TBSTtaetoweentbe.docx
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TBSTtaetoweentbe
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TBST是什么?
TBST中含有Tris-Hcl,NaCl,tween20这三种物质,是做WESTERNBLOT中常用的一种缓冲溶液
Tris-BufferedSalineandTween20
可作为缓冲液,也可作洗涤液(可用TBST洗NC膜)
TBST洗涤缓冲液的全称试什么?
TBST是TBS+Tween的缩写,TBS是Tris-HCl缓冲盐溶液,为等渗盐溶液加Tris-HCl缓冲液
用1NHCl调pH至7.4,Tween为一种非离子型去污剂,有复性抗原的作用,可提高特异性的识别能力。
用途:
Tris缓冲液不仅被广泛用作核酸和蛋白质的溶剂,还有许多重要用途。
Tris被用于不同pH条件下的蛋白质晶体生长。
Tris缓冲液的低离子强度特点可用于线虫(C.elegans)核纤层蛋白(lamin)的中间纤维的形成。
Tris也是蛋白质电泳缓冲液的主要成分之一。
Tris也被用作滴定标准物。
作为蛋白缓冲液时,若后续工作需要质谱,则不适宜用Tris,最好换成其他质谱仪可耐受的缓冲液。
Tris
中文别名:
三(羟甲基)氨基甲烷;氨丁三醇;缓血酸铵;三羟甲基氨基甲烷;Tris;
英文名称:
Tris(hydroxymethyl)aminoethane
分子式:
C4H11NO3
Tris-HCl缓冲液(0.05mol/L,25℃)
TRIS是一种最常用的生物缓冲液,常配成PH值为6.8,7.4,8.0,8.8。
其PH值随温度变化很大。
温度每升高一度,PH值下降0.03,应注意温度对于Tris的pKa的影响。
。
1MTRIS-HCl6.8和1.5MTRIS-HCl8.8是SDS-PAGE最常用的试剂。
而由TRIS配成的TAE,TBE等是DNA电泳最常用的试剂,TE(PH8.0)主要用于溶解DNA。
TE为Tris加EDTA的合称。
缓冲特性:
Tris为弱碱,在室温(25℃)下,它的pKa为8.1;根据缓冲理论,Tris缓冲液的有效缓冲范围在pH7.0到9.2之间。
Tris碱的水溶液pH在10.5左右,一般加入盐酸以调节pH值至所需值,即可获得该pH值的缓冲液。
衍生缓冲液:
由于Tris缓冲液为弱碱性溶液,DNA在这样的溶液中会被去质子化,从而提高其溶解性。
人们常常在Tris盐酸缓冲液中加入EDTA制成“TE缓冲液”,TE缓冲液被用于DNA的稳定和储存。
如果将调节pH值的酸溶液换成乙酸,则获得“TAE缓冲液”(Tris/Acetate/EDTA),而换成硼酸则获得“TBE缓冲液”(Tris/Borate/EDTA)。
这两种缓冲液通常用于核酸电泳实验中。
吐温为司盘(Span,山梨醇脂肪酸酯)和环氧乙烷的缩合物,为一类非离子型去污剂。
化学名称:
聚氧乙烯失水山梨醇脂肪酸酯,简称聚山梨酯(Polysorbate)。
产品系列:
由于司盘为山梨醇与不同高级脂肪酸所形成的酯,故吐温实际上是同类型的系列产品
吐温20(TWEEN-20)吐温40(TWEEN-40)、吐温60(TWEEN-60)吐温80(TWEEN-80)等等,根据不同的需要来选用。
吐温-80为油酸酯;
制备方法:
山梨醇加热减压蒸馏,蒸出一定水分得失水山梨醇。
将其与油酸酯化,得斯盘80。
