茯苓多糖口服液药效学试验资料.docx

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茯苓多糖口服液药效学试验资料

茯苓多糖口服液产品资料

茯苓多糖口服液药效学试验资料

茯苓是一种传统中药,又是名贵食用真菌。

茯苓中含有丰富的β-茯苓聚糖,羧甲基茯苓多糖为β-茯苓聚糖改造后的衍生物,我们将其制成茯苓多糖口服液(简称CMP口服液),对其进行了如下实验研究。

(一)对免疫功能的影响

1、茯苓多糖口服液对免疫器官重量的影响

2、茯苓多糖口服液对抗体溶血素的影响

3、茯苓多糖口服液对巨噬细胞吞噬功能的影响

4、茯苓多糖口服液对天然杀伤细胞(NK细胞)活性的影响

5、茯苓多糖口服液对肿瘤坏死因子含量的影响

6、茯苓多糖口服液对白细胞介素-2(IL-2)活性的影响

(二)茯苓多糖口服液对肿瘤作用的实验研究

1、对小鼠肉瘤180(S180)的抗癌作用

2、对小鼠爱氏腹水瘤(EAC)的抗癌作用

实验材料

(一)药物:

茯苓多糖口服液由本院中药所资源室提供,批号93090480mg/10ml/支,药液浓缩至9.6mg/ml,给药量为120mg,240mg/㎏,相当于临床用量的5、10倍。

(二)动物:

昆明种小鼠,18~22g,雌雄各半,由湖南省卫生防疫站动物实验中心提供。

昆明种小鼠,18~19g,雌雄兼用,由同济医科大学医学动物中心提供。

NIH纯种小鼠,20±0.5g,雌雄兼用,同济医科大学医学动物中心提供。

(三)瘤株:

爱氏腹水瘤(EAC~ESC),S180由同济医科大学肿瘤研究室提供。

(四)试剂:

环磷酰胺:

由上海十二制药厂生产(批号901202)使用当天用生理盐水配成所需浓度75mg/kg,

5-Fu:

天津和平制药厂生产(批号921004)。

豚鼠血清:

由湖南生物药厂动物中心提供。

SDS:

(十二烷基硫化钠)SICMA产品。

实验方法与结果

(一)对免疫功能的影响

1、对免疫器官重量的影响:

将18-22g小鼠(雌雄兼用)随机分为四组,每组12只动物。

生理盐水组和生理盐水加环磷酰胺组,CMP口服液组分别按120mg,240mg/kg灌胃给药,各组灌胃均为等效量体积,除生理盐水组外,所有动物于第7天鸡血红细胞致敏,致敏前后各皮下注射环磷酰胺1次,连续给药10天,次日放血,处死动物,称取胸腺、脾脏重量。

结果表明,240mg/kg组与环磷酰胺组比较胸腺、脾脏重量明显增加,经统计学处理,有非常显著性差异。

(结果见表I)

表Ⅰ:

茯苓多糖口服液对小鼠免疫器官重量的影响(±SD)

组别

剂量

(g/kg)

动物数

(n)

体重

(g)

脏器系数(mg/10g)

胸腺

脾脏

生理盐水

25ml

12

25.5±3.98

74.01±18.69

106.43±23.45

生理盐水+Cy

25ml

12

24.63±2.35

28.49±8.81△△△

64.58±27.93△△△

GMP口服液+Cy

120

12

25.89±3.93

29.30±7.07△△△

57.34±21.13△△△

CMP口服液+Cy

240

12

23.34±3.37

42.91±8.09※※※

103.45±28.98※※

注:

与生理盐水组比“△△△”P<0.001

与生理盐水+Cy组比“※※”P<0.01,“※※※”P<0.001

2、对抗体溶血素产生的影响

分组及给药方法与实验1相同。

血清抗鸡红细胞溶血素抗体含量测定按《中药药理实验方法学》“血清溶血素测定方法”进行。

稀释血清加鸡红细胞悬液及稀释豚鼠血清,温育30分钟后离心,比色测定光密度。

以光密度读数作为判定血清溶血素的指标,比较各组的差异。

结果表明,茯苓多糖口服液240mg/kg组光密度值明显升高,与NS+Cy组比,P<0.01有非常显著性差异。

120mg/kg组与NS+Cy组比光密度略有升高,但无统计学差异。

(见表Ⅱ)

表Ⅱ:

茯苓多糖口服液对抗体溶血素产生的影响(±SD)

