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生物化学常用试剂配制

常规试剂配制与测定方法

一、溶液的配制

1、Mandels营养盐溶液(1000mL)

名称

重量(g)

硫酸铵((NH4)2SO4)

14

磷酸二氢钾(KH2PO4)

20

尿素(H2NCONH2)

3

硫酸镁(MgSO4·7H2O)

3

氯化钙(CaCl2·2H2O)

4

注:

用煮沸10min后的蒸馏水配制。

2、Mandels微量元素溶液(1000mL)

名称

重量(g)

氯化钴(CoCl2·6H2O)

3、7

硫酸锌(ZnSO4·7H2O)

1、4

硫酸锰(MnSO4·H2O)

1、6

硫酸亚铁(FeSO4·7H2O)

5、0

注:

用煮沸10min后的蒸馏水配制。

3、DNS试剂的配制(1000mL)

(1)取:

3,5-二硝基水杨酸(C7H4N2O7)7、5g

氢氧化钠(NaOH)14、0g

充分溶解于1000mL水中(水预先煮沸10min)

(2)加入:

酒石酸钾钠(C4H4O6KNa·4H2O)216、0g

苯酚(在50℃水浴中融化)5、5mL

偏重亚硫酸钠(Na2S2O5)6、0g

(3)充分溶解后盛于棕色瓶中,放置5天后便可使用,平时盛一小瓶(250mL)使用,要放在冰箱中冷藏。

此溶液每月配制一次。

注意:

倒入瓶中时要尽量装满!

4、考马斯亮蓝G-250的配制(1000mL)

称考马斯亮蓝G-250100mg即0、1g溶于50mL95%乙醇中,加入100mL85%磷酸,用蒸馏水稀释至1000mL,滤纸过滤。

最终试剂中含0、01%(w/v)考马斯亮蓝G-250,4、7%(w/v)乙醇,8、5%(w/v)磷酸。

5、1、0M柠檬酸缓冲溶液的配制(1000mL)

名称

分子量Mn

重量(g)

柠檬酸(C6H8O7·H2O)

210

210

NaOH

40

74、5

准确称取柠檬酸210g,溶于约750mL煮沸(10min)蒸馏水中,待柠檬酸充分溶解后加入氢氧化钠74、5g,完全溶解后将上述溶液转移到1000mL容量瓶中,冷却后将容量瓶定容到1000mL(原始pH4、45)。

(检验方法:

取1、0M柠檬酸缓冲溶液稀释20倍,测定稀释液的pH值,pH值应为4、8)

6、标准糖溶液的配制与标准方程的测定

(1)标准糖溶液的配制

准确称取2、000g葡萄糖/木糖(葡萄糖/木糖需105℃烘干3h),蒸馏水溶解,全部转移至1L容量瓶内,摇匀,配制成2g/L葡萄糖/木糖溶液。

取9个100mL容量瓶、1支20mL刻度吸管,分别吸取2g/L葡萄糖/木糖溶液10mL、20mL、30mL、40mL、50mL、60mL、70mL、80mL、90mL依次加入容量瓶,蒸馏水定容,摇匀。

即为0、2g/L、0、4g/L、0、6g/L、0、8g/L、1、0g/L、1、2g/L、1、4g/L、1、6g/L、1、8g/L、2、0g/L葡萄糖/木糖标准溶液。

取6个30mL容量瓶、1支20mL刻度吸管,分别吸取2g/L葡萄糖溶液10mL、12mL、14mL、16mL、18mL、20mL依次加入容量瓶,每瓶再加入1、5mL柠檬酸缓冲液,蒸馏水定容,摇匀。

即为1、0g、1、2g、1、4g、1、6g、1、8g、2、0g酶解葡萄糖。

(2)标准方程的测定:

葡萄糖/木糖标准方程的测定

取10支25mL刻度管,10支1mL刻度吸管,分别加入0、2g/L、0、4g/L、0、6g/L、0、8g/L、1、0g/L、1、2g/L、1、4g/L、1、6g/L、1、8g/L、2、0g/L葡萄糖/木糖标准溶液1mL,DNS溶液3mL。