然后,将斯盘80与环氧乙烷在碱催化下缩聚,得到吐温80。
吐温-20为月桂酸酯,为聚氧乙烯去水山梨醇单月桂酸酯和一部分聚氧乙烯双去水山梨醇单月桂酸酯的混合物。
生产方法主要采用加成法。
以去水山梨醇单月桂酸酯(司盘20)和环氧乙烷为原料,在氢氧化钠催化剂存在下,进行加成反应而得。
吐温-60为硬脂酸酯;
外观和性状:
淡黄色至琥珀色油状液体或膏状物,溶于水、乙醇、油脂等。
原理:
由于聚山梨酯分子中有较多的亲水性基团一聚氧乙烯基,故亲水性强,为一种非离子型去污剂。
作用与用途:
1.生物学实验中乳化蛋白,在使用时,Tween和同类型的TritonX-1OO(聚乙二醇辛基苯基醚)非离子型去污剂不破坏蛋白的结构,可减少对蛋白质之间原有的相互作用的破坏。
而离子型去污剂如SDS则破坏蛋白的结构。
2.在生物学实验中作封闭剂,封闭剂应该封闭所有未结合位点而不替换膜上的靶蛋白、不结合靶蛋白的标委、也不与抗体或检测试剂有交叉反应。
Tween-20有复性抗原的作用,可提高特异性的识别能力。
在做westenblot时,用惰性蛋白质或非离子去污剂封闭膜上的未结合位点,可以降低抗体的非特异性结合。
最常见的封闭剂是BSA、脱脂奶粉、酪蛋白、明胶和Tween-20(0.05–0.1%)稀溶液。
3.常作为水包油(O/W)型乳化剂,使其他物质均匀在溶液中分散,主要用于农药、食品、化妆品。
相对来说,吐温20更温和一些,吐温80的乳化性更强一些。
4.药用:
(1)可作某些药物的增溶剂。
(2)有溶血作用,以吐温-80作用最弱。
(3)水溶液加热后可产生混浊,冷后澄明,不影响质量。
(4)在溶液中可干扰抑菌剂的作用。
TritonX-100(聚乙二醇辛基苯基醚)是一种非离子型表面活性剂(或称去污剂)。
它能溶解脂质,以增加抗体对细胞膜的通透性。
免疫细胞化学中TritonX-100常用浓度为1%和0.3%,其中1%的TritonX-100常用于漂洗组织标本,0.3%的TritonX-100则常用于稀释血清,0.1%的TritonX-100常用于LAMP(环介导等温扩增),配制BSA等。
但通常是先配制成30%的TritonX-100储备液,临用时稀释至所需浓度。
单去污剂裂解液:
1mol/LTris·HCl(pH8.0)2.5ml
NaCl0.438g
TritonX-1000.5ml
蒸馏水至50ml
混匀后4℃保存。
使用时,加入PMSF至终浓度为100μg/ml(0.87ml裂解液加入1.74mg/mlPMSF50μl)。
(一般实际用的比较多的其实是RIPA裂解配方:
50mMTris-HClpH7.4、150mMNaCl、1mMPMSF、1mMEDTA、1%Tritonx-100、1%脱氧胆酸钠、0.1%SDS)
2:
裂解细胞的步骤:
常规胰酶消化
将胰酶吸出
加入培养基将细胞吹打起来
将细胞收集到EP管中,离心2000r/min,5min。
用PBS洗三次,离心同上,弃上清
加入细胞裂解液(视细胞的数量而定,一般每孔100~150ul)
冰上孵育5~10min,离心12000r/min,5min,收集上清。
3:
triton-X100
TritonX-100浓缩物由SPISupplies供应,应用领域遍及电子和光学显微镜、组织学、清洁剂。
分子式:
C14H22O(C2H4O)n乙烯氧基单位平均值为每分子9或10
CASNO:
9002-93-1
同义词:
辛基苯酚、聚氧乙烯辛基苯基醚
外观:
液体
可溶解于:
水、乙烷基异丙醇、甲苯、二甲苯和多数含氯溶液
pH值6.0至8.0;5%的水溶液.