组别

剂量

mg/kg

动物数

n

OD值

生理盐水

25ml

12

0.260±0.09

NS+Cy

25ml

12

0.130±0.02△△△

CMP口服液+Cy

120

12

0.140±0.006△△△

CMP口服液+Cy

240

12

0.157±0.02※※△△△

注:

与生理盐水组比:

“△△△”P<0.001

与NS+Cy组比:

“※※※”P<0.01

3、对腹腔巨噬细胞吞噬能力的影响:

分组及给药方法同前,实验前4天腹腔注射0.5%淀粉生理盐水溶液,每鼠0.5ml,实验时按《药理实验方法学》中小鼠巨噬细胞吞噬鸡红细胞实验方法进行。

实验时每鼠腹腔注射2%鸡RBC悬液1ml,30分钟后,处死动物,剪开腹部皮肤,经腹膜注入NS2ml,轻揉鼠腹部1分钟,取腹腔液制片,4%(V/V)Giemsa磷酸缓冲液染色计数。

表Ⅲ:

茯苓多糖口服液对巨噬细胞吞噬功能的影响(+SD)

组别

剂量

mg/kg

动物数

n

吞噬百分率

吞噬指数

生理盐水

25ml

12

67.75±8.72

1.93±0.52

NS+Cy

25ml

12

40.08±11.22△△△

0.81±0.31△△△

CMP口服液+Cy

120

12

50.42±10.09△△△※

1.01±0.21△△△

CMP口服液+Cy

240

12

57.67±11.63△※※

1.51±0.52※※※

注:

与生理盐水组比:

“△△△”P〈0.001“△”P〈0.05

与NS+Cy组比:

“※”P〈0.05“※※”P〈0.01

“※※※”P〈0.001

4、对NK细胞活性的影响

1对正常动物NK细胞活性的影响

选用20-22g昆明种小鼠,随机分为三组,生理盐水组,药物茯苓多糖口服液组120、240ml/kg组给药,各组均为等容量溶液灌胃给药,连续给药12天,末次给药的次日处死动物测定NK细胞的活性。

NK细胞活性采用“3H释放法”。

颈椎脱臼处死小鼠,无菌条件下制备脾细胞悬液,将细胞调至所需浓度,即为效应细胞(E)悬液。

取原制备的靶细胞(T)悬液,E悬液各0.1ml加入96孔u型培养板中,E/T比取100:

1,每个样品设三个平行孔。

用培养基代替效应细胞作为自然释放,用SDS代替效应细胞作为最大释放。

培养板置CO2温箱孵育18hr后,从各孔吸取0.1ml上清液置小塑管中,r计数器测CPM值。

结果表明,给药高、低剂量组的NK细胞活性均高于对照组,但无统计学差异。

(见表Ⅳ)

表Ⅳ:

茯苓多糖口服液对正常小鼠NK细胞活性的影响(±SD)

组别

剂量

mg/kg

动物数

n

NK细胞活性

(%)

生理盐水

25ml

11

55.67±19.13

CMP口服液

120

11

65.24±9.63

CMP口服液

240

12

67.02±7.92

2对荷瘤动物NK活性的影响

取20±0.5gNIH纯种小鼠40只,雌雄兼用。

在每鼠右腋皮下接种EAC瘤细胞2×106个细胞。

接种后第二天,随机分为4组,每组10只动物,第1组为正常对照组,每只动物每日灌服0.6ml蒸馏水作阴性对照,第2组为5-Fu组,每日灌服15mg/kg作阳性对照,第3、4组为茯苓多糖口服液组,每日灌服剂量依次为100200mg/kg。

给药8日后处死动物,在处死前2日,每日动物腹腔注射6%淀粉肉汤1ml,连续2天,处死动物后应用LDH释放法测定NK细胞活性。

无菌取出小鼠脾脏,常规制备脾细胞悬液,最后用完全营养液调整细胞浓度至1×107/ml。

设NK试验孔、自然释放孔及最大释放孔。

用1%的NP-40破坏靶细胞作为最大释放孔。

按下表加样于40孔培养板,每个标本设3个复孔。

YAC-1细胞

效应细胞

完全营养液

1%NP-40

NK试验孔

100ul

100ul

自然释放孔

100ul

100ul

100ul

最大释放孔

100ul

其中YAC-1细胞传代培养24~48hr,使用前经洗涤后的完全营养液配成1×106/ml,效靶=100:

1,效靶混合后,置37℃5%CO2孵箱中培养16hr,然后各孔吸取上清液100ul置96孔培养板中,于37℃预温,随后每孔加入100ulLDH底物混合液,放室温作用15分钟,加终止反应液后在490nm波长处用酶标检测仪检测各孔的OD值。

