微生物限度法Word文件下载.docx

微生物限度法Word文件下载.docx

《微生物限度法Word文件下载.docx》由会员分享，可在线阅读，更多相关《微生物限度法Word文件下载.docx（14页珍藏版）》请在冰豆网上搜索。

常用的供试液制备方法如下。

如果下列供试液制备方法经确认均不适用，应建立其他适宜的方法。

5.3.1.1水溶性供试品：

取供试品，用pH7.0无菌氯化钠-蛋白胨缓冲液，或pH7.2磷酸盐缓冲液，或胰酪大豆胨液体培养基溶解或稀释制成1:

10供试液。

若需要，调节供试液pH值至6～8。

必要时，用同一稀释液将供试液进一步10倍系列稀释。

水溶性液体制剂也可用混合的供试品原液作为供试液。

5.3.1.2水不溶性非油脂类供试品：

取供试品，用pH7.0无菌氯化钠-蛋白胨缓冲液，或pH7.2磷酸盐缓冲液，或胰酪大豆胨液体培养基溶解或稀释制成1：

分散力较差的供试品，可在稀释液中加人表面活性剂如0.1%的聚山梨酯80，使供试品分散均匀。

必要时也可置水浴中适当加温使供试品分散均匀。

5.3.1.3油脂类供试取供试品：

取供试品，加人无菌十四烷酸异丙酯使溶解，或与最少量并能使供试品乳化的无菌聚山梨酯80或其他无抑菌性的无菌表面活性剂充分混匀。

表面活性剂的温度一般不超过40℃（特殊情况下，最多不超过45℃），小心混合，若需要可在水浴中进行，然后加人预热的稀释液使成1：

10供试液，保温，混合，并在最短时间内形成乳状液。

必要时，用稀释液或含上述表面活性剂的稀释液进一步稀释成10倍系列稀释。

5.3.2抗菌活性的去除或灭活

供试液接种后，按“微生物回收”规定的方法进行微生物计数。

若试验组菌落数减去供试品对照组菌落数的值小于菌液对照组菌落数值的50%，可采用下述方法消除供试品的抑菌活性。

5.3.2.1增加稀释液或培养基体积。

5.3.2.2加人适宜的中和剂或灭活剂。

中和剂或灭活剂（见表1：

常见干扰物的中和剂或灭活方法）可用于消除干扰物的抑菌活性，最好在稀释液或培养基灭菌前加入。

若使用中和剂或灭活剂，试验中应设中和剂或灭活剂对照组，即取相应量稀释液替代供试品同试验组操作，以确认其有效性和对微生物无毒性。

中和剂或灭活剂对照组的菌落数与菌液对照组的菌落数的比值应在0.5～2范围内。

表1常见干扰物的中和剂或灭活方法

干扰物

可选用的中和剂或灭活方法

戊二醛、汞制剂

亚硫酸氢钠

酚类、乙醇、醛类、吸附物

稀释法

醛类

甘氨酸

季铵化合物、对羟基苯甲酸、双胍类化合物

卵磷脂

季铵化合物、碘、对羟基苯甲酸

聚山梨酯

水银

巯基醋酸盐

水银、汞化物、醛类

硫代硫酸盐

EDTA、唆喏酮类抗生素

镁或钙离子

磺胺类

对氨基苯甲酸

β-内酰胺类抗生素

