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C色谱柱维护常识

【讨论】高效液相色谱柱的保护

各位同仁,为保证我们的分析效果,延长色谱柱的使用寿命,大家一起来贡献一下自己在色谱柱使用过程中的护柱秘诀吧。

我先来聊聊,算是抛砖引玉了1、最好用预柱。

(但要注意,若有时出峰异常,要先看看是不是它有问题了)2、每次做完分析,都要进行冲洗,分析用流动相中若无酸、碱、盐类物质,建议用90%甲醇冲洗30~60min;若分析用流动相中含以上物质,要先用10%甲醇(或用与分析用流动相同比例,把含酸、碱、盐溶液换成水)冲洗1小时左右,再梯度走到90%甲醇冲洗30~60min(若用多元泵)。

有必要时再循环几次,可以适当缩短时间。

若长时间不用该色谱柱,要冲洗好后,用纯甲醇或乙腈封存。

3、若流动相中用到离子对试剂,更应该好好冲洗,且该色谱柱最好作为专用,不能再做其它物质分析用。

因色谱柱填料性质已与原来所不同,在该柱上所摸索的色谱条件,可能在其它同类柱子上得不到重现。

4、尽量避免反冲,除非该色谱柱厂家明确说明允许。

5、普通C18柱尽量避免在40℃以上的温度下分析。

6、定期测柱效,有下降,可以用10%异丙醇甲醇冲洗色谱柱。

若柱效还没有改善,可以再生,甲醇-二氯甲烷-甲醇。

呵呵,还有的一时想不起来了,各位有经验的战友请发表高见!

1.样品要采用或μm滤膜过滤,流动相采用μm滤膜过滤并脱气。

2.大多数反相色谱柱的pH稳定范围是2-,尽量不超过该色谱柱的pH范围3.避免流动相组成及极性的剧烈变化。

4.避免纯水冲洗反相色谱柱。

5.每次测试完毕,要用20倍柱体积的流动相冲洗色谱柱(分析色谱柱250×4.6mm柱体积)。

如果使用极性或离子性的缓冲溶液作流动相,应在实验完毕后将柱子用纯水冲洗干净,并保存于乙腈中。

6.压力升高是需要更换预柱的信号。

 

1:

溶剂中的不溶物—应使用色谱纯溶剂,膜过滤(孔径不超过μm)2:

样品中的不溶物—应对样品进行膜过滤(孔径不超过μm)3:

泵,进样器等中的不溶物—在泵和进样器之间安装内置过滤器,在进样器和柱之间安装预过滤器4:

柱内不溶物的形成:

由于溶剂的不互溶而产生的沉淀—用能溶解沉淀物的溶剂冲洗色谱柱;在不互溶溶剂中由于进样而产生的沉淀—检查样品液和流动相是否互溶;由于温度的改变或固定相的干涸而产生的沉淀—将色谱柱密封紧,并保持室温恒定!

还有就是平衡色谱柱、色谱柱的再生:

1平衡色谱柱:

反相色谱柱在经过出厂测试后是保存在乙腈/水中的。

请一定确保您所使用的流动相和乙腈/水互溶。

由于色谱柱在储存或运输过程中可能会干掉,因此在用流动相分析样品之前,应使用10-20倍柱体积的甲醇或乙腈平衡色谱柱;如果您所使用的流动相中含有缓冲盐,应注意用纯水"过渡"。

  硅胶柱或极性色谱柱在经过出厂测试后是保存在正庚烷中的。

如果该色谱柱需要使用含水的流动相,请在使用流动相之前用乙醇或异丙醇平衡如何平衡色谱柱?

  平衡过程中,将流速缓慢地提高;用流动相平衡色谱柱直到获得稳定的基线(缓冲盐或离子对试剂浓度如果较低,则需要较长的时间来平衡)2色谱柱的再生:

进行色谱柱再生时,应使用一个谦价的泵,最好不使用您的高效液相色谱仪上的泵。

稀硫酸可以用来清洗已污染的色谱柱!

