石蜡切片的制作过程精.docx
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石蜡切片的制作过程精
石蜡切片的制作
目的要求:
了解生物制片的基本原理和方法;了解石蜡切片制作的基本过程;学会制作石蜡切片。
一、生物制片的基本原理
（一生物制片的目的与发展概况
生物制片是研究生物有机体微观结构的基础方法,其目的是提供在显微镜下以适度的样品,有效地对其进行形态和功能观察研究。
（二生物制片的方法
当我们研究生物体的组织或细胞时,除了某些生物体可用相差显微镜或偏光显微镜等方法达到观察目的外,其余大部分生物体,因为组织较厚,光线不易透过内部等关系而达不到观察的要求,为了达到此目的,就必须将生物体的组织切成薄切片或不切片,经过一系列处理,使光线易于透过,即可进行观察。
因此,根据标本的制作方法分为切片法和非切片法两种。
这些方法,各有优缺点,应该适当的配合使用,才能获得比较理想的结果。
1.切片法
（1切片法的种类
切片法就是利用锐利的刀具,将器官组织或幼小个体分割成许多极薄的薄片,而制成切片标本的一种方法。
切片法在切成薄片以前必须设法使组织内渗透某种支持物质。
使组织保持一定的硬度,然后利用切片机进行切片。
根据所用支持物质的不同切片法又可分为石蜡切片法、火棉胶切片法、冰冻切片法、炭蜡切片法等类型。
现分述如下:
ⅰ.石蜡切片法
石蜡切片法即用石蜡作为支持剂进行切片的方法。
石蜡切片法是一般组织学、病理学等常规制片方法,因此用得最多,它有很多优点:
比较省时间,容易操作,可切成极薄的切片（4um以下,能制作连续切片,组织块可包埋在石蜡中永久保存。
缺点是只能用于较小的组织块,较大的组织块不易切好,容易破碎,组织在脱水透明过程中产生收缩并易变脆。
制片时间太长。
ⅱ.火棉胶切片法
火棉胶切片法是以火棉胶为支持剂进行切片的方法。
此法的优点是包埋过程中不用二甲苯及石蜡,不经高温,可避免组织收缩及变脆,适于精细材料（如脑的切片,也引火棉胶有韧性切片不知有折卷或破裂,适宜于大块组织及多空洞的组织（脑、眼球,硬度较高的组织（骨、肌腱。
缺点:
手续麻烦、费时间,切片不能切薄,起码在10um以上,不能作连续切片,因此,在生物制片技术上已经不经常采用。
ⅲ.冰冻切片法
冰冻切片法是利用液体二氧化碳或其它药剂（如氯乙烷在变成气体时吸收大量的热使组织迅速结成冰块而后再进行切片的方法。
目前国内外用半导体致冷调节器来代替二氧化碳的冰冻,冷冻速度更快更为方便。
冰冻切片法的优点是较前两种方法简便,组织不经脱水、透明、包埋等手续即可切片,因而可节省很多时间,十分钟左右即能制成切片。
常用于临床病理手术诊断,银材料不经溶媒处理就可直接进行切片,材料不受试剂的激烈刺激及温度影响,所以组织没有显著的收缩,细胞形态不致有大的改变,也引冰冻切片不需有机溶剂处理,所以能保存脂肪、类脂等成分,所以冰冻切片法常用于组织化学,尤其是神经组织,临床病理学等方面的研究。
新鲜的组织或已经固定的组织,经短时间处理后即可进行切片。
用任何固定及处理的材料均适合冰冻切片,但一般的经验用福尔马林固定的材料最适合冰冻切片,而用酒精、甘油保存的材料必须充分水洗后才易于冰冻,否则不易切成完整的切片（银究竟、甘油都能妨碍冰冻。
冰冻切片的缺点:
不能作连续切片,组织块不能过大,过大不易结冰,冰冻切片易于破碎,
