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基因分离步骤
篇一:
试述基因分离的主要方法和原理
2试述基因分离的主要方法和原理。
碱裂解法提取质粒DNA,在碱性条件下线状DNA发生变性,质粒DNA维持环状;在高盐条件下复性处理,变性的染色体DNA会形成沉淀,从而将质粒DNA与染色体DNA分开。
3试设计一个方案,将拟南芥生长素反应因子9转入油菜中进行异源表达(拟南芥基因组测序已完成)。
1设计引物,因为拟南芥基因组测序已完成,所以可以在基因序列库中搜索生长素反应因子9序列,得到序列信息,根据序列设计PCR引物,根据载体的MCS在上下游引物5’-端加上两种不同限制性核酸内切酶的识别和切割序列,要求这两种酶不在基因内部产生切割;2提取拟南芥mRNA,3PCR扩增,利用上述引物进行RT-PCR,扩增得所需基因序列DNA;4PCR产品和检验,扩增得基因DNA与测序载体连接,转化大肠杆菌;利用载体上的抗性基因筛选重组子;扩大培养后提取质粒进行测序,以确定基因是否突变;5准备上游质粒、载体进行双酶切若没突变,对质粒进行和Ti载体进行双酶切,然后进行定向连接,转化大肠杆菌,利用Ti质粒载体的抗性基因和分子标记筛选重组子;提取质粒,利用冻融法或电击法转化农杆菌中;利用分子标记筛选得到重组农杆菌;利用叶盘转化法,将目的基因转入油菜中,经抗性筛选后再生植株;6表达,利用抗性基因筛选重组植株,用PCR法鉴定重组是否成功,用Southern印迹法筛选单基因植株;杂交筛选纯合子植株;用Northern印迹法鉴定目的基因mRNA是否转录,用Western印迹法鉴定目的蛋白;
观察转基因植物的表型。
4现分离得到一个青霉菌的单基因的抗高温突变体,试设计一个方案克隆和分离该基因(青霉菌基因组测序尚未进行)。
设计题
1)设计一个实验程序将拟南芥光敏色素基因A转入番茄表达:
答:
因为拟南芥基因组测序已完成,所以可以在基因序列库如GenBank中搜索光敏色素序列,得到序列信息;
根据序列设计PCR引物,根据载体(植物中用的如PBI)的MCS在上下游引物5’-端加上两种不同限制性核酸内切酶的识别和切割序列,要求这两种酶不在基因内部产生切割;提取拟南芥mRNA,利用上述引物进行RT-PCR,扩增得所需基因序列DNA;
扩增得基因DNA与测序载体连接,转化大肠杆菌;
利用载体上的抗性基因筛选重组子;
扩大培养后提取质粒进行测序,以确定基因是否突变;
若没突变,对质粒和Ti载体分别进行双酶切,然后进行定向连接,转化大肠杆菌,利用Ti质粒载体的抗性基因和分子标记筛选重组子;
提取质粒,利用冻融法或电击法转化农杆菌中;
利用分子标记筛选得到重组农杆菌;
利用叶盘转化法,将目的基因转入番茄中,经抗性筛选后再生植株;
利用抗性基因筛选重组植株,用PCR法鉴定重组是否成功,用Southern印迹法筛选单基因植株;
杂交筛选纯合子植株;
用Northern印迹法鉴定目的基因mRNA是否转录,用Western印迹法鉴定目的蛋白;观察转基因植物的表型。
篇二:
基因组DNA提取步骤
基因组DNA提取步骤
1.从无水乙醇中取出少许组织(约50mg)加入干净灭菌的EP管中,
剪碎;
2.加入400ul1%的SDS,8ul(20mg/ml)的蛋白酶K,充分浸润,
入55℃摇床(100转/分),期间振荡助溶至澄清(5-6h);
3.取出消化液,加入6mol/L的NaCl300ul,氯仿200ul,轻柔正反
颠倒,使其充分乳化,4℃13000转/分离心30min;
4.取出上清(约400ul),加入等体积氯仿抽提一次,轻柔颠倒后,
4℃13000转/分离心10min;
5.上清加入5μlRNaseA(10μg/μl),37℃10分钟,除去RNA(RNA对DNA的操作、分析一
般无影响,可省略该步骤)。
6.取上清加入等体积异丙醇,轻柔混匀后-20℃沉淀10min;
7.4℃13000转/分离心15min,弃上清;
8.用75%乙醇洗涤1-2次(1000ul,11000转/分离心2min),弃上