偶也来参与一下,谈一点拙见1.对于一些特殊型号的柱子,例如不同型号的手性柱应严格按照柱子的相应说明书所要求的进行维护,并按照其规定的范围选择试剂的种类,比例,PH,等等;2.尽量避免柱子进气泡的现象出现,如在实验过程中留心流动相的体积,同时对所需体积进行大概的估计,以免吸空,气泡进柱,尽管有多种排气泡的方法,但毕竟影响柱子的性能,尤其是比较“娇贵”的柱子;

每天用足够的时间来平衡色谱柱,您就会在处理问题方面获得最大的"补偿",而且您的色谱柱的寿命也会变得更长!

------一定得做!

  新的色谱柱在使用之前应该在您自己的液相色谱仪上进行性能测试,即使用色谱柱附带的检验报告上测试条件和样品来测定该色谱柱的柱效。

并且,在以后的使用中,应时常对色谱柱进行测试。

卡套柱的安装(不加预柱)1.将卡套架套入柱芯2.将两片夹套片嵌入柱芯的凹槽,使柱芯高于夹套(见左图)3.将已套到柱芯上的卡套架向上推,直至高过夹套片4.将卡套帽和卡套架旋在一起,然后用手拧紧5.然后依同样的顺序连接好柱子的另一端6.连接到液相色谱仪,PEEK接头手拧即可;若为不锈钢接头应使用专用扳手注意:

使用卡套柱时,两端的卡套应时刻连接在柱芯上。

不管您是平衡色谱柱或是清洗,任何时候都不能将卡套取下来,否则会造成填料的流失。

卡套柱的安装(加预柱)1.将卡套架套入柱芯2.将两片夹套片嵌入柱芯的凹槽,使夹套高于柱芯(见左图)3.将已套到柱芯上的卡套架向上推,直至高过夹套片4.将"子弹头"预柱放入卡套片内5.将卡套帽和卡套架旋在一起,然后用手拧紧6.然后依同样的顺序连接好柱子的另一端7.连接到液相色谱仪,PEEK接头手拧即可;若为不锈钢接头应使用专用扳手更换色谱柱滤网和玻璃棉过滤片(同时可以修补色谱柱)注意:

在取出反相柱芯的滤网和玻璃片之前,应该将色谱柱充分用水和甲醇/乙腈冲洗,而且修补工具的头部也应该蘸取少量的甲醇/乙腈,以避免在取出滤网和玻璃棉滤片时带出柱子内的填料。

1.将修补工具中的2套入柱芯的顶端2.将修补工具中的3轻轻地旋入已套着2的柱芯中,并顺时针方向旋转到旋紧3.一手握柱芯,另一只手轻轻地向外拉3,取出柱芯顶端的滤网4.用一个小铲子轻轻地取出滤网下面的玻璃棉以及被污染的填料5.将新的填料用甲醇润湿,然后填入挖去的部位,压平6.照(左图)装上新的玻璃棉滤网,并用修补工具中的4将玻璃棉压入柱芯顶端7.柱芯顶端套上2,然后参照(左图)将滤网放入8.压紧,然后取下2,再用4将滤网的边缘压平平衡色谱柱 反相色谱柱在经过出厂测试后是保存在乙腈/水中的。

请一定确保您所使用的流动相和乙腈/水互溶。

由于色谱柱在储存或运输过程中可能会干掉,因此在用流动相分析样品之前,应使用10-20倍柱体积的甲醇或乙腈平衡色谱柱;如果您所使用的流动相中含有缓冲盐,应注意用纯水"过渡"。

  硅胶柱或极性色谱柱在经过出厂测试后是保存在正庚烷中的。

如果该色谱柱需要使用含水的流动相,请在使用流动相之前用乙醇或异丙醇平衡如何平衡色谱柱?

