杀菌率试验规程.docx
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杀菌率试验规程
Q/KM—ZJ——2008
液体洗涤剂杀菌试验规程
(内部使用)
2008年月日内部执行
质量管理中心实验室
引用标准
1、GB15979-2002一次性使用卫生用品卫生标准
2、QB/T2738-2005日化产品抗菌抑菌效果的评价方法
3、QB/T2850-2007抗菌抑菌型洗涤剂
4、2002年版《消毒技术规范》(中华人民共和国卫生部)
5、2001年版《药品微生物学检验手册》(科技出版社)
杀菌率试验规程
1、试验菌、试验温度、作用时间、试液浓度
试验菌种:
金黄色葡萄球菌(ATCC6538),大肠杆菌(8099或ATCC25922),白色念珠菌。
试验温度:
20℃±1℃。
作用时间:
最短不得小于30s。
常规作用时间为2min、5min、10min、20min。
试液浓度:
中和剂鉴定用试液浓度应为正式杀菌试验最高浓度。
菌悬液用量:
正式杀菌试验用菌悬液的浓度、取量应与中和剂鉴定中1组、2组所用菌悬液的浓度、取量相同。
2、细菌繁殖体悬液、菌片的制备程序:
2.1菌悬液的制备
⑴取冻干菌种管,在无菌操作下,以毛细吸管加入适量营养肉汤,轻柔吸吹数次,使菌种融化分散。
取含5.0ml-10.0ml营养肉汤培养基试管,滴入少许菌种悬液,置37℃培养18h~24h。
用接种环取第1代培养的菌悬液,划线于营养琼脂培养基平板上,于37℃培养18h~24h。
挑取上述第2代培养物中典型菌落,接种于营养琼脂斜面,于37℃培养18h~24h,即为第3代培养物(放在4℃左右冰箱中保藏。
每隔2-3个月移种一次,继续保藏。
)。
⑵取第3代~14代的营养琼脂培养基斜面新鲜培养物(经18h~24h培养),用5.0ml吸管吸取3.0ml-5.0ml稀释液加入斜面试管内,反复吹吸,洗下菌苔。
随后,用5.0ml吸管将洗液移至另一无菌试管中,在手掌上振敲80次(力度适中,勿溅出),以使细菌悬液均匀。
或从新鲜菌种斜面沾取少量菌苔,接种在适合试验菌生长的培养基中,37℃培养18h~24h(或适宜时间)。
作为原菌液。
(源于《药品微生物学检验手册》211页)
⑶细菌繁殖体悬液应保存在4℃冰箱备用。
尽量减少在室温下放置时间,以减少细菌的自然死亡。
应当天使用不得过夜。
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回收菌数为1×10~9×10
cfu/ml用PBS液配置GB15979-2002《一次性使用卫生用品卫生标准》
回收菌数为1×108—5×108cfu/ml用TSB营养肉汤配置—2002《消毒技术规范》
2.2、菌片的制备程序:
《消毒技术规范》
⑴取冻干菌种管,在无菌操作下,以毛细吸管加入适量营养肉汤,轻柔吸吹数次,使菌种融化分散。
取含5.0ml-10.0ml营养肉汤培养基试管,滴入少许菌种悬液,置37℃培养18h~24h。
用接种环取第1代培养的菌悬液,划线于营养琼脂培养基平板上,于37℃培养18h~24h。
挑取上述第2代培养物中典型菌落,接种于营养琼脂斜面,于37℃培养18h~24h,即为第3代培养物。
⑵取第3代~14代的营养琼脂培养基斜面新鲜培养物(经18h~24h培养),用5.0ml吸管吸取
3.0ml-5.0mlTSB营养肉汤加入斜面试管内,反复吹吸,洗下菌苔。
随后,用5.0ml吸管将洗液移至另一
无菌试管中,在手掌上振敲80次,以使细菌悬液均匀,含菌量1×108—5×108cfu/ml。
⑶用无菌镊子夹住已灭菌10mm*10mm滤纸一角,一面朝上,注入10ul菌悬液,放到无菌平板内,37℃温箱中干燥20min-30min,(或在室温自然阴干后使用)制成菌片。