β-内酰胺酶

5.3.2.3采用薄膜过滤法。

5.3.2.4上述几种方法的联合使用。

若没有适宜消除供试品抑菌活性的方法，对特定试验菌回收的失败，表明供试品对该试验菌具有较强抗菌活性，同时也表明供试品不易被该类微生物污染。

但是，供试品也可能仅对特定试验菌株具有抑制作用，而对其他菌株没有抑制作用。

因此，根据供试品须符合的微生物限度标准和菌数报告规则，在不影响检验结果判断的前提下，应采用能使微生物生长的更高稀释级的供试液进行计数方法适用性试验。

若方法适用性试验符合要求，应以该稀释级供试液作为最低稀释级的供试液进行供试品检査。

5.4计数方法

计数方法一般为平皿法、薄膜过滤法。

供试品检查时，应根据供试品理化特性和微生物限度标准等因素选择计数方法，检测的样品量应能保证所获得的试验结果能够判断供试品是否符合规定。

所选方法的适用性须经确认。

5.4.1平皿法

平皿法包括倾注法和涂布法。

除另有规定外，取规定量供试品，按方法适用性试验确认的方法进行供试液制备和菌数测定，每稀释级每种培养基至少制备2个平板。

5.4.1.1倾注法：

取照上述“供试液的制备”和“抗菌活性的去除或灭活”制备的供试液lml，置直径90mm的无菌平皿中，注人15～20ml温度不超过45℃熔化的胰酪大豆胨琼脂或沙氏葡萄糖琼脂培养基，混匀，凝固，倒置培养。

若使用直径较大的平皿，培养基的用量应相应增加。

按规定条件培养、计数。

5.4.1.2涂布法：

取15～20ml温度不超过45℃的胰酪大豆胨琼脂或沙氏葡萄糖琼脂培养基，注人直径90mm的无菌平皿，凝固，制成平板，采用适宜的方法使培养基表面干燥。

若使用直径较大的平皿，培养基用量也应相应增加。

每一平板表面接种上述照“供试液的制备”和“抗菌活性的去除或灭活”制备的供试液不少于0.1ml。

5.4.2薄膜过滤法

5.4.2.1薄膜过滤法所采用的滤膜孔径应不大于0.45μm，直径一般为50mm，若采用其他直径的滤膜，冲洗量应进行相应的调整。

供试品及其溶剂应不影响滤膜材质对微生物的截留。

滤器及滤膜使用前应采用适宜的方法灭菌。

使用时，应保证滤膜在过滤前后的完整性。

水溶性供试液过滤前先将少量的冲洗液过滤以润湿滤膜。

油类供试品，其滤膜和滤器在使用前应充分干燥。

为发挥滤膜的最大过滤效率，应注意保持供试品溶液及冲洗液覆盖整个滤膜表面。

供试液经薄膜过滤后，若需要用冲洗液冲洗滤膜，每张滤膜每次冲洗量一般为100ml。

总冲洗量不得超过1000ml，以避免滤膜上的微生物受损伤。

5.4.2.2取照上述“供试液的制备”和“抗菌活性的去除或灭活”制备的供试液适量（一般取相当于1g、1ml或10cm2的供试品，若供试品中所含的菌数较多时，供试液可酌情减量），加至适量的稀释液中，混匀，过滤。