  平衡过程中,将流速缓慢地提高  用流动相平衡色谱柱直到获得稳定的基线(缓冲盐或离子对试剂度如果较低,则需要较长的时间来平衡)色谱柱的再生  进行色谱柱再生时,应使用一个谦价的泵,我们建议最好不使用您的高效液相色谱仪上的泵。

表1 建议用来冲洗的溶剂体积色谱柱尺寸柱体积所用溶剂的体积125-430ml250-460ml250-10-20ml400ml请根据下表选择您的再生方法:

极性固定相(如Si,NH2*,DIOL基色谱填料)的再生:

正庚烷→氯仿→乙酸乙酯→丙酮→乙醇→水**非极性固定相(如反相色谱填料RP-18,RP-8,CN等)的再生:

水→乙腈→氯仿(或异丙醇)→乙腈→水稀硫酸可以用来清洗已污染的色谱柱注意:

在对NH2改性的色谱柱进行再生时,由于NH2可能成铵根离子的形式存在,因此应该在水洗后用的氨水冲洗,然后再用水冲洗至碱溶液完全流出。

**如果简单的有机溶剂/水的处理不能够完全洗去硅胶表面吸附的杂质,用稀硫酸冲洗非常有效。

色谱柱的维护1.使用预柱保护分析柱(硅胶在极性流动相/离子性流动相中有一定的溶解度)2.大多数反相色谱柱的pH稳定范围是2-,尽量不超过该色谱柱的pH范围3.避免流动相组成及极性的剧烈变化4.流动相使用前必须经脱气和过滤处理5.如果使用极性或离子性的缓冲溶液作流动相,应在实验完毕柱子冲洗干净,并保存大乙腈中6.压力升高是需要更换预柱的信号

对于高效液相色谱柱的保护我也来谈谈吧。

1.首先,溶剂、样品要前处理,溶剂要用色谱级别的并用的滤膜过滤并脱气,样品要用的滤膜过滤。

2.做样前,柱子要平衡一段时间,先用甲醇平衡30-60分钟,再用纯化水平衡30-60分钟,然后用流动相平衡,直到基线走平时,再进样。

3.做样结束后,柱子要用甲醇和水冲洗,冲洗顺序与2步相反,最后柱子用甲醇(95%)保存。

4.如果柱子里东西太多,可以用甲醇,乙腈,水反复冲洗。

谈谈关于启用新柱子(C18)的注意事项:

1、首先应检查一下,看是否为原装产品和外观完好情况。

2、保存好供应商随柱提供的“关于柱性能测试报告”,其中包含了新柱子的最佳性能指标,如在某预定色谱条件下的柱压、柱效等。

3、重现流动相条件,主要观察柱压的变化(100%甲醇、100%乙腈、50%甲醇-50%水等),并将数据记录在“性能报告上”,以便今后对照。

4、启用新柱子时的流动相流速应慢一点,如,经过10-15min后可以加快。

5、对于25cm柱子,流速一般不超过min,能用慢速流量时尽量使用慢一点,当然要考虑分离效果和分析时间。

加预柱喽!

以上大家都说了很多柱子保护方面的内容,已经很全了,但我想补充一个方面:

用离子对色谱法时柱子使用的一个问题.我们知道,一般我们分析样品时,常采用有机相(甲醇,乙腈)-水体系作为流动相,对于大部分的分析工作,这个体系就能胜任了,但是,当我们遇到弱酸碱时,比如生物碱,容易拖尾,这时候我们可以采用离子对色谱法进行分离,常用的离子对试剂有庚烷磺酸肭和十二烷基磺酸钠,这时候,我们常采用pH3-5的缓冲盐体系,我们在采用离子对色谱进行分离时,该怎么保护色谱柱呢?

一个很重要的问题是,当我们冲柱子的时候,应该先采用有机相-水体系冲,再用水冲,然后用有机相冲,比如我们的流动想是甲醇%的庚烷磺酸钠(50:

50),我们在冲柱子的时候,应该先用50%的甲醇水冲柱子,然后用水冲,然后用甲醇冲,这是为什么呢?

我们知道,通常的洗衣粉的主要有效成分是十二烷基硫酸钠(表面活性剂),它可以把一些脂肪油洗下来(烷烃及其衍生物),庚烷磺酸纳也是表面活性剂,如果先用水冲洗,会产生用洗衣粉洗衣服时的效果(ODS的固定相是长链烷烃),会造成固定相的损失,如果我们采用有机相-水体系先冲柱子,由于表面活性剂在有机相中有一定的溶解度,并且流动相的量比较大(相对于固定相,因为流动相是在不停的流动嘛)会使表面活性剂逐渐溶解在流动相中而被冲出,当表面活性剂被冲干净之侯,我们就可以采用水冲,然后采用有机相保存柱子了.