30%TritonX-100的配制
试剂
TritonX-10028.2ml
0.1mol/LPBS(pH=7.3)或0.05mol/lTBS(pH=7.4)72.8ml
配制方法
取TritonX-100及PBS(或TBS)混合,置37℃~40℃水浴中2~3h,使其充分溶解混匀。
用前取该储备液稀释至所需浓度。
在生命科学领域,该产品经常被用于水中帮助分解蛋白酶;但是,必须使用尽可能低的浓度否则会污染样品,污染还会影响MS分析。
基因工程中还用作限制性内切酶的缓冲液(NEBufferEcoRI)的成分之一配比:
50mMNaCl,100mMTris-HCl,10mMMgCl2,0.025%TritonX-100(pH=7.5;T=25℃)
该产品通常还作为聚合乳液的配方使用。
环氧乙烷分子结构示意图
环氧乙烷是一种有机化合物,化学式是C2H4O,是一种有毒的致癌物质,以前被用来制造杀菌剂。
环氧乙烷易燃易爆,不易长途运输,因此有强烈的地域性。
被广泛地应用于洗涤,制药,印染等行业。
在化工相关产业可作为清洁剂的起始剂。
【不良反应】环氧乙烷对人及动物的毒性高于四氯化碳和氯仿[1],和氨气相似。
本品对眼、呼吸道有腐蚀性,可导致呕吐、恶心、腹泻、头痛、中枢抑制、呼吸困难、肺水肿等,还可出现肝、肾损害和溶血现象。
皮肤过度接触环氧乙烷液体或溶液,产生灼烧感,出现水疱、皮炎等,若经皮吸收可能出现系统反应。
环氧乙烷属烷基化剂,有致癌可能。
以C2H4和O2为原料经Ag催化制得
广义上讲,也就从化学讲,对于所有蛋白质,刚才说的现象的原因就是高温会使蛋白质的结构改变,因此蛋白质就失去功能,这是不可逆的过程,而低温不会引起结构改变。
能使蛋白质变性,也就是使其结构改变,彻底失去功能的除了高温外还有一个就是重金属盐或重金属离子,什么铜啊银啊铅啊等等,这些重金属组成的化合物如CuSO4等都会使蛋白质失去活性,因此如果误服重金属盐会破坏人体组织细胞,重则性命垂危,要及时吃下其他富含蛋白质的东西缓解,如牛奶。
这里又有易错点,就是口服硫酸钡(BaSO4),或者叫钡餐,是不会中毒的,因为这东西难溶,即使在胃酸作用下也不会溶解,因此不会危害人体,所以医院常用它做显影剂,吃下去后用X光照胃部就能得到更清晰的影像。
DTT即Dithiothreitol,中文名为二硫苏糖醇。
分子式为C4H10O2S2,分子量为154.25,纯度>99%。
常用还原剂,有抗氧化作用,进口分装。
DTT和巯基乙醇相比,作用相似,但DTT的刺激性气味要小很多,毒性也比巯基乙醇低很多。
而且DTT比巯基乙醇的浓度低7倍时,两者效果相近,但DTT价格略高一些。
还原性
DTT是一种很强的还原剂,其还原性很大程度上是由于其氧化状态六元环(含二硫键)的构象稳定性。
它的氧化还原电势在pH为7时为-0.33伏。
应用
DTT的用途之一是作为巯基化DNA的还原剂和去保护剂。
巯基化DNA末端硫原子在溶液中趋向于形成二聚体,特别是在存在氧气的情况下。
这种二聚化大大降低了一些偶联反应实验(如DNA在生物感应器中的固定)的效率;而在DNA溶液中加入DTT,反应一段时间后除去,就可以降低DNA的二聚化。
DTT也常常被用于蛋白质中二硫键的还原,可用于阻止蛋白质中的半胱氨酸之间所形成的蛋白质分子内或分子间二硫键。
但DTT往往无法还原包埋于蛋白质结构内部(溶剂不可及)的二硫键,这类二硫键的还原常常需要先将蛋白质变性(高温加热或加入变性剂,如6M盐酸胍、8M尿素或1%SDS)。
反之,根据DTT存在情况下,二硫键还原速度的不同,可以判断其包埋程度的深浅。
特点
由于容易被空气氧化,因此DTT的稳定性较差;但冷冻保存或在惰性气体中处理能够延长它的使用寿命。
