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工作报告之对流免疫电泳实验报告

 

对流免疫电泳实验报告

【篇一:

实验十一免疫电泳】

 

免疫电泳技术

抗原与抗体的结合在沉淀反应中,呈一定的分子比例。

不同抗原和抗体之间的分子比例是不同的,但只有在分子比例合适时,才出现可见的沉淀。

所以沉淀能否出现并不完全反映抗原和抗体是否存在和发生结合。

抗原结合多个抗体分子,称抗原为多价;抗体一般只

能结合两个抗原分子(igm类抗体分子通常可以结合5个抗原分子)的抗原决定法簇,故为二价。

只有在彼此的结合价饱和时,才出现

大量的抗原-抗体复合物沉淀。

当抗原与抗体的比例合适时,即二者结合价彼此饱和,就可形成网状结构的大分子抗原-抗体复合物沉淀,称为等价带。

若比例不合适时,抗体或抗原过量,则虽有抗原、抗体的结合,但不能大量形成网状结构的大分子复合物,沉淀量很少,甚至不出现沉淀。

在抗原、抗体数量关系曲线中,抗体过剩区域称为抗体过剩带,抗原过剩区域称为抗原过剩带。

如图1所示,在等价带的反应液中加入过量的抗原或抗体,沉淀复合物就会有部分溶解,甚至全部溶解的现象。

这是由于新加入的抗原或抗体竞争地结合相应的抗体或抗原,使网状大分子结构破坏,形成小分子复合物,致使沉淀出现溶解,沉淀量减少甚至完全消失。

在沉淀反应中,由于抗原过量而不出现沉淀的现象,称为前带现象。

此时不能误认为无沉淀就是无抗原存在,为了检测就必须稀释抗原。

抗体过量时,称为后带现象,同理需要稀释抗体进行检测。

 

图1的位置

抗原与抗体的结合是依赖于两者分子结构的互补性,故其特异性高。

这种结合也是相当稳定的。

在一定条件下(过酸、过碱或浓盐存在下),二者可以分开,即结合是可逆的。

解离后的抗原、抗体的活性一般保持不变。

双向免疫扩散测定法

原理

双向扩散法(doublediffusion)又称琼脂扩散法,是利用琼脂凝胶为介质的一种沉淀反应。

琼脂或琼脂糖凝胶是多孔的网状结构,大分

子物质可以自由通过,这种分子的扩散作用可使

 

分别处于两处的抗原和相应的抗体通过扩散相遇,形成抗原-抗体复合物,比例合适时出现沉淀。

由于凝胶透明度高,可直接观察到复

合物的沉淀线(弧)。

沉淀线(弧)的特征与位置取决于抗原相对分子质量的大小,分子结构、扩散系数和浓度等因素。

当抗原、抗体存在多种系统时,会出现多种沉淀线(弧)。

依据沉淀线(弧)可以定性抗原,诊断疾病。

此法操作简单,灵敏度高,是最为常用的免疫学测定抗原和抗血清效价的方法。

操作方法

(一)制备离子琼脂板

用10ml量筒,量取4ml融化的巴比妥离子琼脂,倒在玻璃片上,待琼脂凝固后,按图2所示的方法打孔。

图2的位置

打空后用注射器针头将孔内琼脂挑出,在酒精灯上烘烤背面,使琼

脂与玻璃板贴紧。

(二)稀释抗原和抗体

采用2倍连续稀释法。

将抗原与抗体按2的等比级数即20、21、22、23?

方式连续稀释。

方法是取试管数支,各加入稀释液(生理盐水)

一份,在于第一管中加入抗原或抗体一份,用吹吸法混匀后,吸出

一份加入第二管中,如此依次稀释到最后一管。

其稀释倍数依次是:

2,4,8?

