瑟菌专用培养基或运送拭子送检。

7.11.3.4疑为生殖道或泌尿道结核分枝杆菌感染，可取月经血或尿液做检验。

7.11.3.5疑为梅毒螺旋体感染，从外生殖器的硬下疳处采集组织深层标本。

因梅毒螺旋体存在于组织深层，不宜采取表面渗出液。

7.12组织标本

7.12.1采集时间

7.12.1.1浅表皮肤黏膜：

使用抗生素之前采集。

7.12.1.2深部组织：

手术时或内窥镜检查时采集。

7.12.2采集方法

无菌操作留取标本于无菌杯中，将无菌杯中加入少量无菌生理盐水避免组织干燥，立即送检。

7.12.3注意事项

7.12.3.1严格无菌操作，少量标本应滴入几滴无菌生理盐水保持湿润，不能使标本干涸。

7.12.3.2各种活检组织标本，应在15min内送检。

7.12.3.3甲醛固定的组织块标本不能用于病原微生物培养。