100℃煮沸5min,水浴冷却后定容至25mL,摇匀。

以蒸馏水作为空白对照,550nm测定吸光度A。

以A为纵坐标,C为横坐标,制定标准曲线。

(7230型分光光度计输出方程为:

A=MC+N,723型分光光度计输出方程为:

C=KA+B)

酶解木糖标准方程测定(测定木聚糖酶活力)

取6支25mL刻度管,6支2mL刻度吸管,分别加入1、0g、1、2g、1、4g、1、6g、1、8g、2、0g酶解木糖标准溶液1、5mL,DNS溶液3mL,100℃煮沸5min,水浴冷却后定容至25mL,摇匀。

以蒸馏水作为空白对照,550nm测定吸光度A。

以A为纵坐标,C为横坐标,制定标准曲线。

(7230型分光光度计输出方程为:

A=MC+N,723型分光光度计输出方程为:

C=KA+B)

酶解葡萄糖标准方程测定(测定滤纸酶活力、CMC酶活力)

取6支小试管,6支2mL刻度吸管,分别加入1、0g、1、2g、1、4g、1、6g、1、8g、2、0g酶解葡萄糖标准溶液1、5mL,DNS溶液3mL,100℃煮沸5min,水浴冷却后,量筒定容至50mL(定容至25mL,测定CMC酶活力),摇匀。

以蒸馏水作为空白对照,550nm测定吸光度A。

以A为纵坐标,C为横坐标,制定标准曲线。

(7230型分光光度计输出方程为:

A=MC+N,723型分光光度计输出方程为:

C=KA+B)

7、柠檬酸-磷酸氢二钠缓冲液的配制

pH

0、1mol/L

柠檬酸/mL

0、2mol/L

磷酸氢二钠/mL

pH

0、1mol/L

柠檬酸/mL

0、2mol/L

磷酸氢二钠/mL

2、2

19、60

0、40

5、2

9、28

10、72

2、4

18、76

1、24

5、4

8、85

11、15

2、6

17、82

2、18

5、6

8、40

11、60

2、8

16、83

3、17

5、8

7、91

12、09

3、0

15、89

4、11

6、0

7、37

12、63

3、2

15、06

4、94

6、2

6、78

13、22

3、4

14、30

5、70

6、4

6、15

13、85

3、6

13、56

6、44

6、6

5、45

14、55

3、8

12、90

7、10

6、8

4、55

15、45

4、0

12、29

7、71

7、0

3、53

16、47

4、2

11、72

8、28

7、2

2、61

17、39

4、4

11、18

8、82

7、4

1、83

18、17

4、6

10、65

9、35

7、6

1、27

18、73

4、8

10、14

9、86

7、8

0、85

19、15

5、0

9、70

10、30

8、0

0、55

19、45

注:

Na2HPO4,Mr=141、98;0、2mol/L溶液为28、40g/L

Na2HPO4·2H2O,Mr=178、05;0、2mol/L溶液为35、61g/L

C6H8O7·H2O,Mr=210、14;0、1mol/L溶液为21、01g/L

二、酶活力的测定

1、滤纸酶活力的测定—纤维素酶的总体酶活力

采用国际理论与应用化学协会(IUPAC)推荐的标准方法测定[Ghose,T、K、,etal,Pure&Appl、Chem、,1987,59,257-268],一个滤纸酶活力的国际单位(FPIU)等于在标准反应条件下每分钟生成1μmol葡萄糖量的酶量。

测定方法如下:

取7支试管在其中1#-5#支小试管中加入50mg卷成筒状的滤纸条(1×6cm),适当稀释酶液,取7支试管按下表操作。

(5#有底物无酶,6#为有酶无底物空白对照)

项目

1#

2#

3#

4#

5#

6#

7#

稀释酶液(mL)