清;
9.冰冻无水乙醇洗涤1-2次(1000ul,11000转/分离心4min)弃上
清,自然晾干或烘干,DDW溶解,30-50ul。
基因组DNA的提取通常用于构建基因组文库、Southern杂交(包括RFLP)及PCR分离基因等。
利用基因组DNA较长的特性,可以将其与细胞器或质粒等小分子DNA分离。
加入一定量的异丙醇或乙醇,
基因组的大分子DNA即沉淀形成纤维状絮团飘浮其中,可用玻棒将其取出,而小分子DNA则只形成颗粒状沉淀附于壁上及底部,从而达到提取的目的。
在提取过程中,染色体会发生机械断裂,产生大小不同的片段,因此分离基因组DNA时应尽量在温和的条件下操作,如尽量减少酚/氯仿抽提、混匀过程要轻缓,以保证得到较长的DNA。
一般来说,构建基因组文库,初始DNA长度必须在100kb以上,否则酶切后两边都带合适末端的有效片段很少。
而进行RFLP和PCR分析,DNA长度可短至50kb,在该长度以上,可保证酶切后产生RFLP片段(20kb以下),并可保证包含PCR所扩增的片段(一般2kb以下)。
不同生物(植物、动物、微生物)的基因组DNA的提取方法有所不同;不同种类或同一种类的不同组织因其细胞结构及所含的成分不同,分离方法也有差异。
在提取某种特殊组织的DNA时必须参照文献和经验建立相应的提取方法,以获得可用的DNA大分子。
尤其是组织中的多糖和酶类物质对随后的酶切、PCR反应等有较强的抑制作用,因此用富含这类物质的材料提取基因组DNA时,应考虑除去多糖和酚类物质。
本实验以水稻幼苗(禾本科)、李(苹果)叶子、动物肌肉组织和大肠杆菌培养物为材料,学习基因组DNA提取的一般方法。
从植物组织提取基因组DNA
一、材料
水稻幼苗或其它禾本科植物,李(苹果)幼嫩叶子。
二、设备
移液器,冷冻高速离心机,台式高速离心机,水浴锅,陶瓷研钵,50ml离心管(有盖)及5ml和
1.5ml离心管,弯成钩状的小玻棒。
三、试剂
1、提取缓冲液Ⅰ:
100mmol/LTris·Cl,pH8.0,20mmol/LEDTA,500mmol/LNaCl,
1.5%SDS。
2、提取缓冲液Ⅱ:
18.6g葡萄糖,6.9g二乙基二硫代碳酸钠,6.0gPVP,240ul巯基乙醇,加水至300ml。
3、80:
4:
16/氯仿:
戊醇:
乙醇
4、RnaseA母液:
配方见第一章。
5、其它试剂:
液氮、异丙醇、TE缓冲液,无水乙醇、70%乙醇、3mol/LNaAc。
四、操作步骤:
(一)水稻幼苗或其它禾木科植物基因组DNA提取
1.在50ml离心管中加入20ml提取缓冲液Ⅰ,60℃水浴预热。
2.水稻幼苗或叶子5-10g,剪碎,在研钵中加液氮磨成粉状后立即倒入预热的离心管中,剧烈摇动混匀,60℃水浴保温30-60分钟(时间长,DNA产量高),不时摇动。
3.加入20ml氯仿/戊醇/乙醇溶液,颠倒混匀(需带手套,防止损伤皮肤),室温下静置5-10分钟,使水相和有机相分层(必要时可重新混匀)。
4.室温下5000rpm离心5分钟。
5.仔细移取上清液至另一50ml离心管,加入1倍体积异丙醇,混匀,室温下放置片刻即出现絮状DNA沉淀。
6.在1.5mleppendorf中加入1mlTE。
用钩状玻璃棒捞出DNA絮团,在干净吸水纸上吸干,转
入含TE的离心管中,DNA很快溶解于TE。
7.如DNA不形成絮状沉淀,则可用5000rpm离心5分钟,再将沉淀移入TE管中。
这样收集的沉淀,往往难溶解于TE,可在60℃水浴放置15分钟以上,以帮助溶解。
8.将DNA溶液3000rpm离心5分钟,上清液倒入干净的5ml离心管。
9.加入5μlRNaseA(10μg/μl),37℃10分钟,除去RNA(RNA对DNA的操作、分析一般无影响,可省略该步骤)。
10.加入1/10体积的3mol/LNaAc及2×体积的冰乙醇,混匀,-20℃放置20分钟左右,DNA形成絮状沉淀。
11.用玻棒捞出DNA沉淀,70%乙醇漂洗,再在干净吸水纸上吸干。
12.将DNA重溶解于1mlTE,-20贮存。