一般冰冻切片机不易薄切,其切片往往要比石蜡切片厚1~2倍,染色也不记石蜡切片清晰,观察要有一定经验。
ⅳ.炭蜡切片法
炭蜡切片法优点是操作时间比火棉胶和石蜡法都短,在急用场合2~3小时即可制成切片标本。
组织经固定后不经酒精及二甲苯直接进入炭蜡,故组织收缩少,能和石蜡法一样薄切,并可经行连续切片,染色效果也好,又因组织或器官不经有机溶剂处理,因而可作脂肪及类脂的检查,可代替冰冻切片法制作脂类制片。
缺点:
对大块及坚硬易碎的组织不适宜,切片时室温不可过高,因易软化,炭蜡吸水性强,极易融化故包埋块应妥善保管。
制成的连续切片也不如石蜡法的质量高。
（2切片法制作的过程（以石蜡切片法为例
采集标本―→动物―→麻醉或杀死―→割取所需组织―→固定―→冲洗―→脱水或保存―→透明―→透蜡―→包埋―→修块―→切片―→贴片机展片―→烘干―→脱蜡―→染色―→封片。
2.非切片法
（1非切片法的种类
非切片法就是生物体个体或组织不用经过切片机,把其制成标本的一种方法。
这种方法的优点是操作方法简便快捷,能够保持生物体或组织原有的状态,人为产物少,缺点是应用范围有限。
如压碎法中的标本又改变某些组织细胞结构的正常关系等缺点。
ⅰ.整体封片法
将某些微小的生物体,如鱼类寄生虫,原生动物,鱼胚,鲍鱼卵等;或者生物体的一部分,如动物的某一器官（鱼的鳞片、鸟的羽毛等,经过固定、染色脱水等处理而制成标本的方法。
其特点可保持生物体原有的外形。
ⅱ.涂片法
将液体或半流动的标本在载玻片上（或盖玻片上涂一薄层,经过一定处理而制成标本的方法。
主要应用在动物的精子涂片和血涂片上。
ⅲ.展片法（铺片法
一般膜状组织铺在玻片上,将其伸展之后再进行固定及染色处理而制成标本。
ⅳ.磨片法
对含有钙盐等矿物质成分的材料用磨石磨成薄片制成片子的方法。
如脊椎动物的牙齿,软体动物的贝壳,鱼类鳃盖骨等均可用此方法制成标本。
ⅴ.离散法（渍撕散法
将组织投入适当的药液中,借助化学药剂的作用,将组织之间联连部分的物质溶解是各个细胞分离而制成标本。
（2非切片法的制片步骤
固定―→冲洗（遇必要时―→整体染色―→分化与退染―→脱水―→透明―→封藏。
二、实验准备工作
实验用具与药品
用具及药品数量
切片机（带切片刀一把1台
溶蜡箱（数控1台
展片台（数控或水浴锅1台
染色缸（立式或卧式30个
酒精灯6个
滴瓶（60ml6个
甘油蛋白瓶1个
树胶瓶1个
切片盘6个
硬纸板若干
单面刀片6盒
培养皿（大小6套
标本瓶（30ml6个
载玻片2盒
盖玻片1盒
广口瓶6个
烧杯6个
洗瓶6个
抹布6块
纱布6块
毛笔1支
记号笔1个
无水乙醇3瓶
95%乙醇5瓶
二甲苯3瓶
盐酸1瓶
苏木精1瓶
伊红1瓶
苦味酸1瓶
甲醛1瓶
冰乙酸1瓶
石蜡（52~54、56~58、60~623盒、3盒、3盒
三、石蜡切片的制作过程
（一材料与用具
1.材料:
鱼皮肤、性腺、肠、肝胰脏等。
2.用具:
溶蜡箱、蜡杯、不同熔点的石蜡、酒精灯等。
（二实验内容与步骤
1.取材及固定
取动物体上的小块组织成为组织块。
组织块的大小以不超过0.5立方厘米为宜。
切去组织块时动作要轻,切忌用力牵引或挟持,以免组织内部发生变化。
组织块取下后,先用先用0.85%的生理盐水漂洗以戏曲血液与污渍,如果是管状组织则必须把管腔中污物洗净,可用注射器自一端向管腔中注射生理盐水数次,使其管腔冲洗干净,切忌不可用刀或其他器具刮之。