我也说说色谱柱的保护首先要看清楚说明书,是属于何种色谱柱,楼上各位所说都是集中在反相柱上,而正相色谱柱的保护和处理则有很大不同其次,色谱柱优良好坏的指标有柱效、柱压等如果在实验的某一天突然发现柱压升高,或者峰形脱尾等现象,则有必要对色谱柱进行处理。

处理方法,反相柱楼上的已经说了很多第三,色谱柱在进样时一定要过滤,最好加上预柱再附上一篇英文的色谱柱保护方法

我们的液相,既没有在线流动相过滤器,也没有预柱,(可能是经济原因不给配),所以,做样都要万分小心,但是,柱压还是会莫名其妙的升高。

从最初的100%甲醇600psi慢慢到最后1800psi,这个时候可能就是柱子堵了,但是出峰时间和柱效(踏板数)几乎没有什么变化。

一般情况我们的处理办法是,将柱子用甲醇饱和后,将柱子竖直放置,进口端的方向竖直向上,用两个扳手慢慢将柱子的入口端螺丝拧下,这时,会看到白白的硅胶,有时候会看见一个薄薄的筛板,将拧下的螺丝和筛板进行超声清洗,螺丝只需用100%甲醇或者100%乙醇和水超声即可,筛板需要先用水,再用20%硝酸(15分钟以上),再用异丙醇超声,其他的超声10分钟左右就行。

如果筛板和螺丝是一体的,那么就不能用那么高浓度的硝酸了5%既可了。

开口的硅胶在空气中放置1个小时以内是没有任何关系的,当超声完毕后,按照原来的样子重新安装上就可以了。

然后再用甲醇饱和。

我的长柱子25cm和短柱子15cm的我都拆开清洗过筛板,效果非常明显,压力从2200psi(25cm)下降至900psi,1800psi(15cm)下降至700psi。

经过全部检查确定压力增大是由柱子引起的可以一试。

本人不才,看了楼上各位的高见!

也斗胆在这里谈谈自己的一些管见!

望各位多多指教!

通常我们使用得较多的柱子都是反相柱,所以在这里我就只谈反相硅胶柱的一些清洗方法:

清洗硅胶键合柱子再生被污染HPLC柱子的关键是知道污染物的性质并且能找到适当的溶剂来去除。

如果污染是因为重复进样时强保留物质的累积引起的,利用简单的步骤来除去这些污染物往往能恢复其色谱行为。

有时候,经过多次操作以后的色谱柱用90~100%的溶剂B(双溶剂反相系统中较强的溶剂)冲洗20个体积可以清除污染物。

(表2列举了不同规格的HPLC柱子的空体积,因此读者能方便地确定相应柱子冲洗的体积。

)例如,柱子中残留的脂质就能用非水溶剂如甲醇、乙晴、四氢呋喃。

如果你使用的是缓冲液系统,不要直接切换到强溶剂,突然转换到高浓度有机溶剂可能会使HPLC流动体系中的缓冲液沉淀,这样会导致更大的问题如柱头堵塞、管道堵塞、泵泄漏、活塞损伤或进样阀转轴失灵。

应该先用无缓冲流动相(即把缓冲液换成水)。

冲洗5~10个体积以后才更换强溶剂。

有时候,强溶剂也没法把残留在色谱柱上的污染物洗掉。

那么更强的溶剂或者是一系列溶剂就有必要用来清洗柱子乐,如果污染物是非生物物质,使用者可以跳过一个或多个另外的有机溶剂去除污染物。

溶剂与溶剂之间的组合有很多。

到柱子厂家的网页上能找到推荐的溶剂系统。

一般来说,所有的清洗方法都有类似的形式。

所用的溶剂都是随溶剂强度增加,经常最后一个溶剂是非常疏水的(如醋酸乙酯甚至是烃),可以用来溶解非极性物质如脂质和油类。

我们必须保证一系列溶剂中每个溶剂都能与下一个溶剂互混。

清洗过程要结束时,必须借助一个中等强度能互混的溶剂而回到原始溶剂系统。

例如,异丙醇是一个非常好的作为中间步骤的溶剂,因为它能与正己烷或二氯甲烷互溶又能与水相溶剂互溶。

但是异丙醇粘度非常大,必须确保较低的流速以免使泵压过高。

当然,如果使用紫外检测器的话,避免溶剂在紫外区域有吸收,要不然需使用大量的溶剂冲洗才能使基线平稳。

对于典型的硅胶键合柱来说如果没有缓冲溶液的话推荐使用以下溶剂系列:

100%甲醇100%乙晴75%乙晴-25%异丙醇100%异丙醇100%二氯甲烷100%正己烷用二氯甲烷或正己烷以后,由于溶剂相容性柱子必须用异丙醇冲洗后才能用原来的水相溶剂。

每种溶剂至少冲洗10个柱体积。

如250mm×分析柱,分析者可以用1~2ml/min的流速来冲洗,要回复原来的溶剂体系,不需要每一步都冲洗,可以跳过中间步骤。

中间步骤推荐使用异丙醇,然后用没有缓冲的流动相,最后回复起始流动相配置。

四氢呋喃是另外一种比较受欢迎的去除污染的溶剂。

如果使用者怀疑柱子被严重污染,可以二甲基亚砜(DMSO)或者二甲基甲酰铵和水按50:

50的比例混合用低于min的流速流过色谱柱。

成功再生反相柱子是一个非常耗时间的过程,溶剂冲洗可以利用梯度系统过夜操作。

还有一个问题是清洗过程中是否可以把HPLC柱子反过来。

因为大多数强保留的污染物都会累积在柱头,把柱子反过来可以缩短污染物被冲出柱子的移动距离。

考虑到装填柱子的稳定性,现在大多数HPLC柱子都是比普通操作压力大很多的高压装填的,因此他们的柱床应该不会受到反方向流速的影响。

但是,如果头上的烧结比尾部的烧结孔径大的话。

例如尾部烧结的孔径是2μm,他通常能够留住平均5μm孔径里的填料。

有时侯厂家会让头部孔径较大以避免样品或流动相颗粒堵塞。

如果这种孔径大于装填颗粒尺寸分布曲线的最小粒径时,有些填料能穿过这些缝隙而流出色谱柱,这样会导致空白出现。

如果柱子有箭头标志建议的流动方向,我建议通过操作手册和说明书,厂家主页或者技术支持部门等确认是否可以把柱子反过来冲。

无论你是否把柱子反方向,最好不要让溶剂通过检测器避免污染物和穿透缝隙的颗粒进入检测池,否则有可能引起污染。

清洗柱子频率主要看有多少强保留物质被打入色谱柱。

因为反相柱有时候在分辨率消失或者鬼峰出现前能承受很大的污染,使用者经常会等到出现了异常情况才开始注意。

然而,污染物过多的累积会导致清洗柱子的难度加大。

所以,如果你知道经常用杂质较多的样品上样时,我建议你们有规律地清洗柱子,你越是频繁清洗柱子,就清洗起来就越不费劲。

我觉得应该将所有注意事项条例化,这样比较简明,下面是我的个人观点:

1.采用预柱或保护柱2.要注意样品的前处理,如果是脏样品,例如中药提取液,体液等,就需要采取萃取等操作除去对柱子损坏较大的杂质,例如色素、多糖、蛋白质等3.用的膜过滤流动相和样品4.确保流动相pH在2~8之间5.在用含缓冲液或者酸性较强的流动相时,分析完后要用水冲洗,再用纯有机溶剂(最好是乙腈)冲洗6.防止柱子干瘪,避免色谱柱受到强烈震荡7.定期对色谱柱进行清洗,吸取残留的杂质,并对柱效进行测定8.对每种样品最好采用专用色谱柱9.避免突然改变流速,也就是流速的改变要平缓

流动相每天的需要很大的,都用的膜不是很慢而且不经济啊

我的流动相是甲醇和水按2比3的比例混合的,开始几天每天做完后都是先用双蒸水先冲30min,然后用甲醇冲30min,接着就保存在甲醇里到第二天再做.柱子是新的ODS碳18柱子,今天老师告诉我不要冲太久,否则会把固定相上面的固定液冲走损害柱子,因为没有加其他盐类,所以可以不冲太就都可以了,那我怎么清洗柱子呢

hu_2104411wrote:

我的流动相是甲醇和水按2比3的比例混合的,开始几天每天做完后都是先用双蒸水先冲30min,然后用甲醇冲30min,接着就保存在甲醇里到第二天再做.柱子是新的ODS碳18柱子,今天老师告诉我不要冲太久,否则会把固定相上面的固定液冲走损害柱子,因为没有加其他盐类,所以可以不冲太就都可以了,那我怎么清洗柱子呢

直接用甲醇冲洗。

hu_2104411wrote:

流动相每天的需要很大的,都用的膜不是很慢而且不经济啊

那并不是不经济,因为膜还是很便宜的,而一根柱子的价格可是2000~3000元,如果是一些特殊的柱子,就更贵了,例如灌注色谱、高效排阻色谱柱、手性分离柱等,所以还是不要怕麻烦,这样会给以后的实验带来很大的好处。

1、注意正确地使用和存放色谱柱,不锈钢柱色谱柱可选用以下的溶剂保存:

正相柱用烃类溶剂,反相柱用甲醇,离子交换柱用水或甲醇/水。

某些专用分析色谱柱要注意制造商规定的保存条件。

另外,要注意溶液的PH值,一般控制在PH2-8范围内,其硅胶柱PH>8时会发生硅胶溶脱的情况,键合型柱PH<2时会发生键合相断裂。

2、色谱柱污染后可采用合适的溶剂冲洗,使柱效再生。

⑴硅胶柱可以使用正庚烷、氯仿、乙酸乙酯、丙酮、乙醇和水按顺序冲洗色谱柱,经过净化的色谱柱必须进行水活化,即按上述相反的顺序冲洗。

柱再生时所需要的有机溶剂要严格进行脱水处理。

⑵反相柱可以用甲醇、氯仿、正庚烷冲洗,键合C18柱一般用甲醇冲洗,必要时可用0.5MEDTA钠盐溶液冲洗,然后用水冲洗,以达到去除柱内盐类。

⑶键合型的离子交换柱可以用缓冲溶液、水、甲醇冲洗。

3、对污染严重的色谱柱在冲洗无效时,需将柱内填料取出进行处理或更换新的填料,还可以用更换柱头填料的方法即将柱头入口处的被污染的填料取出,重新补装和柱内同类型的填料,然后在改变柱流向进行再生。

这种逆流再生柱的方法,可以救活大部分柱子。

4、注入色谱柱的溶剂、标液、样品溶液都必须严格过滤,以去除杂质,防止堵塞色谱柱。

当用反冲洗方法无效时,可将柱口过滤装置取下,用弱酸溶液处理,去除污物或定期更换。

5、建议:

为了保护色谱柱,避免给分析带来不必要的麻烦,请使用保护柱!

1.流动相中含缓冲盐的最好新鲜配制。

2.流动相的水也最好用新鲜的,而且要放在棕色瓶中。

要注意流动相中的磷酸盐与甲醇混合时要注意其比例,否则可能异致磷酸析出,堵塞柱子。

我觉得关于柱子的保护除了加预柱,流动相和样品要过滤之外,很重要的一点是实验后柱子冲洗.冲洗液应该按柱子的说明进行.我在工作中发现:

盲目的使用冲洗液,即使冲洗的时间很长,柱子的寿命还是很短.而根据柱子说明书中不同流动相使用不同的冲洗液进行冲洗,能使柱子的寿命延长.在进行柱子的再生时也是如此.

说说新手容易出错的地方!

1、用完柱子后不冲柱子。

2、用完柱子后两端没封口。

3、堵柱子后不管三七二十一就反冲。

4、只要柱效不够就要买新柱子,不看是否有挽救措施。

5、流动相含有机相用水系膜过滤。

6、片剂溶解离心后不过滤。

7、PH不测定就开始冲柱子。

8、拧柱子时用劲太猛,导致接口塞在柱口。

上面的情况大家可否遇到过!

"要注意流动相中的磷酸盐与甲醇混合时要注意其比例,否则可能异致磷酸析出,堵塞柱子。

"想请教有什么具体要求?