13.取2μlDNA样品在0.7%Agarose胶上电泳,检测DNA的分子大小。
同时取15μl稀释20倍,测定OD260/OD280,检测DNA含量及质量。
[注意]5g样品可保证获得500μgDNA,足供RFLP、PCR等分析之用。
(二).从李(苹果)叶子提取基因组DNA
1.取3-5克嫩叶,液氮磨成粉状。
2.加入提取缓冲液Ⅱ10ml,再研磨至溶浆状。
10000rpm,10min。
3.去上清液,沉淀加提取液Ⅰ20ml,混匀。
65℃,30-60min,常摇动。
4.同本节
(一)中步骤3-13操作。
从动物组织提取基因组DNA
一、材料
哺乳动物新鲜组织。
二、设备
移液管、高速冷冻离心机、台式离心机、水浴锅。
三、试剂
1、分离缓冲液:
10mmol/LTris·ClpH7.4,10mmol/LNaCl,25mmol/LEDTA。
2、其它试剂:
10%SDS,蛋白酶K(20mg/ml或粉剂),乙醚,酚:
氯仿:
异戊醇(25:
24:
1),无水乙醇及70%乙醇,5mol/LNaCl,3mol/LNaAc,TE。
四、操作步骤:
1.切取组织5g左右,剔除结缔组织,吸水纸吸干血液,剪碎放入研钵(越细越好)。
2.倒入液氮,磨成粉末,加10ml分离缓冲液。
3.加1ml10%SDS,混匀,此时样品变得很粘稠。
4.加50ul或1mg蛋白酶K,37℃保温1-2小时,直到组织完全解体。
5.加1ml5mol/LNaCl,混匀,5000rpm离心数秒钟。
6.取上清液于新离心管,用等体积酚:
氯仿:
异戊醇(25:
24:
1)抽提。
待分层后,3000rpm离心5分钟。
7.取上层水相至干净离心管,加2倍体积乙醚抽提(在通风情况下操作)。
8.移去上层乙醚,保留下层水相。
9.加1/10体积3mol/LNaAc,及2倍体积无水乙醇颠倒混合沉淀DNA。
室温下静止10-20分钟,DNA沉淀形成白色絮状物。
10.用玻棒钩出DNA沉淀,70%乙醇中漂洗后,在吸水纸上吸干,溶解于1mlTE中,-20℃保存。
11.如果DNA溶液中有不溶解颗粒,可在5000rpm短暂离心,取上清;如要除去其中的RNA,可加5μlRNaseA(10μg/μl),37℃保温30分钟,用酚抽提后,按步骤9-10重沉淀DNA。
细菌基因组DNA的制备
一、材料
细菌培养物。
二、设备
移液管,高速冷冻离心机,台式离心机,水浴锅。
篇三:
《基因的分离定律》教学案
《基因的分离定律》教学案
生物备课组主备人杜怀斌
【教学目标】
1.知识目标
①理解应用孟德尔对相对性状的遗传试验及其解释和验证。
②理解并应用基因的分离定律及在实践上的应用。
③知道基因型、表现型及与环境的关系。
2.能力目标
①通过分离定律到实践的应用,从遗传现象上升为对分离定律的认识,训练学生演绎、归纳的思维能力。
②通过遗传习题的训练,使学生掌握应用分离定律解答遗传问题的技能技巧。
③了解一般的科学研究方法:
试验结果——假说——试验验证——理论。
④理解基因型和表现型的关系,掌握在遗传学中运用符号说明遗传规律的形式方法。
3.情感目标
①孟德尔从小喜欢自然科学,进行了整整8年的研究试验,通过科学家的事迹,对学生进行热爱科学、献身科学的教育。
②通过分离定律在实践中的应用,对学生进行科学价值观的教育。
【教学重点、难点、疑点及解决办法】
1.教学重点:
基因分离定律的实质。
2.教学难点:
对分离现象的解释。
3.教学疑点:
相对性状,杂交方法
【教学方法】模型、讲授、引导、自研
【教学时数】3学时
第一课时《基因的分离定律》教学案
【教学过程】
学生自主阅读课本(第19-23)(5分钟)
师生互动,合作探究(20分钟)
教师活动:
在上节课的学习中,我们知道了基因是控制生物性状的遗传物质的功能单位
和结构单位。
那么基因在传种接代中有什么样的传递规律,得先了解遗传学奠基人孟德尔。
①介绍孟德尔简历,豌豆杂交试验,揭示遗传学的经典定律——基因的分离定律和基因的自由组合定律。
②孟德尔的研究方法:
杂交实验法。
此方法是研究遗传规律的基本方法。
什么是杂交试验法?