由动物身上切取的组织必须是新鲜的,材料越新鲜越好,一般不应超过死后24小时。
如果是管状器官或是其中有分泌之消化液,则死后应迅速采取,以免组织自溶或上皮剥落。
材料由动物体取下后应当迅速固定,固定的目的是尽快使固定液渗入组织内部,将组织固定,以保持其原有的结构。
不同的组织应选用适当的固定液。
固定液的用量与组织块体积之比一般在20:
1。
不应使组织块贴于容器壁上,应记录固定液的名称,材料的种类,动物品种及开始固定的时间。
2.冲洗
固定后的组织块在进行脱水前必须用流水洗去固定液。
组织块应用纱布包好,注名,放金属水洗网中用流水冲洗,甲醛固定液固定的组织一般水洗24小时,Bouins固定液固定的组织水洗24小时。
AFA固定液则不需要水洗。
3.脱水和硬化
经过固定后的组织在水洗后要进行脱水,脱水的目的将组织内的水分用酒精或其他溶剂置换出来,使组织逐渐变硬,便于油类或其他透明及浸入,为熔化的石蜡浸渗到组织中创造条件。
常用的脱水剂是不同浓度的酒精,因为酒精与水有很大的亲和力,酒精浓度可以逐渐升高,置换出组织中的水。
脱水必须充分,脱水不充分会影响透明和浸蜡。
脱水过程要逐级上升,不能操之过急,跳级脱水会引起组织块强烈的收缩变形。
脱水所用的酒精浓度及过程如下:
30%—→50%—→70%—→80%—→90%—→95%—→100%（Ⅰ—→100%（Ⅱ
组织块在各级较低浓酒精（小于70%中脱水的时间应视组织块的大小而定,大小不超过0.5立方厘米的组织块脱水时间为6~12小时,在高浓度酒精中（大于70%脱水时间为3小时左右。
组织块在无水酒精中需经过两次处理,以保证脱净水分。
由于无水酒精有使组织变脆的缺点,故在无水酒精中脱水的时间不宜过长,一般应在15~30分钟左右。
在脱水瓶中酒精的量与组织块之比约为50:
1。
简化步骤如下:
70%（一夜——80%（1小时——90%（30分——95%（30分——100%（15分——酒精+二甲苯（15分——二甲苯（3分——石蜡+二甲苯（30分——石蜡（80分
4.透明
透明是石蜡切片法切片前必经的一步。
其目的在于用矿物油或植物油等透明剂置换出无水酒精,以便于熔化的石蜡浸渗到组织间隙中,故透明剂必须是能分别与石蜡和酒精相溶的。
经过透明剂处理的组织块用肉眼对光观察呈透明现象,所以这个过程称为透明。
常用的透明剂有二甲苯、苯、甲苯等,这些都是穿透力强易使组织变脆的透明剂,因此透明的时间宜短,一般在20分钟即可。
透明时组织块由无水酒精中取出,先放入二甲苯和无水酒精等量混合的溶剂中1小时左右,然后取出放入纯二甲苯中20分钟即可。
5.浸渗
浸渗过程是使包埋组织用的物质深入到所有的组织间隙中,然后再通过各种方法使这种物质凝固,而将组织材料包埋其中。
石蜡切片法和火棉胶切片法都需要浸渗过程。
石蜡切片法是将加热的石蜡渗到组织中而火棉胶切片法是使火棉胶渗到组织间隙中去。
在浸渗前要先将选好的石蜡分别以容器装好放在恒温箱中,使其杂质沉淀。
石蜡最好选用软蜡和硬蜡两种,软蜡熔点为45~50℃之间,硬蜡熔点为56~58℃之间,60~62℃的硬蜡很少用。
冬天室温较低时多用软蜡,夏天室温较高时多用硬蜡。
浸渗应在自动恒温箱中进行。
组织块在各个蜡杯中浸蜡的时间如下:
软蜡130min