由于质子化的硫的亲核性较低,随着pH值的降低,DTT的有效还原性也随之降低;而Tris(2-carboxyethyl)phosphineHCl(TCEP盐酸盐)可以作为低pH值条件下DTT的替代品,而且也比DTT更为稳定。
1mol/L二硫苏糖醇(DTT)溶液
【配制方法】用20ml0.01mol/L乙酸钠溶液(pH5.2)溶解3.09gDTT,过滤除菌后分装成1ml小份贮存于-20℃。
【注意】DTT或含有DTT的溶液不能进行高压处理。
缓冲液在电泳过程中的一个作用是维持合适的pH。
电泳时正极与负极都会发生电解反应,正极发生的是氧化反应(4OH--4e->2H2O+O2),负极发生的是还原反应(4H++4e->2H2),长时间的电泳将使正极变酸(电子跑掉,正极带+),负极变碱(电子向负极移动,负极带-)。
注:
+和-在此电脑键盘上是“第三选择”,要打出需按fn键而不是shift,shift是键盘上的第二选择
一个好的缓冲系统应有较强的缓冲能力,使溶液两极的pH保持基本不变:
电泳缓冲液的另一个作用是使溶液具有一定的导电性,以利于DNA分子的迁移,例如,一般电泳缓冲液中应含有0.01-0.04mol/L的Na+离子,Na+离子的浓度太低时电泳速度变慢;太高时就会造成过大的电流使胶发热甚至熔化。
电泳缓冲液还有一个组分是EDTA,加入浓度为1-2mmol/L,目的是螯合Mg2+等离子,防止电泳时激活DNA酶,此外还可防止Mg2+离子与核酸生成沉淀。
TAE是使用最广泛的缓冲系统。
其特点是超螺旋在其中电泳时更符合实际相对分子质量(TBE中电泳时测出的相对分子质量会大于实际分子质量),且双链线状DNA在其中的迁移率较其他两种缓冲液快约10%,电泳大于13kb的片段时用TAE缓冲液将取得更好的分离效果,此外,回收DNA片段时也易用TAE缓冲系统进行电泳。
TAE的缺点是缓冲容量小,长时间电泳(如过夜)不可选用,除非有循环装置使两极的缓冲液得到交换。
50×TAEBuffer配制方法:
1。
称量Tris242g,Na2EDTA.2H2O37.2g于1L烧杯中;
2。
向烧杯中加入约800ml去离子水,充分搅拌均匀;
3。
加入57.1ml的冰乙酸,充分溶解;
4。
用NaOH调pH至8.3,加去离子水定容至1L后,室温保存。
使用时稀释50倍即1×TAEBuffer
Tris-乙酸(TAE)
使用液
1X:
0.04mol/LTris-乙酸
0.001mol/LEDTA
储存液
50X:
242gTris碱
57.1ml冰乙酸
100ml0.5mol/LEDTA(pH8.0)
TBE的特点是缓冲能力强,长时间电泳时可选用TBE,并且当用于电泳小于1kb的片段时分离效果更好。
TBE用于琼脂糖凝胶时易造成高电渗作用,并且因与琼脂糖相互作用生成非共价结合的四羟基硼酸盐复合物而使DNA片段的回收率降低,所以不宜在回收电泳中使用。
Tris-硼酸(TBE)
使用液
0.5X:
0.045mol/LTris-硼酸
0.001mol/LEDTA
储存液
5X:
54gTris碱
27.5g硼酸
20ml0.5mol/LEDTA(pH8.0)
TPE的缓冲能力也较强,但由于磷酸盐易在乙醇沉淀过程中析出,所以也不宜在回收DNA片段的电泳中使用。
分离胶配制过程中的缓冲液是PH8.8的Tris-Hcl
浓缩胶配制过程中的缓冲液是PH6.8的Tris-Hcl
电泳缓冲液是加入电泳槽的,Tris-甘氨酸缓冲液。
样品缓冲液就是loadingbuffer,处理蛋白样品的,是SDS缓冲液,需要加入Tris-Hcl,DTT,SDS,溴酚蓝和甘油。
分离胶缓冲液是配制分离胶的tris-hclph8.8。