(三)加样

将稀释好的抗原或抗体依次加入外周孔中,中心孔加入相应的抗体或抗原,加入的量以平琼脂表面为度或用微量进样器定量加入。

加样后置大培养皿内(皿内放有湿滤纸或湿纱布以维持湿度)。

盖好

皿盖,于24—37℃温箱内保温24—48小时。

扩散后可出现清晰的沉淀线,以出现沉淀线的抗体稀释倍数最高的一孔为被测抗体的效价。

(四)染色及保存

经染色后可提高沉淀线的可见度。

1.漂洗琼脂板:

将琼脂板置生理盐水中浸泡两天,每天更换生理盐水2次以洗去未结合的抗原或抗体。

生理盐水浸泡后,更换蒸馏水浸泡1天,换水2次以除去盐分。

琼脂板较脆易破,操作需小心。

2.干燥:

取出琼脂板,覆盖滤纸片,于室温自然干燥或吹干、烘干。

3.染色:

将琼脂板置于染色剂(0.05%氨基黑10b)中浸泡,约5分钟(*注意观察染色深度),再加5%的乙酸浸泡以脱去背景颜色

 

为度。

脱色后滴加少量5%的甘油至琼脂板上,置室温干燥保存。

欲取下琼脂薄膜,则需在干燥前浸泡在10%的甘油中(或在染色剂、脱色剂中加10%甘油),烘干后轻轻去下薄膜。

本实验用琼脂糖效果最好,琼脂粉次之,琼脂所含杂质较多时,制出的琼脂凝胶板透明度较差,影响沉淀线的观测、且重复性差,必须做净化处理后方可使用。

琼脂凝胶和玻璃片结合不紧密,样品可从样品孔下泄漏;在观察、漂洗时凝胶易于脱落。

为防止上述现象,可将玻璃板进行处理,方法是用0.1%~0.2%琼脂均匀

涂布在玻璃板上,自然干燥后再进行双向扩散实验。

在抗原、抗体单一体系中,抗原浓度不同,沉淀线特征不同。

如图

3所示

图3的位置

抗原与抗体之间相对浓度不同,出现的沉淀线特征亦不同,如图

4

所示

在抗原、抗体多种体系中,抗原与相应抗体出现的沉淀线有多条,

彼此互部干扰,如图

5所示

图4

图5

试剂和器材

1.1.5%离子琼脂

(1)琼脂的净化:

高度净化的琼脂,买来即可使用,如果不纯则需要净化处理。

取30克优质琼脂加,加热至琼脂全部融化,即成3%的

琼脂。

三、四层纱布热过滤,滤液流入一个搪瓷盘内,凝固后,切成1cm

见方的小块,放在大容器中,将自来水同到容器底部,流水冲洗3

天。

冲洗时于容器上捆好一层纱布,以防琼脂块顺水冲走。

然后用

蒸馏水浸泡2~3天,每天换水2~3次。

琼脂块净化后即浸没于蒸馏水中,加万分之一的硫柳汞防腐,置冰箱中保持待用。

(2)巴比妥离子琼脂的制备:

离子强度0.06,ph8.6缓冲液:

取10.3g巴比妥

取净化的3%

的琼脂块,加热融化后加入等体积的离子强度

0.06,

ph8.6的巴比妥缓冲液,加热混匀,即成为离子强度

0.03,ph8.6,

1.5%巴比妥离

 

子琼脂。

在制备离子琼脂时,可在琼脂中加入万分之一的硫柳汞防腐。

琼脂中的缓冲液,其离子强度最好比电极槽中的低1/2,这样可以避免在电泳时因电流过大引起琼脂变形(凸凹不平)。

2.

3.

4.

器材

1.

2.

3.

4.

5.

6.

微量免疫电泳

原理

免疫电泳法(immunoelectrophoresis)是把蛋白质电泳分离技术(琼脂电泳)和免疫学检测方法(双向扩散)结合起来的检测方法。

它提高了分辨率和灵敏度,是很理想的分离和鉴定蛋白质混合物的

方法。

微量免疫电泳所用的样品和抗血清较少,而且测定时间短,灵敏度高,因此应用比较广泛。

在倒有离子琼脂的饿玻璃片的中心挖一长槽,槽的两侧个挖一个圆孔,孔内加入待测样品,如图6a所示。

电泳时,样品中各蛋白质的等电点不同,其带电性质各异,因而

被分离成几个区带(如图6b所示)。

电泳后在中央槽中加入相应抗

清,置37℃扩散。

被分离的蛋白质与相应抗体形成大小不同、深浅各

异的沉淀弧(如图6c、d所示)。

一般情况下,每一沉淀弧即代表蛋

白质混合液中的一种成分,以此定性或半定量。

图6

操作方法

(一)制备离子琼脂板

 