各孔NK活性值计算如下:

     试验孔OD值-自然释入孔OD值

NK活性%=————————————————×100%

       最大释放孔OD值-自然释放孔后

实验结果表明,服用茯苓多糖口服液剂量100~200mg/kg后,能明显增强荷瘤小鼠NK细胞活性。

(见表Ⅴ)

表V:

茯苓多糖口服液对荷瘤小鼠NK活性的影响(±SD)

组别

剂量

mg/kg

动物数

n

NK细胞活性

(%)

t值

P值

阴性对照组

10

12.01±1.93

5-Fu组

15

10

16.01±2.58

3.88

<0.01

CMP口服液

100

10

14.82±1.88

3.27

<0.01

CMP口服液

200

10

15.56+3.44

2.82

<0.05

5、对荷瘤动物肿瘤坏死因子含量的影响:

荷瘤、分组及给药方法与对荷瘤动物NK细胞活性的影响相同。

应用酶联免疫吸附(ELISA)法检测腹腔Mψ中产生的TNF的含量。

1小鼠腹腔Mψ中的肿瘤坏死因子(TNF)的诱生

a)小鼠处死前2日,每天腹腔注射6%淀粉肉汤1ml/每只鼠,连续2天。

b)处死小鼠,取腹腔中的Mψ,洗涤2次,用完全营养液调整细胞浓度至2×106/ml。

c)取上述细胞悬液1ml,加入24孔细胞培养板中,贴壁2小时后用RPMI1640洗涤2次,加入终浓度为10ug/ml的LPS,培养16hr后,收集上清液。

-20℃冻存备用。

2TNF含量的测定

a)包板:

将抗TNF单抗Tδ和E6(浓度均为1mg/ml)分别取5ul加入1240ul包被缓冲液中,稀释后二种抗体等量混合加入酶标板,每孔50ul,置4℃过液。

b)封闭:

包被好的板经洗涤后,加入封闭液(缓冲液)每孔100ul,37℃放置30分钟。

c)封闭好的板洗涤后,加入按一定比例稀释(8个梯度)的TNF标准品和待检上清液,每孔50ul,置室温1hr。

d)加一抗:

反应后的板经洗涤后,加入1:

100稀释的兔抗TNF抗体,每孔50ul室温反应1小时。

e)加辣根过氧化物酶标记的羊抗兔抗体:

上述反应的板经洗涤后加入1:

100稀释的酶标记抗体,每孔50ul,室温反应40-60分钟,洗涤。

f)加底物OPD显色:

待等比释孔颜色梯度明显时,用2NH2SO4终止反应,在酶联检测仪各孔OD值。

已知标准TNF含量与其相应孔OD值呈线性关系。

根据所得OD值,经过相关分析,可得各待检孔的相应TNF的含量。

结果表明,茯苓多糖口服液能使TNF含量增高。

当剂量在200mg/kg时,荷瘤小鼠中的TNF含量与对照组相比明显增高,经统计学处理P<0.05。

(见表Ⅵ)

表Ⅵ:

茯苓多糖口服液对荷瘤小鼠TNF含量的影响(±SD)

组别

剂量

mg/kg

动物数

n

TNF含量

(×105ug/ml)

t值

P值

阴性对照组

10

8.05±1.46

5-Fu组

15

10

12.28±4.03

3.11

<0.05

CMP口服液

100

10

8.50±2.53

0.48

>0.05

CMP口服液

200

10

9.69±1.42

2.52

<0.05

6、对正常动物白细胞介素-2(IL-2)活性的影响

选用20-22g小鼠,随机分为三组,对照组每天灌胃等容量生理盐水,两个给药组分别按120mg/kg,240mg/kg灌胃羧甲基茯苓多糖口服液,连续给药12天后,处死动物,无菌摘取脾脏,进行IL-2依赖细胞株(CTLL2)培养,CTLL2细胞在培养基中于24孔板中传代。

然后再96孔板中稀释标本,稀释度为1:

2、1:

4、1:

6、1:

32、1:

64,体积0.1ml,每一稀释度2-3个复孔,将CTLL细胞从24孔板中吸入离心管中,加RPMI-1640,200×10分钟重复3次洗涤细胞,用含10%小牛血清RPMI-1640调整细胞浓度为1×105/ml,将调整好浓度的CTLL细胞加入到已稀释标本的96孔板中,每空0.1ml,轻轻混匀,放到5%CO237℃培养箱中培养17hr,加入8H-Tdr0.5uci/孔,继续培养6hr,用多头细胞收集器收获细胞,加入闪烁液,于Beckmen液闪仪上测cpm。