软蜡230min
硬蜡130~60min
硬蜡260~120min
这一时间不是固定不变的,应视组织块的种类及大小而相应延长或缩短浸蜡时间。
浸蜡的总时间一般为:
0.5立方厘米的组织块时间为6~8小时;0.2~0.3立方厘米的组织块时间为3~5小时;0.1~0.2立方厘米的组织块时间为2~3小时。
当发现蜡杯中有灰尘或组织碎块时应
使其沉淀或过滤后再使用。
浸蜡不透包埋后会出现白色不透明部分,此时需要在浸蜡一次。
6.包埋
包埋就是将已经浸渗好的组织块包埋于浸渗剂中,石蜡包埋法如下。
浸蜡终了时,将预先预热好的和第四杯石蜡相同熔点的石蜡倒入折好的蜡槽内,然后从第四个蜡杯中取出组织块,放入蜡槽内,摆好位置,注意组织切面的摆放方向。
放好组织后可以自然冷却,也可以放入冷水中直接冷却。
7.塑型和切片
取已经包埋好的蜡块,将纸盒拆下,用加热的刀片或解剖刀将其分成若干块（每块组织占一块,用解剖刀将组织块周围多余的石蜡切去,注意不要切到组织。
把有组织的蜡块修成正方形或梯形。
在进行塑型时一定要注意组织块切面的方向。
蜡块塑好后将其粘在小木块上。
注意要粘牢。
最后在木块侧面用铅笔记上组织块名称、编号。
切片时采用手摇连续切片机。
使用切片机进行切片时,将蜡块固定在切片机上,调好距离和所要求的切片厚度,然后用右手摇动手柄,即可进行切片了。
一般来讲生物切片的厚度在5~10微米。
对于切下的切片不要用手去取,因为体温可以使蜡片粘到手上,正确的做法是用毛笔或牙签挑取,然后放在载玻片上进行展片和粘片。
8.展片和粘片
切下的组织蜡片往往带有皱褶,所以在染色前必须进行蜡片的展片和粘片,即把切好的蜡片平整的粘在载玻片上。
展片的温度因石蜡熔点的不同而的不同,一般的56~58℃的石蜡切片℃的温水进行展片,48~52℃的石蜡切片用35℃的温水进行展片。
等到蜡片充分展平后,取一清洁载玻片,载玻片上涂一薄层蛋白甘油,然后在水中捞取蜡片,捞完后将蜡片摆正,放到格盘内,置38℃温箱中烘干,然后即可进行染色。
展片和粘片比较简单容易做,但是如果处理不好则无法进行染色,即使能染上色,组织切片内部的结构也往往被破坏。
9.染色和封固
为了观察组织内部的细微结构,必须应用某些与固定后的原生质有亲合性的染料,对组织进行染色,否则有碍观察。
普通的染色法有两种即苏木紫伊红染色法（简写为H•E染色结果是细胞核为紫色,细胞质为粉红色;另一种方法为铁苏木紫染色（简写为I•A,染色的结果是全部着以深浅不同的蓝色。
苏木紫伊红染色法整个染色过程如下:
取已经干燥的切片,放于盛有二甲苯的染缸内脱蜡10min左右,这个过程称为脱蜡。
脱完蜡后的切片即可进行染色,具体染色过程和时间如下:
（1100%酒精洗去二甲苯2~5min。
（295%酒精2~5min。
（390%酒精2~5min。
（480%酒精2~5min。
（570%酒精2~5min。
（650%酒精2~5min。
（7蒸馏水洗2~5min。
（8苏木紫染液10~20min。
（9普通水洗1min。
（10盐酸酒精分色数秒~半分钟（70%酒精100ml+盐酸1ml,分色到切片为带粉红色后立即取出。
（11自来水冲洗数小时。
镜检切片呈清朗的蓝色,细胞核非常明显。
（12蒸馏水洗1min。
（1350%酒精2~5min。
（1470%酒精2~5min。