将前述实验的离子琼脂加热融化,取4ml倒在玻璃板上,凝固后按图7所示打孔和打槽,用注射器针头将孔内琼脂挑出。

槽内琼脂在电泳分离以后在挑出,以免电泳时横槽变形影响双向扩散。

图7

(二)电泳

于两个电泳槽中防入离子强度为0.06,ph8.6的巴比妥缓冲液。

将琼脂板平置于两个电极槽之间,为使电路连通,于缓冲液的液面到

琼脂板之间,用单层滤纸或纱布搭桥形成通路,接通电源加10v电压,用小滴管取样品注入琼脂板孔内,假样量与孔平或稍少,调电

压至100~150v,通电40~60分钟,当血清中色素泳动到距边缘约1.5cm时,断电,取出琼脂板,用注射器针头将横槽中的琼脂挑出,

加抗血清,水平置于湿盒(或培养皿中),于37或24进行双向扩

散24-48小时后,取出观察实验结果。

(三)染色

参看双向免疫扩散法实验。

在免疫电泳实验中的琼脂电泳分离法,可用其他蛋白电泳技术代替,

如聚丙烯酰胺凝胶电泳、等电点聚焦电泳法等。

电泳后切下相应的胶带置于玻璃板上,倒上离子琼脂。

当凝胶与胶带紧密帖在一起并凝固后,在距胶带约0.5cm处打横槽,

挑出琼脂,加抗血清进行双向扩散。

由于不同电泳方法对蛋白质抗原的浓度要求不同,要根据抗原、抗体沉淀反应的合适比例稀释抗血清。

沉淀弧的曲度大,说明该种蛋白质的含量较高,电泳时扩散也较为严重之故。

曲度对称说明蛋白质分子均一,不对称似直线或直线上有小弧,说明蛋白质分子不均一。

电泳时一般稳压在100~150v范围,电流可用凝胶板两侧滤纸桥的层数加以调节,一般一层滤纸即可,电流过大致使凝胶发热,水分蒸发快,影响电泳效果。

凝胶中缓冲液浓度为电极缓冲液的一半,这样可减少电流的作用,也可增加蛋白质的泳动速度。

要根据样品鉴定的不同要求,选择抗血清。

检测蛋白质混合液(如血清或组织粗提液)中所需成分的存在及多寡,需用纯样品制备的抗血清和用混合液制备的抗血清对照检测,如图8。

【篇二:

免疫实验考试复习】

 

实验复习题

 

一、选择题:

1.夹心elisa法检测hbsag时,用于包被固相载体的物质是:

c

a.纯化的hbsagb.

酶标记的hbsagc.

纯化的hbsab

d.酶标记的hbsabe.

辣根过氧化物酶

2.间接elisa法检测hbsab时,用于包被固相载体的物质是:

a

a.纯化的hbsagb.

酶标记的hbsagc.

纯化的hbsab

d.酶标记的hbsabe.

辣根过氧化物酶

3.血型鉴定实验时,待检红细胞悬液与抗

a抗体混合发生凝集,与

抗b抗体混合未发生凝集,则待检血的血型是:

a

a.a型b.b型c.ab型年d.o型e.不能确定

4.血型鉴定实验时,待检红细胞悬液与抗

a抗体混合不发生凝集,

与抗b抗体混合发生凝集,则待检血的血型是:

b

a.a型b.b型c.ab型年d.o型e.不能确定

5.不属于人工主动免疫制剂的是(c)

a.乙肝疫苗b.白喉类毒素c.破伤风抗毒素d.百日咳疫苗e.脊髓灰质炎疫苗

6.不属于人工被动免疫制剂的是(e)

a.破伤风抗毒素b.血浆免疫球蛋白c.胎盘免疫球蛋白d.静脉注射用免疫球蛋白e.白喉类毒素

二、填空:

对流免疫电泳实验,电泳时抗原端接

三、名词解释

 

阴极,抗体端接阳极。

1.沉淀反应(precipitationreaction)

毒素、组织浸液及血清中的蛋白等可溶性抗原与相应抗体反应后,

出现肉眼可见的沉淀物。

2.凝集反应(agglutinationreaction)

细菌、细胞等颗粒性抗原或表面包被抗原的颗粒状物质与相应的抗

体在电解质存在的条件下结合,出现肉眼可见的凝集团现象。

3.免疫标记技术(immunolabelingtechniques)

是将抗原抗体反应与标记技术相结合,以检测抗原或抗体的一类试验方法。

4.人工主动免疫(artificialactiveimmunization)