显示《人工异花传粉示意图》,对着图讲解父本、母本,如何去雄,如何传粉、受精。
③孟德尔选用的实验材料——豌豆。
自花传粉,也是闭花受粉。
试验结果可靠又易于分
析,这是他研究的特点,也是他研究成功的原因之一。
学生活动用笔勾画
一孟德尔的一对相对性状的遗传试验
讲述:
由高茎豌豆和矮茎豌豆引出相对性状的概念。
相对性状是指同种生物同一性状
的不同表现类型。
此概念有三个要点:
同种生物——豌豆
同一性状——茎的高度
不同表现类型——高茎1.5-2.0m,矮茎0.3m左右。
教师活动:
豌豆种子的圆滑和皱缩是不是相对性状?
为什么?
学生活动:
是。
具备相对性状概念包含的三个要点:
同一种生物——豌豆;同一性状——种子的形状;不同类型——圆滑和皱缩。
师生交流:
交待在遗传图解中常用符号:
P——亲本♀——母本♂——父本×——杂交×——目交(自花传粉,同种
类型相交)
——杂种子一代
——杂种第二代
(1)试验过程
教师活动:
出示一对相对性状的遗传试验图,对着图讲述试验过程,注意如下几个概念:
显性性状和隐性性状:
在杂交实验中,把杂种子一代中显现出来那个亲本的性状,叫做显性性状,如高茎;把未显现出来的那个亲本性状叫做隐性性状,如矮茎。
性状分离:
在杂种后代中,同时显现出显性性状和隐性性状(如高茎和矮茎)的现象叫做性状分离。
研究特点:
①试验材料——选用自花传粉的豌豆
②分析研究方法——从一对相对性状入手
③运用数学方法——统计学方法
(2)试验结果
①无论正交反交,
②自交,只表现显性性状;出现性状分离,分离比接近3:
1(高茎:
矮茎)。
二.对分离现象的解释。
教师活动:
什么是基因?
基因位于何处?
学生活动
:
略。
讲述:
上一节课我们已经学过了,基因控制性状。
那么控制显性性状的基因是显性基因,一般用大写英文字母表示,如豌豆高茎基因用D表示;控制隐性性状的基因是隐性基因,一般用小写英文字母表示,豌豆矮茎基因用d表示。
在体细胞中。
控制性状的基因以对存在,纯种高茎豌豆用DD表示,矮茎豌豆用dd表示。
在生殖细胞中,控制性状的基因成单存在,因为核基因位于染色体上,减数分裂时,同源染色体分离,导致生殖细胞染色体数目减半。
因此,纯种高茎豌豆的配子只含有一个显性基因D,纯种矮茎豌豆的配子只含有一个隐性基因d。
受精时,雌雄配子结合,合子中的基因又恢复成对,即体细胞为Dd。
(Dd)只表现为高茎。
显性作用:
由于基因D对基因d具显性作用,故
自交产生配子时(出示有染色体遗传的图像),由于D和d位于一对同源染色体上,故D和d独立存在,它们要随着同源染色体的分离而分开,分别进入不同的配子。
这样,产生的雄配子和雌配子就各有两种,一种含有基因D,一种含有基因d,且两种雄
;两种雌配子D:
d。
受精时,雌雄配子随机结合,便出现3种基配子D:
d
因组合:
DD:
Dd:
dd=1:
2:
1,性状表现为:
高茎:
矮茎接近3:
1。
总结、扩展(4分钟)
学生甲孟德尔的研究方法是杂交试验法,用高茎豌豆和矮茎豌豆杂交,杂种子一代全是高茎豌豆。
经自花传粉后,杂种子二代发生性状分离,高茎豌豆和矮茎豌豆之比为3:
1。
孟德尔解释的关键是杂合子(
入两个配子中。
其他学生孟德尔也做了豌豆子叶黄色和绿色等其余六对杂交试验,
量比都接近3:
1,请同学们按板书要求试着做这六对杂交试验遗传图解。
表现型的数代)中,D和d随同源染色体分开而分离,分别进
课堂练习(5分钟)
1.杂合高茎豌豆自交产生的后代中,杂合高茎植株约占后代总数的()