（1580%酒精2~5min。
（16伊红酒精溶液对比染色2~5min（95%酒精+0.5g伊红。
（1795%酒精2~5min。
（18无水酒精Ⅰ3min。
（19无水酒精Ⅱ3min。
（20无水酒精加等量二甲苯2min。
（21二甲苯数分钟到透明为止。
（22自二甲苯中取出切片,放在格板内,滴少量的树胶于组织片中央。
（23取一盖玻片,轻轻以盖玻片的一边接近载玻片,然后迅速放下盖玻片,树胶即迅速扩张到四周,校正好盖玻片方向。
将封好的切片放置在恒温箱中干燥。
最后,将干燥好的切片上的浮色擦净,并在玻片的左端粘上标签,注明组织切片的名称、染色方法、固定方法、年月日。
（三药品的配制
1.配制各级浓度的酒精（见下表
所用酒精浓度
欲配酒精浓度
95%90%85%80%75%70%65%60%55%50%
90%6.5
85%13.366.56
80%20.113.796.86
75%29.6621.8914.487.20
70%39.1631.0523.1415.357.64
65%50.6641.5333.0324.6616.378.15
60%63.1653.6544.4835.4426.4717.588.76
55%78.3667.8757.9048.0738.3228.6319.029.47
50%96.1384.7173.9063.0452.4341.7331.2520.4710.35
45%46.0934.4622.9011.41
40%
35%
30%
2.配制各种固定液
常用的固定液为波恩氏（Bouin’s固定液。
配制方法如下:
苦味酸饱和水溶液75ml
甲醛25ml
冰醋酸5ml
3.蛋白胶亦称梅氏蛋白的制作
将鸡蛋一个打破让蛋清流入烧杯内,用筷子充分条大雪花状泡沫,然后将它用双层纱布过滤到量筒中,经数小时或一夜,过滤出透明的蛋白液,此时再加入等量的甘油,稍稍振摇使两者混合,最后加入麝香草酚（thymol（1:
100做防腐作用,可保存几个月到一年。
4.洗液的配制
（四载玻片和盖玻片的清洗方法
新载玻片的洗涤可分别将载玻片逐片投入到洗液中浸泡数小时,取出后先用自来水冲洗干净洗液,然后再用蒸馏水清洗两遍,最后投入95%酒精中备用,用时取出在玻片用干净的纱布擦干即可。
陈旧的切片标本,如再用其载玻片,可将其浸泡在肥皂水中煮30min左右,然后在热水中洗去残留的树胶及浆糊等,用清水冲洗干净放入洗液中浸1h,然后自来水冲洗干净洗液,再用蒸馏水清洗两遍,最后投入95%酒精中备用。
石蜡切片的制作
以石蜡制作的切片,可以制成极薄的切片。
一般的切片厚度要求在4—6微米。
而石蜡切片不但可以达到这个要求,甚至可以切得更薄到2微米以至1微米。
这一点是冰冻切片和火棉胶切片难以获得的结果。
另外,石蜡切片还便于制作大批的或是连续的切片。
而且以石蜡包埋的组织块便于长期保存。
所以石蜡切片是目前各种切片制作方法中最普通常用的一种方法。
一、切片前的准备:
1、恒温水浴锅首先预热至35℃—40℃。
2、蜡块整修,将蜡块组织面的石蜡用刀修去,使组织全部暴露出切面并修平,以减少切片刀的磨损。
将组织块左右两侧的石蜡在不损伤组织及影响诊断的原则上,全部切除;否则切片容易皱褶。
组织块上下边缘的石蜡视组织情况修齐修平;石蜡不须留得过多,应尽量少留,以保持组织间距的最小限度。
这样切下的切片既呈带状,也不弯曲。