"要注意流动相中的磷酸盐与甲醇混合时要注意其比例,否则可能异致磷酸析出,堵塞柱子。

"想请教有什么具体要求?

其实最好的是参照色谱柱生产厂家的推荐方案,别的意见只能作为平时的参考,作到心里有数!

针对普通的反相柱的冲洗,就我经验来谈几点吧:

一般要做好一下几点:

1.保证样品内尽可能的澄清,具体方法:

过微孔滤膜;有些样品很难滤过:

我遇到过这种情况,我采用的方法是将样品放冰箱静置1天,然后在过微孔滤膜,结果并不影响试验;2.就是具体进样的时候:

中药的话一般最好采用预柱;化药不用也行的;3.柱子的冲洗了:

如果流动相有盐或者离子对的话先用纯水冲洗30~60分钟的样子,然后从低浓度冲到高浓度,最后用甲醇饱和就ok了,时间一般在60~90分钟就行了如果流动相没有盐或者离子对的话就直接从低浓度冲到高浓度,最后用甲醇饱和就ok了,时间一般在60~90分钟就行了。

4.就好多人说:

不要用纯水冲洗,我认为并不一定的,可以用水,但是不要采用高流速这是真的,我的试验一直是采用纯水的,结果没有什么问题。

我现在在做一个新的化合物,用一般的C18柱分不开,但能略微的看到是有两个峰,调流动相和流速都分不开,我想换柱子,但不知道用什么柱子好呢?

shaoshen:

离子对试剂是很难被“逐渐融解在流动相中重干净”的吧?

它和C18之间的作用不能简单的理解为表面活性剂与C18的作用吧?

(唉~距离你的发言两年了~)

xiaolan2148134wrote:

我现在在做一个新的化合物,用一般的C18柱分不开,但能略微的看到是有两个峰,调流动相和流速都分不开,我想换柱子,但不知道用什么柱子好呢?

“一个化合物”还要跑出几个峰啊?

做破坏实验吗?

跑梯度了吗?

我觉得目前国内在分离度改善方面更多的是改变流动相,而国外更专注于选择柱子.我想可能是经费方面的问题吧.目前,Waters和安捷伦,HP有一系列针对不同物质和结构的柱子,建议选择其中一种多研究分析.我曾成功地用普通C18柱在20分钟时分离手性物质(流动相是甲醇-水体系),所以遇到分离不佳可以考虑根据结构选柱子,而非改流动相.具体的各公司网页和产品说明说中有.

若柱子使用的时间较长,柱压较高时,可采用柱子再生法处理,即按水-甲醇-四氢呋喃-二氯甲烷-四氢呋喃-甲醇-水的顺序来冲洗柱子,以达到提高柱子的柱效和寿命

谢谢上面的,让我增长见识了

色谱柱是液相色谱的心脏部件,它包括柱管与固定相两部分。

柱管材料有玻璃、不锈钢、铝、铜及内衬光滑的聚合材料的其他金属。

玻璃管耐压有限,故金属管用得较多。

一般色谱柱长5~30cm,内径为1~5mm,凝胶色谱柱内径3~12mm,制备往内径较大,可达25mm以上。

一般在分离前备有一个预柱,前置柱内填充物和分离柱完全一样。

柱效受柱内外因素影响,为使色谱柱达到最佳效率,除柱外死体积要小外,还要有合理的柱结构(尽可能减少填充床以外的死体积)及装填技术。

即使最好的装填技术,在柱中心部位和沿管壁部位的填充情况总是不一样的,靠近管壁的部位比较疏松,易产生沟流,流速较快,影响冲洗剂的流形,使谱带加宽,这就是管壁效应。

这种管壁区大约是从管壁向内算起30倍粒径的厚度。

在一般的液相色谱系统中,柱外效应对柱效的影响远远大于管壁效应。

液相色谱柱的结构色谱柱由柱管、压帽、卡套(密封环)、筛板(滤片)、接头、螺丝等组成。

柱管多用不锈钢制成,压力不高于70kg/cm2时,也可采用厚壁玻璃或石英管,管内壁要求有很高的光洁度。

为提高柱效,减

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