每个菌片回收菌落,按活菌培养计数所得结果,应为5×105—5×106cfu/片。
)
⑷细菌繁殖体悬液和菌片,用毕应随时保存在4℃冰箱内。
尽量减少在室温下放置时间,以减少细菌的自然死亡。
(应当天使用不得过夜。
)
3、操作程序
3.1、悬液定量法杀菌试验操作程序
⑴、样品用无菌标准硬水稀释至同中和剂鉴定用试液浓度,或低于中和剂鉴定用试液浓度,制成(稀释液)试验样液。
⑵、将试管按需要数量分别排列于试管架上,各组由左向右,排序、标记。
44
⑶、配制菌悬液,浓度为1×10~9×10
cfu/ml—GB15979-2002《一次性使用卫生用品卫生标准》或1
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×10—5×10cfu/ml—2002《消毒技术规范》
⑷、取杀菌试验用无菌大试管,先加入0.5ml试验用菌悬液,再加入0.5ml有机干扰物质,混匀,置20±1℃5min,用无菌吸管吸取步骤1中的试验样液4.0ml注入其中,立即开启计时器,并迅速混匀(在手掌上振摇80次)。
-见《消毒技术规范》或吸取试验用菌悬液0.1ml,加入到含5ml样液的试管中,立即开启计时器,并迅速混匀(在手掌上振摇80次)。
-见QB/T2738-2005
⑸、作用2min、5min、10min、20min,即刻用无菌吸管吸取0.5ml移入鉴定合格的4.5ml中和剂溶液中(中和剂的浓度与容量应与鉴定试验结果规定的相同)充分混匀,中和作用10min后,取样液、10倍系列稀释液0.5ml(见GB15979-2002)或分别吸取1.0ml(-见《消毒技术规范》)(见图四),置于2个灭菌平皿,用凉至40~45℃营养琼脂培养基或沙氏琼脂培养基(酵母菌)15ml作倾注,转动平皿,使其充分均匀,琼脂凝固后翻转平板,35℃±2℃培养48h(细菌)或(酵母菌)25℃±2℃培养72h,作活菌菌落计数。
⑹、同时用稀释液代替样液进行平行试验,作为阳性对照管。
⑺、阴性对照组:
分别吸取试验用相关溶液和培养基进行培养,观察有无污染。
⑻、计数菌落时,一般以肉眼观察,必要时用放大镜检查。
以菌落数在15cfu~300cfu的平板为准,每个稀释度3个平板生长菌落数全部合乎上述标准,则以该3个平板的菌落平均值作为结果;若有2个符合合乎上述标准,则以该合格的2个平板菌落的平均值作为结果。
⑼、试验重复3次,求其平均值。
根据各组活菌浓度(cfu/ml),计算杀菌率,见计算公式1。
或根据各组活菌浓度换算为对数值(N),计算杀灭对数值,见计算公式2。
3.2载体法杀菌试验操作程序
⑴、试验样品用无菌标准硬水(过滤除菌)稀释至规定浓度,制成(稀释液)试验样液。
⑵、吸取样液5.0ml放入灭菌平皿,另吸取PBS5.0ml注入平皿中,作为阳性对照皿。
每皿用无菌镊子夹住菌片一角放入试样皿和阳性对照皿。
⑶、作用至设定时间后,即刻用无菌镊子夹住菌片一角,投入含5.0ml中和剂的试管中(中和剂的浓度与容量应与鉴定试验结果规定的相同)充分混匀计时。
(见图三)
⑷、中和10min后,取样液或10倍系列稀释液1.0ml((见图四),置于两个灭菌平皿,接种凉至40~45℃营养琼脂培养基或沙氏琼脂培养基(酵母菌)15ml,转动平皿10-20下,使其充分均匀,凝固后,于35℃±2℃培养48h(细菌)或72h(酵母菌),作活菌菌落计数。
⑸、试验重复3次,求其平均值。
⑹、阴性对照组:
分别吸取试验用相关溶液和培养基进行培养,观察有无污染。
A、PBC液(0.03mol/L磷酸盐缓冲液)、
B、无菌标准硬水1ml置于灭菌平皿内、