用适量的冲洗液冲洗滤膜。

若测定需氧菌总数，转移滤膜菌面朝上贴于胰酪大豆胨琼脂培养基平板上；

若测定霉菌和酵母总数，转移滤膜菌面朝上贴于沙氏葡萄糖琼脂培养基平板上。

5.5计数方法适用性试验

5.5.1接种和稀释

按下列要求进行供试液的接种和稀释,制备微生物回收试验用供试液。

所加菌液的体积应不超过供试液体积的1%。

为确认供试品中的微生物能被充分检出，首先应选择最低稀释级的供试液进行计数方法适用性试验。

5.5.1.1试验组：

取上述制备好的供试液，加入试验菌液，混匀，使每1ml供试液或每张滤膜所滤过的供试液中含菌量不大于100cfu。

5.5.1.2供试品对照组：

取制备好的供试液,以稀释液代替菌液同试验组操作。

5.5.1.3菌液对照组：

取不含中和剂及灭活剂的相应稀释液替代供试液,按试验组操作加入试验菌液并进行微生物回收试验。

5.5.2若因供试品抗菌活性或溶解性较差的原因导致无法选择最低稀释级的供试液进行方法适用性试验时，应采用适宜的方法对供试液进行进一步的处理。

如果供试品对微生物生长的抑制作用无法以其他方法消除，供试液可经过中和、稀释或薄膜过滤处理后再加入试验菌悬液进行方法适用性试验

5.5.3供试品中微生物的回收

表2所列的计数方法适用性试验用的各试验菌应逐一进行微生物回收试验。

微生物的回收可采用平皿法、薄膜过滤法。

5.5.3.1平皿法

表2中每株试验菌每种培养基至少制备2个平皿，以算术均值作为计数结果。

5.5.3.1.1倾注法：

按表2规定条件培养、计数。

同法测定供试品对照组及菌液对照组菌数。

计算各试验组的平均菌落数。

5.5.3.1.2涂布法：

5.5.3.2薄膜过滤法：

5.5.4结果判断

5.5.4.1计数方法适用性试验中，采用平皿法或薄膜过滤法时，试验组菌落数减去供试品对照组菌落数的值与菌液对照组菌落数的比值应在0.5～2范围内。

若各试验菌的回收试验均符合要求，照所用的供试液制备方法及计数方法进行该供试品的需氧菌总数、霉菌和酵母菌总数计数。

5.5.4.2方法适用性确认时,若采用上述方法还存在一株或多株试验菌的回收达不到要求,那么选择回收最接近要求的方法和试验条件进行供试品的检查。

5.6计数培养基适用性检查

供试品微生物计数中所使用的培养基应进行适用性检查。

供试品的微生物计数方法应进行方法适用性试验，以确认所采用的方法适合于该产品的微生物计数。

若检验程序或产品发生变化可能影响检验结果时，计数方法应重新进行适用性试验。

表2试验菌液的制备和使用

试验菌株

试验菌液的制备

计数培养基适用性检查

计数方法适用性试验

需氧菌总数计数

霉菌和酵母菌总数计数

金黄色葡萄球菌（Staphylococcusaureus）〔CMCC（B）26003）〕

胰酪大豆胨琼脂培养基或胰酪大豆胨液体培养基，培养温度30～35℃，培养时间18～24小时

胰酪大豆胨琼脂培养基和胰酪大豆胨液体培养基，培养温度30～35℃，培养时间不超过3天，接种量不大于100cfu

胰酪大豆胨琼脂培养基或胰酪大豆胨液体培养基（MPN法），培养温度30～35℃，培养时间不超过3天，接种量不大于100cfu

铜绿假单胞菌（Pseudomonasaeruginosa）〔CMCC（B）10104〕

枯草芽孢杆菌（Bacillussubtilis）〔CMCC（B）63501〕

白色念珠菌（Candidaalbicans）〔CMCC（F）98001〕

沙氏葡萄糖琼脂培养基或沙氏葡萄糖液体培养基，培养温度20～25℃，培养时间2～3天

胰酪大豆胨琼脂培养基，培养温度30～35℃，培养时间不超过5天，接种量不大于100cfu