片距小,在贴片时就可相应多贴片,有利于检查诊断。
修切蜡块时只能一点一点地切掉蜡边,要是大片修切易使蜡块断裂露出组织;遇此情况应返入新蜡再次包埋。
3.载玻片应事先洗涤干净,无油腻和不透明现象,应将载玻片浸入酸缸内12小时后流水冲洗,再烤干备用。
根据切片需要张数,每片涂上一层极薄的蛋白甘油,插于载片板（或载片架上备用。
蛋白甘油的配制:
取新鲜鸡蛋1份加甘油1份再加适量麝香草酚搅匀。
此法主要是防止脱片,实际上一张很清洁的载玻片不涂蛋白甘油也不会脱片。
4、将锋利的刀片装入切片刀夹钳内,调整角度和位置后随即紧固,检查切片刀的倾斜度是否正确,倾角过大、则切片上卷;倾角过小则切片皱起,以20°-30°为佳。
5、备用小型毛笔、小型无钩镊子、铅笔。
二、切片的步骤:
1、将蜡块固定于切片机头上的夹座内,调整到稍离开切片能够切到的位置上,注意蜡块组织切面与切片刀口要垂直平行。
2、再调整蜡块组织切面恰好与刀口接触,旋紧刀架,固定好机头。
3、根据需要调整切片厚度。
4、摇动切片机手轮先进行修整切片,直到切出完整的最大组织切面后,再进行切制。
5、实践中可用右手转动切片机手轮,左手用毛笔托起蜡片,协调地进行切片操作。
6、切下的切片带,一端用镊子轻轻拉起,应尽可能将切片带拉直展开,用毛笔将切片带从刀口向上挑起,拉下切片带,然后轻拖铺于恒温水面上。
三、切片的注意事项
1、切片质量的好坏,除与技术熟练程度和切片机的好坏有关外,切片刀是决定的因素,所以刀一定要磨得十分锋利。
否则在切片时会自行卷起或皱起,或将组织划伤出现刀痕,更不能顺利地将切片切成连续地长条带状。
切片刀如有缺口存在,将使制成的切片断裂、破碎,不完整,切片时应时时擦净刀口。
2、切片机的各个零件和螺丝应旋紧,否则将会产生震动。
在每次更换蜡块时,应习惯地检查一下组织块是否夹紧,切片刀是否稳固,稍有疏忽就会影响切片质量,甚至将蜡块全部切
坏,造成不可弥补的后果。
在切制切片的开头阶段如出现切制不良与其他故障,最常见的原因是蜡块或切片刀的松动所致。
3、在摇动切片机时,用力要求均匀一致,不宜过重过猛,否则可因用力过重而使机身震动,造成切片厚薄不均。
遇有硬化过度的脑、肝、脾等组织时,更应该轻轻切削,以防组织由于震动形成空洞现象。
4、在夏秋季节进行切片时,应使用冰块加强冷却,这样不仅可保持石蜡的硬度,同时也减少了切片的褶皱,给切片制作带来方便。
四、贴片:
1、将单张或数张切片,用镊子夹住蜡片的一边并提起,铺于恒温水中,（光亮的一面朝下立即用毛笔轻轻拉展以切片无皱褶为最好。
如有皱褶时用镊子细心地逐个轻轻拨开,注意不可拨破组织。
然后分开每张切片,选取其中最完整的,没有皱褶的切片。
2、待切片在恒温水内充分摊开展平后,将载玻片垂直插入水中以涂有蛋白甘油面轻靠切片,并用毛笔将切片一边拨于玻片上,随即将玻片直立提起,趁玻片上仍有少量水份时用毛笔,拨正切片位置。
如组织较小,可在玻片上多贴几片或几排,但排列应密集、整齐。
3、用铅笔在玻片一端的毛玻璃上写上标本编号,字要写得小而清楚、端正。
4、将附贴好的切片置于60℃恒温箱内干燥2小时,蛋白质凝固后即可进行染色。
病理石蜡切片的制作
病理石蜡切片的制作包含两个部分:
石蜡组织块制作和切片制作。
（一石蜡组织块制作
1、取材。
2、固定。
3、脱水、透明及浸蜡（具体步骤见表。