用疫苗接种机体,使之产生特异性免疫,从而预防干扰的措施。

5.人工被动免疫(artificialpassiveimmunization)

 

是给人体注射含特异性抗体的免疫血清或细胞因子等制剂,以治疗或紧急预防感染的

措施。

四、问答题

1.简述e-花环试验的基本原理。

人T细胞膜上具有能与绵羊红细胞(srbc)上lfa-3(淋巴细胞功能相关抗原-3)结合的受体(E受体,即cd2分子)。

srbc与T细胞

在含有血清的平衡盐水中结合,形成以T细胞为中心,四周环绕srbc,状如环瑰花环细胞集团,故称E花环试验。

2.简述cdc试验的基本原理。

细胞表面抗原与相应抗体特异结合所形成的免疫复合物,通过经典

途径激活补体而导致细胞膜穿孔。

因此水溶性染料如台盼蓝进入受损细胞,染成蓝色,为阳性反应;不带相应抗原的细胞。

未受伤,不染色,为阴性反应。

3.简述elisa的基本原理。

先将已知抗体包被在固相上,洗去未吸附的抗体;加入待检标本,

充分作用后,标本中相应的抗原与固相上已知抗体结合,洗去未结合的抗原成分;加入已知的酶标抗体,再洗去未结合的酶标抗体;加底物后,酶分解底物后产生呈色反应。

【篇三:

常见免疫学试验技术】

 

免疫学实验

实验一与免疫相关的细胞形态的观察

目的要求:

观察与免疫相关的几种细胞的形态,了解它们在机体免疫反应中的作用。

实验器材:

显微镜

血液涂片(瑞氏染色)

结缔组织切片

方法:

油镜观察

一.血涂片的观察

(a)红细胞:

淡红色,无核的圆形细胞,因红血球为双凹形,故边缘部分染色较深,中心较浅,直径7—8微米。

(b)颗粒白血球

 

嗜中性颗粒白血球:

体积略大于红细胞,细胞核被染成紫色分叶状,可分1—5叶,核叶之间联以染色质细丝,染色质染成粉色,其中充

满细小的大小均匀的颗粒被染成紫红色。

直径10—12微米。

嗜酸性颗粒白血球:

略大于嗜中白血球,细胞核染成紫色,通常为

2叶,胞质充满嗜酸性大圆颗粒,被染成鲜红色。

直径10—15

 

微米。

嗜碱性颗粒白血球:

体积略小于嗜酸性白血球,细胞质中有大小不

等被染成紫色颗粒,颗粒数目较嗜酸性白血球的颗粒少,核为1—2叶染成淡兰色。

直径10—11微米。

1

(c)无颗粒白血球

淋巴细胞:

涂片中可观察到中、小型两种。

小淋巴细胞与红血球大小相似,圆形。

其中含致密的核,染成深紫色。

周围仅有一薄层嗜硷性染成淡蓝的细胞质。

中淋巴细胞较大,有较宽层的细胞,核圆形。

6-8微米。

单核细胞:

体积最大,细胞圆形。

胞质染成灰蓝色。

核呈肾形或马

蹄形,染色略浅于淋巴细胞的核。

直径14-20微米。

二.肥大细胞的观察(示教)

胞体较大,呈卵圆形,胞质内充满粗大均等的嗜硷性颗粒。

其中含肝素、组织胺等物质。

常成群地分布于血管的周围。

三.浆细胞的观察(示教)

细胞呈圆形或卵圆形,胞质丰富,呈嗜硷性。

核圆形,着色深,多偏于细胞的一侧,染色质核膜呈车轮分布。

正常组织浆细胞少,慢性炎症时增多。

浆细胞合成和分泌抗体,对免疫有重要意义。

四.巨噬细胞:

又称组织细胞,细胞形态不规则。

常伸出短而钝突起,有很强的吞噬能力。

附:

瑞特氏染色:

1.染色液配置

称取瑞特氏染料0.1克溶于60ml甲醇中,过滤。

贮褐色瓶中备用。

(配置时,要先将瑞特氏染料置研钵体内边研边滴加甲醇,使染料

溶液得更好。

2.瑞特氏染色法:

取小鼠骨动脉血,涂制玻片。

干后用玻璃笔在涂处之两侧划线(限

制染液流掉)。

于划线内部滴加染液3-4滴,经3-5分钟后,再滴加

 