A.100%B.3/4C.1/2D.1/4
2.子叶黄色豌豆(YY)与子叶绿色豌豆(yy)杂交,
后,表现型全是黄色,让其自交发生性状分离,黄色子叶与绿色子叶之比为3:
1。
请用遗传图解说明试验的全过程和试验结果。
自我练习资料P271-4(3分钟)
作业①复习教材,掌握概念、熟悉分离定律的实验过程、前提、特定的数字②资料P28课时作业1-8
新课导学(3分钟)基因的分离定律的解释,验证
教学后记学生感觉难,需要多投入、利用自习课,多接触学生,给学生提问的机会和时间,及时解决学生的疑难,避免不消化。
篇四:
DNA分离方法
一、分离与纯化的方法
双链DNA因固有的结构特点,是一种惰性很强的化学分子,可用于重现犯罪现场和进行古生物学分析。
但由于是很长的线性分子(如人的染色体DNA平均长度为100~150Mb)而且缺乏横向的稳定性,因此很容易断裂。
在溶液中,由于碱基堆砌力的相互作用与磷酸基团的静电排斥作用,DNA分子非常粘稠,沉淀后很难溶解,而且也增加了它对剪切力的敏感性。
即便是最轻柔的方式,高分子量的DNA也很容易因剪切力发生横向的断裂。
常规方法分离基因组DNA时,大于150kb的DNA分子很容易发生断裂。
(一)酚抽提法
本法最初于1976年由Stafford及其同事提出,通过改进,以含EDTA、SDS及无DNA酶的RNA酶的裂解缓冲液裂解细胞,经蛋白酶K处理后,用pH8.0的Tris饱和酚抽提DNA,重复抽提至一定纯度后,根据不同需要行透析或沉淀处理,获得所需的DNA样品。
其中,EDTA为二价金属离子螯合剂,可以抑制DNA酶的活性,同时降低细胞膜的稳定性;SDS为生物阴离子去垢剂,主要引起细胞膜的降解并能乳化脂质和蛋白质,与这些脂质和蛋白质的结合可以使它们沉淀,其非极性端与膜磷脂结合,极性端使蛋白质变性、解聚,所以SDS同时还有降解DNA酶的作用;无DNA酶的RNA酶可以有效水解RNA,而避免DNA的消化;蛋白酶K则有水解蛋白质的作用,可以消化DNA酶、DNA上的蛋白质,也有裂解细胞的作用;酚可以使蛋白质变性沉淀,也抑制DNA酶的活性;pH8.0的Tris溶液能保证抽提后DNA进入水相,而避免滞留于蛋白质层。
多次抽提可提高DNA的纯度。
一般在第三次抽提后,移出含DNA的水相,作透析或沉淀处理。
透析处理能减少对DNA的剪切效应,因此可以得到200kb的高分子量DNA。
沉淀处理常以醋酸铵为盐类,用2倍体积的无水乙醇沉淀,并用70%的乙醇洗涤,最后得到的DNA大小在100kb~150kb。
运用该法可以从单层或悬浮培养细胞、新鲜组织及血液标本中制备少于10mg至大到数百mg的DNA样品。
由于分离纯化的每一步都有剪切力的影响,最后得到的DNA样品中分子量超过100kb~150kb的很少,但这种大小的DNA足以作为PCR反应的模板和进行Southernblotting分析以及构建以λ噬菌体为载体的基因组DNA文库。
从5×107个培养的非整倍体哺乳动物细胞(如HeLa细胞)大约可以制备分子量在100kb~150kb的DNA200mg,自20ml血液可得250mg。
(二)甲酰胺解聚法
为构建高容量载体的DNA文库和进行分子量巨大的DNA片段的脉冲场凝胶电泳(pulsedfieldgelelectrophoresis,PFGE)分析,需要制备分子量大于200kb的DNA。
该法的细胞裂解与蛋白质水解同酚抽提法相似,但不进行酚的抽提,而是以高浓度的甲酰胺裂解DNA与蛋白质的复合物(即染色质),然后通过火棉胶袋的充分透析以除去蛋白酶和有机溶剂。