0、2

0、3

0、4

0、5

0

0、5

酶解葡萄糖

标样1、5mL

0、05M柠檬酸缓冲液(mL)

1、3

1、2

1、1

1、0

1、5

1

将上述试管盖上塑料布,用橡皮筋扎紧后置于恒温水浴器中,保持在振幅80与温度50℃下保温60min后立即取出加入3mLDNS试剂,在沸水中反应5min,冷却后加水至50mL并充分摇匀,待滤纸完全沉淀后,取上层清液于550nm波长下测定吸光度A值。

反应生成的葡萄糖的量根据葡萄糖标准曲线求得。

以0、2、0、3、0、4、0、5mL酶量所生成葡萄糖的毫克数为横坐标,酶量的对数为纵坐标作图,从图中找出生成2mg葡萄糖的酶量,按下式计算样品的滤纸酶活力(FPA):

滤纸酶活力=2mg葡萄糖

60min×0、18(mg/μmol)×生成2mg葡萄糖的酶量(mL)

一个滤纸酶活力单位定义为每分钟生成1μmol葡萄糖所需的酶量,单位:

IU/mL。

备注:

当加入0、5mL酶液(指酶液没有被稀释的时候!

)仍无法生成2mg葡萄糖时,按下式计算:

滤纸酶活=0、185×(葡萄糖mg数)

2.β-葡萄糖苷酶活力的测定

方法一:

葡萄糖氧化酶测定法

按国际标准方法测定[Ghose,T、K、,etal,Pure&Appl、Chem、,1987,59,257-268]。

一个β-葡萄糖苷酶活力国际单位(IU/mL)等于标准条件下每分钟转化1μmol底物即生成2μmol葡萄糖的酶量来表示。

预先用0、05M的柠檬酸缓冲液配制15mmol/L的纤维二糖溶液(0、513g纤维二糖/100mL0、05M的柠檬酸缓冲液,现配现用)

(1)每个样品应做三个不同酶量

估计β-葡萄糖苷酶活力(IU/mL)

<0、1

0、1

0、2

0、3

取酶液量(mL)

0、5/0、8/1、0

0、3/0、5/0、8

0、2/0、3/0、5

0、1/0、2/0、3

(2)加料:

试管中加入酶液、缓冲液与纤维二糖溶液如下:

酶液量

(mL)

0、05M柠檬酸缓冲液(mL)

纤维二糖溶液

(mL)

样品

适量

1-酶液

1

酶液空白

1

1

0

纤维二糖空白

0

1

1

每个试管共2mL,用塑料纸包扎好。

注意:

纤维二糖溶液必须用0、05M柠檬酸配制。

(3)酶解反应:

试管置于50℃水浴中,保温30分钟,取出,沸水中放置5分钟使酶失活,冷却至室温。

(4)加显色剂(葡萄糖氧化酶测定试剂):

取试管中冷却液30µL,加入显色剂3、0mL,混匀;同时做一个葡萄糖标样:

取1g/L葡萄糖标样30µL,加显色剂3、0mL,混匀;置于37℃水浴中,保温15分钟,取出。

(5)测吸光度:

505nm,用蒸馏水调零,测各试管溶液吸光度A值。

1g/L葡萄糖标样的吸光度为0、7左右。

(6)计算产生的葡萄糖mg数:

样品吸光度

测得酶空白所含葡萄糖=2×(mg)

纤维二糖空白1g/L葡萄糖标样吸光度

样品实际产生的葡萄糖=[测得葡萄糖mg]-[纤维二糖空白葡萄糖mg]

-[酶空白葡萄糖mg]×[酶液量mL](mg)

注:

纤维二糖空白所产生的响应值,当纤维二糖溶液为新鲜配制时,一般很低。

(7)作图:

以log(酶液量mL)为纵坐标,实际产生的葡萄糖mg为横坐标作图,求出生成1mg葡萄糖时对应的酶液量mL。

(8)计算β-葡萄糖苷酶活力:

0、0926

β-葡萄糖苷酶活力=(IU

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