沙氏葡萄糖琼脂培养基，培养温度20～25℃，培养时间不超过5天，接种量不大于100cfu

胰酪大豆胨琼脂培养基（MPN法不适用），培养温度30～35℃，培养时间不超过5天，接种量不大于100cfu

黑曲霉（Aspergillusniger）〔CMCC（F）98003〕

沙氏葡萄糖琼脂培养基或马铃薯葡萄糖琼脂培养基，培养温度20～25℃，培养时间5～7天，或直到获得丰富的孢子

胰酪大豆胨琼脂培养基，培养温度30～35℃，培养时间不超过5天，接种量不大于100cfu

沙氏葡萄糖琼脂培养基，培养温度20～25℃，培养时间不超过5天，接种量不大于100cfu

胰酪大豆胨琼脂培养基（MPN法不适用），培养温度30～35℃，培养时间不超过5天，接种量不大于100cfu

注：

当需用玫瑰红钠琼脂培养基测定霉菌和酵母菌总数时，应进行培养基适用性检查，检查方法同沙氏葡萄糖琼脂培养基。

5.6.1菌种及菌液制备

5.6.1.1菌种：

试验用菌株的传代次数不得超过5代（从菌种保藏中心获得的干燥菌种为第0代），并采用适宜的菌种保藏技术进行保存，以保证试验菌株的生物学特性。

5.6.1.2菌液制备：

按表2规定程序培养各试验菌株。

取金黄色葡萄球菌、铜绿假单胞菌、枯草芽孢杆菌、白色念珠菌的新鲜培养物，用pH7.0无菌氯化钠-蛋白胨缓冲液或0.9%无菌氯化钠溶液制成适宜浓度的菌悬液；

取黑曲霉的新鲜培养物加入3～5ml含0.05％聚山梨酯80的pH7.0无菌氯化钠-蛋白胨缓冲液或0.9%无菌氯化钠溶液，将孢子洗脱。

然后，采用适宜的方法吸出孢子悬液至无菌试管内，用含0.05％聚山梨酯80的pH7.0无菌氯化钠-蛋白胨缓冲液或0.9%无菌氯化钠溶液制成适宜浓度的黑曲霉孢子悬液。

菌液制备后若在室温下放置，应在2小时内使用；

若保存在2～8℃，可在24小时内使用。

黑曲霉孢子悬液可保存在2～8℃，在验证过的贮存期内使用。

5.6.1.3阴性对照：

为确认试验条件是否符合要求，应进行阴性对照试验，阴性对照试验应无菌生长。

如阴性对照有菌生长，应进行偏差调查。

5.6.2培养基适用性检查

5.6.2.1微生物计数用的成品培养基,由脱水培养基或按处方配制的培养基均应进行培养基适用性检查。

5.6.2.2按表2规定，接种不大于100cfu的菌液至胰酪大豆胨液体培养基管或胰酪大豆胨琼脂培养基平板或沙氏葡萄糖琼脂培养基平板，置表2规定条件下培养，每一试验菌株平行制备2管或2个平皿。

同时，用相应的对照培养基替代被检培养基进行上述试验。

5.6.2.3营养琼脂培养基适用性检查菌株为大肠埃希菌、金黄色葡萄球菌、枯草芽孢杆菌。

R2A琼脂培养基适用性检查菌株为铜绿假单胞菌、枯草芽孢杆菌。

置表2规定条件下培养，每一试验菌株平行制备2个平皿。

5.6.2.4被检固体培养基上的菌落平均数与对照培养基上的菌落平均数的比值应在0.5-2范围内，且菌落形态大小应与对照培养基上的菌落一致；

被检液体培养基管与对照培养基管比较，试验菌应生长良好。

5.7供试品的检查

按计数方法适用性试验确认的计数方法进行供试品中需氧菌总数、霉菌和酵母菌总数的测定。

胰酪大豆胨琼脂培养基或胰酪大豆胨液体培养基用于测定需氧菌总数；

沙氏葡萄糖琼脂培养基用于测定霉菌和酵母菌总数。

5.7.1阴性对照试验：

以稀释液代替供试液进行阴性对照试验，阴性对照试验应无菌生长。

如果阴性对照有菌生长，应进行偏差调查。

5.7.2平皿法

5.7.2.1培养和计数：

除另有规定外，胰酪大豆胨琼脂培养基平板在30～35℃培养3～5天，沙氏葡萄糖琼脂培养基平板在20～25℃培养5～7天，观察菌落生长情况,点计平板上生长的所有菌落数，计数并报告。