等量的蒸馏水,轻轻晃动混合。

经5分钟后,用蒸馏水洗净,待干后用油镜检查。

2

实验二沉淀反应

可溶性抗原与相应的抗体混合,在电解质存在的条件下,两者比例

适合,即可有沉淀物出现,叫沉淀反应(precipitation).由于沉淀反应抗原多系胶体溶液。

沉淀物主要是由抗体蛋白所组成。

为了求得抗原与抗体的适宜比例,保证有足够的抗体,而且抗原分子小,具有较大的反应面积,因此操作上通常是稀释抗原,不稀释抗体。

沉淀反应的种类有环状沉淀、絮状沉淀、荚膜膨胀、琼脂扩散及免疫电泳等。

此外还有放射性同位素标记、酶标记等测定法。

(一)环状沉淀反应

当抗原与相应抗体形成一个接触面时,如二者比例适当,接触面上可形成一个乳白色的环状物即为阳性沉淀反应。

材料:

1.

2.

3.免疫血清:

免疫兔抗人血清抗原:

人血清小沉淀管、毛细吸管、橡皮头、生理盐水。

方法:

1.取小沉淀管2只,以毛细吸管吸取抗人血清约0.2毫升,加入第一管,加时注意不能有气泡。

2.

3.以毛细吸管吸取生理盐水0.2毫升加入第二管。

用毛细吸管吸入血稀释0.2毫升加入各管,加时应注意使抗原溶液缓缓由管壁流下,轻浮于血清面上,使成一明显界面,切勿使之相混。

4.

性。

置室温中10—20分钟,观察液面有无乳白色沉淀环,若有则为阳

3

(二).琼脂扩散试验

琼脂扩散是抗原抗体在凝胶中所呈现的一种沉淀反应。

抗体在含有电解质的琼脂凝胶中相遇时,便出现可见的白色沉淀线。

这种沉淀线是一组抗原抗体的特异性复合物。

如果凝胶中有多种不同抗原抗体存在时,便依各自扩散速度的差异,在适当部位形成独

 

立的沉淀线,因此广泛地用于抗原成分的分析。

琼脂扩散试验可根据抗原抗体反应的方式和特性分为单向免疫扩散、双向免疫扩散、免疫电泳、对流免疫电泳、单向及双向火箭电泳试验。

(1)

材料:

1

.诊断血清(抗体:

抗人igg或iga免疫血清)

2

.待检血清(抗原):

人血清

3

.参考血清:

全国统一人血清免疫球蛋白参考血清(批号不同,免

疫球蛋白含量不同)。

4

.其它:

生理盐水、琼脂粉、微量进样器、打孔器、玻璃板、湿盒

等。

方法:

1

.将适当稀释(事先滴定)的诊断血清与予溶化的2%琼脂在60℃

水浴预热数分钟后等量混合均匀制成免疫琼脂板。

2

.在免疫琼脂板上按一定距离(1.2—1.5厘米)打孔,见图1。

单向琼脂扩散试验

图1单向琼脂扩散试验抗原孔位置示意图

1-5孔加参考血清,6-7孔加待检血清

4

3

.向孔内滴加1:

2,1:

4,1:

8,1:

16,1:

32稀释的参考血

清及1:

10稀释的待检血清,每孔

10微升,此时加入的抗原液面应

与琼脂板一平,不得外溢。

4

.已经加样的免疫琼脂板置湿盒中

37℃温箱扩散24小时。

5

.测定各孔形成的沉淀环直径(mm),用参考血清各稀释度测定值绘

出标准曲线,再由标准曲线查出被检血清中免疫球蛋白的含量。

(2)

材料:

1.诊断血清:

兔抗人血清

2.待测血清:

人血清

3.阴性对照血清

4.其它:

生理盐水、琼脂粉、载玻片、打孔器、微量进样器等。

方法:

1.取一清洁载玻片,倾注3.5—4.0毫升加热熔化的1%食盐琼脂制成琼脂板。

2.凝固后,用直径3毫米打孔器,孔间距为5毫米。

孔的排列方式如图2所示。

 

双向琼脂扩散试验

图2双向琼脂扩散原抗体孔位置示意图

3.用微量进样器于中央孔加抗体,于周围孔加各种抗原。

加样时勿使样品外溢或在边缘残存小气泡,以免影响扩散结果。

4.加样后的琼脂板收入湿盒内置37℃温箱中扩散24—48小时。

5

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