甲酰胺是一种离子化溶剂,既可以裂解蛋白质与DNA的复合物,还可使释放的蛋白质变性。
但甲酰胺对蛋白酶K的活性无显著影响。
本法因操作步骤少,尤其省却了酚的多次提取,所得DNA分子量一般可以大于200kb。
(三)玻棒缠绕法
缠绕法适于同时从不同的细胞或组织标本中提取DNA。
与前两个方案不同,它有两个关键步骤:
一是基因组DNA沉淀于细胞裂解液与乙醇液的交界面;二是要将沉淀的DNA缠绕于带钩玻棒上。
通过带钩玻棒将高分子量DNA沉淀从乙醇溶液中转移到pH8.0的TE溶液重溶。
小的DNA片段与RNA不能有效形成凝胶状线卷。
该方案以盐酸胍裂解细胞,制备的DNA分子量只有大约80kb,不能有效构建基因组DNA文库,但用于Southern杂交和PCR反应可以获得很好的结果。
(四)DNA样品的进一步纯化
纯化的方法包括透析、层析、电泳及选择性沉淀等。
其中电泳法简单、快速、易于操作、分辨率高、灵敏度好、易于观察及便于回收,在DNA的进一步纯化中占有重要的地位。
由于聚丙烯酰胺凝胶(polyacrylamidegel)与琼脂糖凝胶(agarosegel)可以制成各种形状、大小和孔径不一的支持体,并可以在多种装置中进行电泳,聚丙烯酰胺凝胶电泳(PAGE)与琼脂糖凝胶电泳(AGE)广泛用于核酸的分离、纯化与鉴定。
二、DNA片段的回收
通过凝胶电泳,我们可以对各种大小与来源的DNA片段进行分离、纯化与鉴定。
目前,琼脂糖凝胶与聚丙烯酰胺凝胶是最常使用的电泳支持体,电泳分离的DNA处于凝胶的三维网状结构中。
下面介绍从琼脂糖凝胶与聚丙烯酰胺凝胶中回收DNA片段的主要方法。
(一)总的原则与要求
无论采用何种方法从何种支持介质中回收DNA片段,都要注意两个原则。
一是要提高DNA片段的回收率;二是要去除回收DNA样品中的污染。
回收的DNA样品往往因支持介质的不纯、回收溶液的使用及不慎操作等因素而引入污染,这些污染可能严重影响后继的实验。
根据实验要求,应对回收的DNA样品进行纯化,以除去污染物。
常用的纯化方法包括有机溶剂抽提法与商品化
的柱层析法。
其中柱层析法采用阴离子交换层析的原理,主要是利用带负电荷的DNA在低离子强度的缓冲液中与阴离子交换树脂结合,洗去杂质,然后再用高离子强度的缓冲液洗脱下来。
上述两种纯化方法以及其它回收DNA片段的方法,最终均要在有盐的情况下进行乙醇沉淀,并以70%的乙醇除去有机分子与共沉淀的盐。
(二)从琼脂糖凝胶中回收DNA片段
从琼脂糖凝胶中回收DNA片段的方法主要包括二乙基氨基乙基(diethylaminoethyl,DEAE)纤维素膜插片电泳法、电泳洗脱法、冷冻挤压法及低熔点琼脂糖凝胶挖块回收法等。
1.DEAE纤维素膜插片电泳法DEAE纤维素是一种阴离子交换纤维素,可以结合带负电荷的DNA分子。
将DEAE纤维素膜插入到经琼脂糖凝胶电泳分离的核酸条带前,继续电泳直至所需回收的DNA片段刚好转移到膜上。
取出DEAE纤维素膜,低盐条件下洗去杂质,高盐条件下洗出DNA分子。
该法操作比较简单,可同时回收多个DNA片段,对500bp~5kb的DNA片段回收率好,纯度高,能满足大多数实验的要求。
但DNA片段大于5kb时,因结合力增大而回收率下降。
至10kb或为单链DNA时,其与膜的结合变得很牢固而难以回收。
因此,本法不适合于分子量大于10kb的DNA片段的回收,也不能回收单链DNA。
2.电泳洗脱法电泳洗脱法包括两个主要步骤,一是将待回收的DNA片段电泳出凝胶介质,使其进入一个便于回收的小容积溶液中;二是分离纯化出DNA片段。
按