C、空白平皿,倾注营养琼脂培养基(细菌)或沙氏琼脂培养基(酵母菌)15ml培养。
⑺、计数菌落时,一般以肉眼观察,必要时用放大镜检查。
以菌落数在15cfu~300cfu的平板为准,每个稀释度3个平板生长菌落数全部合乎上述标准,则以该3个平板的菌落平均值作为结果;若有2个符合合乎上述标准,则以该合格的2个平板菌落的平均值作为结果。
4、计算公式
1、杀菌率X1=(A-B)/A×100%式中:
X1—杀菌率(%);
A--对照样品平均菌落数;
B--被试样品平均菌落数。
2、杀灭对数值(KL)=对照组平均活菌浓度的对数值(No)-试验组活菌浓度的对数值(Nx)备注:
计算杀灭对数值时,取小数点后两位值,可以进行数字修约。
如果消毒试验组消毒处理后平
均生产菌落数,小于等于1时,即大于等于试验前对照组平均活菌浓度的对数值。
5、评价标准
杀菌率≥90%,产品有杀菌作用。
悬液定量杀灭试验中,各次的杀灭对数值≥5.00,可判定为消毒合格。
6、操作要点:
(消毒技术规范2002版)
1、对接触消毒剂(杀菌剂)的样本,在达到规定作用时间,即刻取样移入鉴定合格的中和剂溶液中(中和剂的浓度与容量应与鉴定试验结果规定的相同);
2、即刻混匀,并按规定时间吸取样液进行随后的培养检测;
3、在将样本接种培养基以前的操作,应按规定时间内进行,以免微生物与中和剂或中和产物
接触过久。
审核:
编制:
中和剂悬液定量鉴定试验操作程序
引用标准:
QB/T2738-2005日化产品抗菌抑菌效果的评价方法(试验菌悬液在1×104—9×104cfu/ml)
4—9×104
GB15979-2002一次性使用卫生用品卫生标准(试验菌悬液在1×10
7—5×107
cfu/ml)
2002消毒技术规范(试验菌悬液在1×10
一、定义和术语
cfu/ml)
中和剂—在微生物杀灭试验中,试验微生物与杀菌剂作用达到规定时间的终点时,用以中和残留的杀
菌剂,使其不在持续抑制和杀灭微生物的试剂。
中和产物—中和剂加杀菌剂(样品)=9:
1,作用10min配置而成。
二、中和剂鉴定试验原理
中和剂鉴定试验原理
试验分组
第1组
杀菌剂+菌液
→培养
第2组
(杀菌剂+菌液)+中和剂
第3组
中和剂+菌液
→培养
第4组
(杀菌剂+中和剂)+菌液
第5组
阳性菌数对照
第6组
阴性对照。
→培养
→培养
观察杀菌剂对
观察残留杀菌
观察中和剂是
观察中和产
阳性对照组。
阴性对照组。
试验菌有无杀
剂被中和后,
否抑菌。
物,或未被完
灭或抑制能力
受到杀菌剂作
全中和的残留
试验目的
用后的试验菌
杀菌剂对试验
是否能恢复生
菌的生长繁殖
长。
是否有影响。
三、中和剂鉴定试验中易出现的问题及解决方法
出现的问题解决方法
1①、②组无菌生长或②组平板上少于5个菌
落,其它组正常。
降低消毒剂浓度或缩短作用时间。
2①②菌落数较多且数量基本相同,其它组正
常。
提高消毒剂浓度或延长作用时间。
3③组中和剂菌落数明显少于PBS组菌数降低中和剂浓度或改变中和剂成分。
4④组(中和产物)菌落数明显少于PBS组菌数,其它组正常。
提高中和剂浓度或改变中和剂成分。
5多次更换中和剂均不能得到满意结果。
选用载体法进行中和剂鉴定,杀菌试验同时用
载体法进行。
四、1鉴定试验操作程序
中和剂悬液定量鉴定试验操作程序-《消毒技术规范》
试验分组第1组第2组第3组第4组第5组第6组
取试验样品4.0ml加入各
对应组
取4.5ml中和
剂加入对应组
取4.9ml中
和产物b加入对应组
取4.5mlPBS—
(稀释液)加入对应组
20℃±1℃恒温
5min
菌悬液
1.0ml
菌悬液
1.0ml
0.1ml菌悬液
+0.4ml硬水混匀
0.1ml菌悬
液
0.1ml菌悬液—
+0.4ml硬水混匀
