治带片中苦参碱及氧化苦参碱的HPLC法测定.docx
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治带片中苦参碱及氧化苦参碱的HPLC法测定
治带片中苦参碱及氧化苦参碱的HPLC法测定
【摘要】目的建立治带片中苦参碱及氧化苦参碱的高效液相色谱(HPLC)测定方法。
方法色谱柱:
LichrospherNH2(×250mm,5μm),C18保护柱;流动相:
乙腈无水乙醇/L磷酸水溶液(80∶10∶10);检测波长212nm;流速/min;柱温:
室温;进样量20μL。
结果苦参碱和氧化苦参碱线性范围均为μg/mL,回归方程苦参碱为:
C=×10-4A+,r=;氧化苦参碱为:
C=×10-4A+,r=,平均回收率分别为%和%,RSD分别为%和%。
结论本法简便快捷,结果准确,可用于该制剂的质量控制。
【关键词】治带片;苦参碱;氧化苦参碱;高效液相色谱
DeterminationofAlkaloidsinZhidaipianTablets byhighperformanceliquidchromatogram
ABSTRACT:
ObjectiveToestablishamethodofhighperformanceliquidchromatogram(HPLC)formeasuringmatrineandoxymatrineinZhidaipianTablets.MethodsALichrospherNH2column(×250mm,5μm)wasusedwithamobilephaseconsistingofacetonitrileethanol/Lphosphoricacid(80∶10∶10),andinaflowrateof/min.Thedetectivewavelengthwas212nm.Columntemperaturewasroomtemperatureandtheinjectionquantitywas20μL.ResultsThesampleswerewellseparated.Thelinearrangewasthesameforthetarget(μg/mL).ThelinearequationsformatrinewasC=×10-4A+,thecorrelationcoefficientwas,andforoxymatrinewasC=×10-4A+,whilethecorrelationcoefficientwas,respectively.Themeanrecoveryratewere%and%,respectively.RSDwas%and%,respectively(n=6).ConclusionThemethodissimple,reliable,accurateandcanbeusedtothequalitycontroloftheZhidaipianTablets.
KEYWORDS:
Zhidaipiantablets;matrine;oxymatrine;highperformanceliquidchromatogram
治带片处方由墓头回、苦参、金樱子、知母(盐炒)、苍术(炒)等组成。
清利湿热,止带。
用于湿热下注,赤带,白带,黄带等症。
方中苦参为君药,其有效成分是苦参碱和氧化苦参碱。
为有效控制药品质量,对制剂中的苦参碱和氧化苦参碱采用高效液相色谱(HPLC)法进行含量测定。
1材料与方法
仪器与试药日本岛津LC10AT高效液相色谱输液泵,SPD10AVP紫外可见检测器,岛津7725i进样器,ANASTAR色谱工作站,DL360超声波清洗器(浙江象山县石浦海天电子仪器厂,功率240W,频率35kHz),乙腈、无水乙醇为色谱纯,其他试剂为分析纯。
苦参碱和氧化苦参碱对照品由中国药品生物制品检定所提供(编号分别为110805200306和0780200004),供含量测定用。
治带片由西安阿房宫制药有限公司提供(批号20030611-20030613)。
对照品溶液的配制精密称取苦参碱、氧化苦参碱对照品适量,用乙腈无水乙醇(8∶1)溶解,分别制成/mL溶液作为苦参碱、氧化苦参碱对照品储备液。
供试品溶液的制备取治带片2片,研细,称,于100mL磨口锥形瓶中,加入20mL氯仿及浓氨液,密塞,称定重量。
超声处理30min,放冷,用氯仿补足失去的重量,摇匀、过滤,取续滤液5mL,通过中性氧化铝柱(100-200目5g,装前于高温电炉400℃处理2h,冷却后装于内径1cm层析柱中)。
依次用氯仿、氯仿甲醇(7∶3)各20mL洗脱,合并洗脱液,挥去并赶尽溶剂,残渣用乙腈无水乙醇(8∶1)溶解并定容至,测定时再用乙腈无水乙醇(8∶1)稀释5倍并过μm微孔滤膜,取续滤液测定。
阴性对照溶液的制备依处方工艺制成不含苦参药材的片剂,再按方法制成阴性对照溶液。
2结果
色谱条件色谱柱LichrospherC18(×250mm,5μm),C18保护柱(部件号:
011200002);流动相为乙腈无水乙醇/L磷酸水溶液(80∶10∶10),使用前经μm微孔滤膜过滤并脱气;检测波长212nm;流速/min;柱温:
室温;进样量20μL。
在此条件下,对照品、供试品及阴性对照溶液的色谱图如图1所示。
图1治带片HPLC色谱图(横坐标为时间:
min)
HPLCgraphsofmatrineandoxymatrineinZhidaipianTablets
a:
Standard;b:
Sample;c:
Blank;1:
Matrine;2:
Oxymatrine
线性关系考察用乙腈无水乙醇(8∶1)稀释为分别含10μg/mL的苦参碱和氧化苦参碱的对照品溶液,制成含、、、、、μg/mL苦参碱和氧化苦参碱的对照品溶液,进样,测定。
以峰面积A对对照品溶液的浓度C作曲线,进行线性回归,回归方程苦参碱为:
C=×10-4A+,r=;氧化苦参碱为:
C=×10-4A+,r=。
说明苦参碱和氧化苦参碱质量浓度在μg/mL范围内与峰面积呈良好的线性关系。
供试品溶液制备方法的考察实验采用正交法对氯仿体积、超声时间、氧化铝重量等影响因素进行了考察。
因素水平A氯仿体积(mL):
A1=10,A2=20,A3=30。
B超声时间(min):
B1=15,B2=30,B3=45。
C氧化铝重量(g):
C1=3,C2=4,C3=5。
实验方法及结果精密称取研细的同批号相同重量供试品于100mL磨口锥形瓶中,分别按L9(34)正交表(表1)进行试验,测定苦参碱峰面积(ofmatrine)和氧化苦参碱峰面积(ofoxymatrine),用统计软件进行分析处理,结果见表2-4。
供试品溶液制备条件的优化上述实验结果表明,对苦参碱而言,因素A、C对实验结果均无显着性影响(),B对结果有显着性影响(),B1与B2、B3间有显着性差异(),B2、B3间无显着性差异();对氧化苦参碱而言,因素A、B、C对实验结果均无显着性影响()。
考虑到实验操作便易等因素,供试品溶液最佳提取工艺为A2B2C3。
表1苦参碱和氧化苦参碱提取方法正交试验L9(34)表
Table1Theresultsoforthogonaltestforextractiontechnologyofmatrineandoxymatrine
表2苦参碱提取方法多因素方差分析
Table2Testsofbetweensubjectseffectsforextractiontechnologyofmatrine
表3苦参碱不同超声时间提取的方差分析表
Table3Multiplecomparisonsofdifferentultrasonicextractingtimesofmatrine
表4氧化苦参碱提取方法多因素方差分析
Table4Testsofbetweensubjectseffectsforextractiontechnologyofoxymatrine
精密度试验按方法制备一份样品,重复进样5次,每次20μL,按色谱条件测定峰面积,结果苦参碱、氧化苦参碱峰面积积分值的RSD分别为%和%。
稳定性试验按方法制备一份样品,分别于0、2、4、6、8h精密吸取20μL,按色谱条件测定,记录峰面积积分值,结果苦参碱、氧化苦参碱峰面积积分值的RSD分别为%和%,表明供试品溶液在8h内稳定。
重复性试验取同批样品5份,按方法制备供试品并按色谱条件测定,结果苦参碱、氧化苦参碱质量分数的RSD分别为%、%。
回收率试验采用加标回收法。
取已知含量的同批样品数片,研钵中研细,称重6份,分别精密加入苦参碱和氧化苦参碱对照品,按方法制备样品并按色谱条件测定。
结果苦参碱和氧化苦参碱的平均回收率分别为%和%,RSD分别为%和%(表5),表明回收率良好。
表5治带片中苦参碱和氧化苦参碱回收率试验结果
Table5ResultsofrecoverytestformatrineandoxymatrineinZhidaipiantablets
样品测定按方法及方法分别测定不同生产批号的三批样品,结果三批样品含苦参碱和氧化苦参碱总量在/g之间。
按每片计,每片含苦参碱和氧化苦参碱总量在之间。
3讨论
苦参中苦参碱的含量测定药典以薄层扫描法测定[1]。
本文参照文献[25],在碱性条件下,用氯仿提取苦参碱后,过中性氧化铝柱以消除其他干扰成分,并比较了不同氧化铝的处理方法对消除干扰成分的效果,试验证明,氧化铝在400℃高温电炉里处理2h后,效果更好。
应用HPLC,以LichrospherNH2柱(×250mm)为固定相,乙腈无水乙醇磷酸水溶液为流动相,同时测定苦参碱和氧化苦参碱含量。
通过正交L9(34)试验对氯仿体积、超声时间、氧化铝重量等影响苦参碱和氧化苦参碱提取的因素进行了考察,为测定治带片中苦参碱和氧化苦参碱的含量提供了一个可靠的方法。
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