人体尸检、活检及常用实验动物组织脱水、透明及浸蜡时间表
步骤操作项目尸检组织活检组织小鼠大鼠家兔
（160%乙醇无无15min20min30min
（270%乙醇4~10h1~2h15min20min30min
（380%乙醇4~10h1~2h20min30min40min
（490%乙醇4~10h1~2h20min30min40min
（595%乙醇Ⅰ4~10h1~2h20min30min40min
（695%乙醇Ⅱ4~10h1~2h20min20min30min
（7无水乙醇Ⅰ2~4h0.5~1h20min30min40min
（8无水乙醇Ⅱ2~4h0.5~1h20min30min40min
（9二甲苯Ⅰ1~2h15min~0.5h5min8min10min
（10二甲苯Ⅱ0.5~1h15min3min5min5min
（11石蜡Ⅰ0.5~1h0.5~1h10min15min20min
（12石蜡Ⅱ1~2h1~2h20min25min30min
（13石蜡Ⅲ1~2h1~2h30min30min40min
4、包埋
【注意事项】
1.一般实质性脏器的组织及肿瘤组织应把最大切面朝下包埋;食管、胃、肠等组织须将管壁横断面朝下包埋,若在同一蜡块中包埋数块管壁组织时,应平行横埋且黏膜面（内膜的方向应一致,以便切片及观察。
2.同一蜡块包埋多个组织块时,组织的性质应相同,方向要一致,不能把大小、厚薄差别悬殊的组织包埋在一起,组织块间的距离不能太大。
3.皮肤、骨等难切组织及需要连续切片的组织都应单独包埋。
4.神经、脊髓及需要定向包埋的组织应注意组织块的相互关系。
5.包埋（尤其在室温较低的情况下操作应迅速,防止组织块变凉、蜡液凝结及出现气泡,组织块与蜡液不能很好凝固定在一起,导致组织与蜡分离。
6.遇有管腔或空洞标本与小标本同埋一个蜡块时,不能将小标本放入其他标本的管腔或空洞内。
（二石蜡切片制作
用切片机将石蜡包埋的组织块（蜡块制成适宜厚度的切片,是目前在病理学科中最常用的一种制片方法。
切片厚度为一般4~6μm。
【切片前的准备】
1、修切蜡块切片前应先修块,即切去组织周围过多的石蜡,一般留下约2mm宽度的蜡边为宜。
注意蜡块不能留得太窄,在切片时易损坏组织;蜡边不能留得太多,否则影响展片。
室温过高时,可将修好的蜡块放到冰箱中冷却一定时间。
2、切片用品准备
（1切片刀:
预先磨好切片刀备用或切片前更换新的一次性切片。
（2载物片:
载物片经清洁液、95%乙醇处理后备用。
（3展片仪:
加入温水,接通电源,调整温度。
（4其他用品:
准备好毛笔、记号笔、镊子、冰块等。
【切片制作过程】
以使用旋转式切片机石蜡切片为例:
1.将切片刀装在刀架上,后将蜡块装在切片机固定装置上。
调整蜡块与刀至合适位置（刀刃与蜡块切面呈5°夹角
旋转式切片机切取组织,是由下向上切,为得到完整的切片,防止组织出现刀纹裂缝,应将组织硬脆难切的部分放在上端（如皮肤组织,应将表皮部分向上。
而胃肠等组织,应将浆膜面朝上。
2.左手执手笔,右手旋转切片机旋转轮。
先粗切标本,直到暴露出组织最大切面（但对小标本不要修切得太多,以免将整个组织块修切掉。
再连续旋转切出蜡带,左手持毛笔将蜡片带
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