振敲80次,
混匀
作用至试验预定时间,
取0.5ml加入下列对应组
作用10min,—
取0.5ml加入下列各对应组
PBS
4.5ml
中和剂
4.5ml
中和剂
4.5ml
中和产物
4.5ml
PBS—
4.5ml
振敲80次、混
匀
/作用10min/—
取适宜稀释度悬
液1.0ml接种平板(2个/样本)
活菌培养计
数
活菌培养计
数
用中和剂10
倍系列稀释
用中和产物
10倍系列稀释
用稀释液10
倍系列稀释
PBS+中和剂
各1.0ml接种平板
第1组不长
第2组菌数
第3、4、5组菌数相似,
第6组无菌
中和剂鉴定评
价规定
菌或明显少
于第2组
大于5且明
显少于第3、4、5组
误差率≤15%生长
三组间平均菌数=(第3+4+5组菌数)÷3;误差率%=(三组平均菌数-各组菌落平均数)
中和剂鉴定合
格标准中对1、2组菌数要求。
0>5
X(1-10)>(X+5)Y(>10)>1.5Y
的绝对值之和/3×三组间平均菌数×100
符合上述评价的中和剂表明可消除试验样品对指示菌的作用,中和剂与试验样品的中
结论
和产物对指示菌无毒害,鉴定为该试验样品的中和剂。
cfu/ml)
a菌悬液浓度及制备:
消毒技术规范用PBS(试验菌悬液在1×107—5×107
备注
b中和产物的配置:
先将试验样液1.0ml与中和剂溶液9ml混合,作用10min后制成
四、2鉴定试验操作程序
中和剂鉴定试验操作程序-载体法
试验分组
用无菌镊子取菌片加入下列
第1组
吸取试验样品5.0ml
第2组
吸取试验样品
5.0ml于无菌平
第3组
吸取中和剂
5.0ml于无菌
第4组
吸取中和产物5.0ml于
第5组
吸取PBS5.0ml于无菌
第6组
—
对应组
于无菌平
皿内
平皿内
无菌平皿内
平皿内
皿内
作用至预定时间,立即用无菌
镊子取出菌片移入对应组
混匀作用10min,立即用无菌镊子取出菌片移入对应组
试管振打80次PBS
5.0ml
中和剂
5.0ml
中和剂
5.0ml
中和产物
5.0ml
稀释液—
5.0ml
作用10min作用10min/
取原液或稀释
用稀释液
用稀释液10倍
用中和剂10
用中和产物
用稀释液10
稀释液+
液1.0ml接种
平板(2个/样
10倍系列
稀释
系列稀释
倍系列稀释
10倍系列稀
释
倍系列稀释
中和剂
各1.0ml
本)
接种平板
操作要点即刻混匀,并按规定时间接种培养基
中和剂鉴定评价
第1组不
第2组有且较第
第3、4、5组菌数相似,且其误差率≤15%
第6组无
评价规定
长菌或明
显少于第2
组
1组为多,较第
3、4、5组为少的菌数生长,并
三组间平均菌数=(第3+4+5组菌数)÷3;
菌生长
中和剂鉴定合格标准中对1、2组菌数要求。
符合下表要求。
0>5
X(1-10)>(X+5)Y(>10)>1.5Y
误差率%=(三组平均菌数-各组菌落平均数)的绝对值之和/3×三组间平均菌数×100
符合上述评价的中和剂表明可消除试验样品对指示菌的作用,中和剂与试验样品的中
结论
和产物对指示菌无毒害,鉴定为该试验样品的中和剂。
a菌悬液浓度及制备:
用PBS将指示菌制成1×104~9×104cfu/ml悬液。
(-GB15979)
cfu/ml)
备注消毒技术规范用PBS(试验菌悬液在1×107—5×107
b中和产物的配置:
先将试验样液1.0ml与中和剂溶液9ml混合,作用10min后制成
四、3鉴定试验操作程序
中和剂悬液定量鉴定试验操作程序-《GB/T15979》
试验分组
第1组第
2组
第3组
第4组
第5组
第6组
取0.10ml菌悬
取试验样品5.0ml
加入各
取5.0ml中和
取5.0ml中
取5.0mlPBS
—
液,分别加入各