菌落蔓延生长成片的平板不宜计数。

点计菌落数后，计算各稀释级供试液的平均菌落数，按菌数报告规则报告菌数。

若同稀释级两个平板的菌落数平均值不小于15，则两个平板的菌落数不能相差1倍或以上。

5.7.2.2菌数报告规则：

需氧菌总数测定宜选取平均菌落数小于300cfu的稀释级、霉菌和酵母菌总数测定宜选取平均菌落数小于100cfu的稀释级，作为菌数报告的依据。

取最高的平均菌落数，计算1g、1ml或10cm2供试品中所含的微生物数，取两位有效数字报告。

如各稀释级的平板均无菌落生长，或仅最低稀释级的平板有菌落生长，但平均菌落数小于1时，以﹤1乘以最低稀释倍数的值报告菌数。

5.7.3薄膜过滤法

除另有规定外，按计数方法适用性试验确认的方法进行供试液制备。

取相当于1g、1ml或10cm2供试品的供试液，若供试品所含的菌数较多时，可取适宜稀释级的供试液，照方法适用性试验确认的方法加至适量稀释液中，立即过滤，冲洗，冲洗后取出滤膜，菌面朝上贴于胰酪大豆胨琼脂培养基或沙氏葡萄糖琼脂培养基上培养。

5.7.3.1培养和计数：

培养条件和计数方法同平皿法，每张滤膜上的菌落数应不超过100cfu。

5.7.3.2菌数报告规则：

以相当于1g、1ml或10cm2供试品的菌落数报告菌数；

若滤膜上无菌落生长，以﹤1报告菌数（每张滤膜过滤1g、1ml或10cm2供试品）,或﹤1乘以最低稀释倍数的值报告菌数。

5.7.5结果判断

5.7.5.1需氧菌总数是指胰酪大豆胨琼脂培养基上生长的总菌落数（包括真菌菌落数）；

霉菌和酵母菌总数是指沙氏葡萄糖琼脂培养基上生长的总菌落数（包括细菌菌落数）。

若因沙氏葡萄糖琼脂培养基上生长的细菌使霉菌和酵母菌的计数结果不符合微生物限度要求，可使用含抗生素（如氣霉素、庆大霉素）的沙氏葡萄糖琼脂培养基或其他选择性培养基（如玫瑰红钠琼脂培养基）进行霉菌和酵母菌总数测定。

使用选择性培养基时，应进行培养基适用性检查。

5.8控制菌检查

5.8.1控制菌检查法系用于在规定的试验条件下，检査供试品中是否存在特定的微生物。

当本法用于检查非无菌制剂及其原、辅料等是否符合相应的微生物限度标准时，应按下列规定进行检验，包括样品取样量和结果判断等。

5.8.2如果供试品具有抗菌活性，应尽可能去除或中和。

供试品检查时，若使用了中和剂或灭活剂，应确认有效性及对微生物无毒性。

供试品的控制菌检查按经方法适用性试验确认的方法进行。

5.8.3培养基适用性检查和控制菌检查方法适用性试验

供试品控制菌检查中所使用的培养基应进行适用性检查。

供试品的控制菌检查方法应进行方法适用性试验，以确认所采用的方法适合于该产品的控制菌检查。

若检验程序或产品发生变化可能影响检验结果时，控制菌检查方法应重新进行适用性试验。

5.8.3.1菌种及菌液

5.8.3.1.1菌种

大肠埃希菌（Escherichiacoli）[CMCC（B）44102]

5.8.3.1.2菌液制备：

同10.1的方法

5.8.3.2培养基适用性检查

控制菌检查用的成品培养基、由脱水培养基或按处方配制的培养基均应进行培养基的适用性检查。

控制菌检查用培养基的适用性检查项目包括促生长能力、抑制能力及指示特性的检查。

各培养基的检查项目及所用的菌株见表4。

表4控制菌检查用培养基的促生长能力、抑制能力和指示特性

控制菌检查

培养基

特性

大肠埃希菌

麦康凯液体培养基

促生长能力

抑制能力

金黄色葡萄球菌

麦康凯琼脂培养基

促生长能力+指示特性

5.8.3.2.1液体培养基促生长能力检查：

分别接种不大于100cfu的试验菌（见表1）于被检培养基和对照培养基中，在相应控制菌检查规定的培养温度及不大于规定的最短培养时间下培养，与对照培养基管比较，被检培养基管试验菌应生长良好。