以不同稀释度IL-2标本cpm值作直线回归,即用y=a+b×公式计算IL-2活性单位,用t检验进行组间比较。

实验结果表明,茯苓多糖口服液能明显提高IL-2的活性,与对照组相比,有非常显著性差异。

(见表Ⅶ)

表Ⅶ:

茯苓多糖口服液对小鼠IL-2活性的影响(±SD)

组别

剂量

mg/kg

动物数

n

IL-2

(刺激指数)

生理盐水

25ml

11

23.74±8.58

茯苓多糖口服液

120

11

44.03±8.26※※※

茯苓多糖口服液

240

12

36.96±10.65※※

注:

与对照组相比:

“※※”P<0.01,“※※※”P<0.001

(二)抗肿瘤的实验研究

1、对大鼠肉瘤S180的作用

取S180菌株,以生理盐水稀释至0.2ml中含5×106细胞数。

接种到每只大鼠右前肢腋下,然后随机分为5组,每组10只动物。

第1组为阴性对照组,每天灌胃等容量NS,第2组为5-Fu阳性对照组按20mg/kg灌胃5-Fu药液;第3、4、5组为茯苓多糖口服组,分别按100、200、300mg/kg灌胃药液在接种后24hr给药,每天一次,按常规求出肿瘤抑制率。

当抑制率>30%,P<0.05,动物死亡数<20%,动物体重下降率<15%时认为有效,结果见表Ⅷ。

表Ⅷ:

茯苓多糖口服液对S180瘤株的作用

组别

剂量

mg/kg

给药途径

×疗程(天)

动物数(只)

始/末

体重变化率(%)

瘤重(g)

(±SD)

抑制率

(%)

生理盐水组

25ml

P0×8

10/10

44.5

1.34±0.32

5-FU组

20

P0×8

10/10

35.35

0.54±0.43

59.70※※

茯苓多糖口服液

100

P0×8

10/10

54.54

0.48±0.34

64.17※※

茯苓多糖口服液

200

P0×8

10/10

45.58

0.70±0.36

47.76※

茯苓多糖口服液

300

P0×8

10/10

35.54

0.51±0.53

61.94※※

注:

与对照组相比:

“※”P<0.05,“※※”P<0.01

第一次重复试验,分组,剂量,给药时间均与上同,结果见表Ⅸ

表Ⅸ:

茯苓多糖口服液对S180瘤株的作用

组别

剂量

mg/kg

给药途径

×疗程(天)

动物数(只)

始/末

体重变化率(%)

瘤重(g)

(±SD)

抑制率

(%)

生理盐水组

25ml

P0×8

10/10

32.5

1.30±0.22

5-FU组

20

P0×8

10/10

21.98

0.67±0.14

48.26※

茯苓多糖口服液

100

P0×8

10/10

14.86

0.54±0.12

58.61※※

茯苓多糖口服液

200

P0×8

10/10

37.41

0.78±0.14

40.07※

茯苓多糖口服液

300

P0×8

10/10

29.49

0.74±0.16

43.08※

注:

与对照组相比:

“※”P<0.05,“※※”P<0.01

第二次重复试验,分组,给药时间均与上同。

给药组灌胃茯苓多糖口服液分别为150、300mg/kg。

阴性对照组,5-Fu阳性对照组给药同前。

结果见表Ⅹ。

表Ⅹ:

茯苓多糖口服液对S180瘤株的作用

组别

剂量

mg/kg

给药途径

×疗程(天)

动物数(只)

始/末

体重变化率(%)

瘤重(g)

(±SD)

抑制率

(%)

生理盐水组

25ml

P0×8

10/10

31.94

1.59±0.63

5-FU组

20

P0×8

10/10

-1.0

0.375±0.21

76.4※※

茯苓多糖口服液

150

P0×8

10/10

31.22

1.17±0.47

26.7

茯苓多糖口服液

300

P0×8

10/10

39.3

1.15±0.20

28.0

注:

“※※”P<0.01,与对照组相比

以上实验表明:

口服茯苓多糖口服液100~300mg/kg8天,对小鼠肉瘤S180的抑制率分别为64.17%~40.07%,经统计学处理均有显著的抗癌作用。

2、对EAC腹水型瘤株的作用。

荷瘤分组,给药时间均与对S180瘤株的作用相同。

给药组分别按150mg、300mg/kg灌胃茯苓多糖口服液,阴性对照组给等体积生理盐水,5-Fu阳性对照组按20mg/kg灌胃5-Fu药液。

结果见表Ⅺ。

表Ⅺ:

茯苓多糖口服液对EAC瘤株的作用

组别

剂量

mg/kg

给药途径

×疗程(天)

动物数(只)

始/末

体重变化率(%)

瘤重(g)

(±SD)

抑制率

(%)

生理盐水组

25ml

P0×8

10/10

19.15

1.06±0.16

5-FU组

20

P0×8

10/10

0

0.45±0.16

57.45※※

茯苓多糖口服液

150

P0×8

10/10

15.5

0.43±0.18

59.81※

茯苓多糖口服液

300

P0×8

10/10

15.63

0.54±0.21

49.06※

注:

与对照组相比:

“※”P<0.05“※※”P<0.01

重复一次试验,分组,给药时间均与上同。

给药组分别按300mg/kg,600mg/kg灌胃口服液,阴性对照组及5-Fu阳性对照组给药同前。

结果见表Ⅻ

 

表Ⅻ:

茯苓多糖口服液对EAC瘤株的作用

组别

剂量

mg/kg

给药途径

×疗程(天)

动物数(只)

始/末

体重变化率(%)

瘤重(g)

(±SD)

抑制率

(%)

生理盐水组

25ml

P0×8

10/10

14.41

1.02±0.15

5-FU组

20

P0×8

10/10

3.58

0.41±0.19

59.80※※

茯苓多糖口服液

300

P0×8

10/10

15.61

0.62±0.25

39.70※

茯苓多糖口服液

600

P0×8

10/10

-8.8

0.51±0.28

49.90※

注:

与对照组比较“※”P<0.05,“※※”P<0.01

以上实验表明,口服茯苓多糖口服液150~600mg/kg8天,对EAC的抑制率分别为39.70~59.81%,经统计学处理,具有明显的抗癌作用。

小结

一、环磷酰胺可使小鼠胸腺、脾脏的重量,产生溶血素的水平,巨噬细胞的吞噬能力明显降低。

在给环磷酰胺同时,给茯苓多糖口服液则可对抗环磷酰胺的抑制作用,可明显提高小鼠胸腺、脾脏的重量,溶血素抗体含量,巨噬细胞的吞噬功能,大剂量组的作用尤为突出,表明该药在调节机体免疫功能,增强机体自身免疫能力方面有着重要的意义。

二、NK活性细胞是机体的重要免疫监视细胞,在机体第一线防御机制中行使主要功能,他们不经致敏即可直接杀伤多种肿瘤细胞和带病毒细胞,还参与机体对免疫反应的调节。

本实验结果说明,服用CMP口服液后能明显增强正常小鼠和荷瘤小鼠NK细胞活性,其作用与剂量相关,随着剂量的增加活性增强。

三、口服茯苓多糖口服液剂量在100mg/kg时,荷瘤小鼠肿瘤坏死因子(TNF)含量与对照组相比较无差异,即对TNF含量无影响。

当剂量在200mg/kg时,荷瘤小鼠中的TNF含量与对照组相比,有显著性差异。

说明茯苓多糖口服液对荷瘤小鼠的TNF有影响,TNF含量随剂量增加而增加,即TNF含量与剂量相关。

四、白细胞介素-2(IL-2)的研究起来越引起人们的重视。

它是重要的细胞因子,在免疫与炎症反应中均有重要的作用。

它可以诱导T杀伤细胞,为肿瘤治疗提供新的手段。

本实验结果说明,茯苓多糖口服液能明显提高正常小鼠IL-2的活性。

五、茯苓多糖口服液对两种动物移植性肿瘤有不同程度的抑制作用。

该口服液对S180,EAC两种瘤株的抑制作用与口服5-Fu一样具有抑制作用。

而抑制作用与剂量有关,使用剂量在100~600mg/kg为宜,本口服液毒性较低,长期服用对动物体重无影响。

综上所述,茯苓多糖口服液具有提高机体免疫功能,抗肿瘤的作用,故该口服液将成为疗效好,毒副作用低的保健新药。

参考文献

1.徐叔云主编《药理实验方法学》人民卫生出版社1992

2.李仪奎,等主编《中药药理实验方法学》上海科技出版社1992

3.张罗修主编《免疫药理学》上海医科大学出版社1990

4.湖南医科大学《免疫学实验指导》研究生用

课题组长:

高顺国设计者:

徐琳本

负责人:

徐琳本参加者:

徐琳本樊湘红

原始资料保存处:

湖南省中医药研究员中药所重点实验室

试验日期:

1993.10~1994.4原始资料保存人:

徐琳本

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