组
对应组
剂加入对应
组
和产物b加
入对应组
(稀释液)加
入对应组
振敲80次,
混匀
作用至试验预定时间,
取0.5ml加入下列对应组
作用10min,—
取0.5ml加入下列各对应组
PBS
4.5ml
中和剂
4.5ml
中和剂
4.5ml
中和产物
4.5ml
PBS—
4.5ml
振敲80次、混
匀
/作用10min/—
取适宜稀释度悬
液1.0ml接种平板(2个/样本)
活菌培养计
数
活菌培养计
数
用中和剂10
倍系列稀释
用中和产物
10倍系列稀释
用稀释液10
倍系列稀释
PBS+中和剂
各1.0ml接种平板
第1组不长
第2组菌数
第3、4、5组菌数相似,
第6组无菌
中和剂鉴定评
价规定
菌或明显少
于第2组
大于5且明
显少于第3、4、5组
误差率≤15%生长
三组间平均菌数=(第3+4+5组菌数)÷3;误差率%=(三组平均菌数-各组菌落平均数)
中和剂鉴定合
格标准中对1、2组菌数要求。
0>5
X(1-10)>(X+5)Y(>10)>1.5Y
的绝对值之和/3×三组间平均菌数×100
符合上述评价的中和剂表明可消除试验样品对指示菌的作用,中和剂与试验样品的中
结论
和产物对指示菌无毒害,鉴定为该试验样品的中和剂。
a菌悬液浓度及制备:
用PBS将指示菌制成1×104~9×104cfu/ml悬液。
(-GB15979)
备注
b中和产物的配置:
先将试验样液1.0ml与中和剂溶液9ml混合,作用10min后制成
七、消毒剂的常用中和剂的配置
1、用于氯型杀菌剂(有效氯0.1-0.5%):
硫代硫酸钠
2、用于非氧化型杀菌剂:
a:
磷酸二氢钾1.36g、磷酸氢二钠2.83g、卵磷脂10.0g、甘氨酸10.0g、吐温-8030.0g、蒸馏水
1000ml
b:
磷酸二氢钾1.36g、磷酸氢二钠2.83g、卵磷脂3.0g、吐温-8020.0g、蒸馏水1000ml3、用于氧型杀菌剂:
吐温-8020.0g、硫代硫酸钠10.0g、PBS1000m、l
4、阳离子胍类消毒剂:
卵磷脂3.0%、吐温-803.0%的PBS溶液
5、季胺盐类消毒剂(0.1-0.5%):
吐温-80+卵磷脂(1.0-2.0%)
6、酚类(DP-300)消毒剂(3.0-5.0%):
吐温-80(0.5-3.0%)
7、复方消毒剂:
吐温-80+卵磷脂+硫代硫酸钠
8、过氧乙酸(0.1-0.5%):
硫代硫酸钠(0.1-1.0%))
9、过氧化氢(1.0-3.0%):
硫代硫酸钠(0.5-1.0%))八、附悬液定量杀菌试验示意图、载体法试验杀菌率示意图
审核:
编制:
质量管理中心谷爱军
图一、
细菌悬液+有机干扰物质=1:
1
置20±1℃5min后
1ml1ml
图二、阳性对照管
注入样液4ml注入稀释液4.0ml
样液稀释液
A
作用至各预定时间后
吸取0.5ml混合液加入4.5ml经灭菌的中和剂中,充分混匀作用10min,培养。
4.5ml4.5ml
图三
作用10min
0.5ml0.5ml
中和剂
0.5ml0.5ml
图四
1ml1ml
4.5ml4.5ml中和剂4.5ml4.5ml
AAAA
-2
-0
-1
1ml1ml1ml1ml
-0
-2
-1
101010
101010
悬液定量杀菌试验示意图
《消毒技术规范》
图一、
细菌悬液
取10ul滴在10mm×10mm无菌滤纸上,干燥、制成菌片
44
(回收菌数为1×10~9×10
(回收菌数为5×105—5×106
cfu/片-GB/T15979)
cfu/片—消毒技术规范)
吸取样品稀释液
5ml
吸取PBS5ml作为阳性对照管
放入一菌片
放入一菌片
作用至设定时间后,即刻用无菌镊子夹住菌片,投入各含5.0ml中和剂的对应管中。