5.8.3.2.2固体培养基促生长能力检查：

用涂布法分别接种不大于100cfu的试验菌（见表1）于被检培养基和对照培养基平板上，在相应控制菌检查规定的培养温度及不大于规定的最短培养时间下培养，被检培养基与对照培养基上生长的菌落大小、形态特征应一致。

5.8.3.2.3培养基抑制能力检查：

接种不少于100cfu的试验菌（见表1）于被检培养基和对照培养基中，在相应控制菌检查规定的培养温度及不小于规定的最长培养时间下培养，试验菌应不得生长。

5.8.3.2.4培养基指示特性检查：

用涂布法分别接种不大于100cfu的试验菌（见表1）于被检培养基和对照培养基平板上，在相应控制菌检查规定的培养温度及不大于规定的最短培养时间下培养，被检培养基上试验菌生长的菌落大小、形态特征、指示剂反应情况等应与对照培养基一致。

5.8.4控制菌检查方法适用性试验

5.8.4.1供试液制备：

按“供试液的制备”中的规定制备供试液。

5.8.4.2试验菌：

根据各品种项下微生物限度标准中规定检查的控制菌选择相应试验菌株。

5.8.4.3适用性试验：

按控制菌检查法取规定量供试液及不大于100cfu的试验菌接入规定的培养基中；

采用薄膜过滤法时,取规定量供试液,过滤,冲洗,在最后一次冲洗液中加入试验菌,过滤后,注入规定的培养基或取出滤膜接入规定的培养基中。

依相应的控制菌检查方法，在规定的温度和最短时间下培养，应能检出所加

试验菌相应的反应特征。

5.8.4.4结果判断

5.8.4.4.1上述试验若检出试验菌，按此供试液制备法和控制菌检查方法进行供试品检查；

若未检出试验菌，应消除供试品的抑菌活性[见非无菌产品微生物检查：

微生物计数法中的“抗菌活性的去除或灭活”]，并重新进行方法适用性试验。

5.8.4.4.2如果经过试验确证供试品对试验菌的抗菌作用无法消除，可认为受抑制的微生物不易存在于该供试品中，选择抑菌成份消除相对彻底的方法进行供试品的检查。

5.8.5供试品检查

供试品的控制菌检查应按经方法适用性试验确认的方法进行。

5.8.5.1阳性对照试验：

阳性对照试验方法同供试品的控制菌检查,对照菌的加量应不大于100cfu。

阳性对照试验应检出相应的控制菌。

5.8.5.2阴性对照试验：

以稀释剂代替供试液照相应控制菌检查法检查，阴性对照试验应无菌生长。

5.8.5.3大肠埃希菌（Escherichiacoli）

5.8.5.3.1供试液制备和增菌培养：

取供试品，照“非无菌产品微生物限度检查：

微生物计数法”制成1：

10供试液。

取相当于1g或1mL供试品的供试液，接种至适宜体积（经方法适用性试验确定）的胰酪大豆胨液体培养基中，混匀，30～35℃培养18～24小时。

5.8.5.3.2选择和分离培养：

取上述培养物1mL接种至100mL麦康凯液体培养基中，42～44℃培养24～48小时。

取麦康凯液体培养物划线接种于麦康凯琼脂培养基平板上，30～35℃培养18～72小时。

5.8.5.3.3结果判断：

若麦康凯琼脂培养基平板上有菌落生长，应进行分离、纯化及适宜的鉴定试验,确证是否为大肠埃希菌；

若麦康凯琼脂培养基平板上没有菌落生长，或虽有菌落生长但鉴定结果为阴性，判供试品未检出大肠埃希菌。

5.9注意事项

5.9.1培养基及其配置方法：

使用按处方（2015版药典通则“5.501”“5.505”“5.506”培养基处方）生产的符合要求的