细胞免疫组化Word文档下载推荐.docx

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23、中性树胶封片。

注意事项:

1、良好的细胞爬片是进行免疫组织细胞的基础,要获得良

好细胞爬片须注意以下:

a对于粘附分子较少的细胞爬片时间要达5天以上这样细胞

爬片才较牢固冲洗时不易脱片;

b接种的细胞密度适中以2*104/ml为宜,若密度太高5天后

细胞连接成片冲洗时易脱片;

2、冰丙酮固定后玻片可密闭保存于4C冰箱,冰丙酮固定时

会使细胞收缩,可用80%冰丙酮或2%多聚甲醛固定。

3、冲洗时只须轻轻振荡培养皿,(不可用吸管太用力吹,易

脱片)

4、加一抗、二抗后冲洗时第一次须将玻片倾斜

5、TritonX-100表面活性剂,脱去细胞膜中最主要的成分脂

质,对于抗原表达在胞浆或胞核者方使用,对于抗原表达在

胞浆者时间要控制好,使其破坏细胞膜而核膜破坏较少。

细胞爬片固定后在孔板里做免疫组化还是粘到载玻片上再

做?

1.如果不看荧光,两种都可以,感觉粘好了再做要快一些,

但是做的时候要防止脱落。

如果看荧光,就不能用中性树胶粘,直接在

24孔,或6孔

板里做才可以。

中性树胶要折光,散射的光干扰,没办法看

细胞本身的荧光。

2.孔板里做免疫组化较方便,细胞比盖玻片易贴壁,但染色

后不能用二甲苯透明、封片(可用甘油)。

细胞爬片固定后粘到载玻片上不太可能,只有开始就让细胞

贴在玻片上爬片。

3.我没有在多孔板里做过,其实把细胞爬在盖玻片上也不是

很麻烦,偶这样做很少掉片。

先将消化好的细胞悬液滴几滴在盖玻片上,由于液体的表面

张力,细胞悬液一般不会流淌到盖玻片外面,等细胞大概贴

壁后,不同细胞贴壁时间稍有不同,大概6、7个小时,差

不多贴壁再加生长液,开始滴的细胞的数量你要摸索一下,

到固定时细胞生长到80%左右比较合适。

偶是在盖玻片上做的,首先细胞要爬的匀一些,象dongwp

战友的就很好。

然后倾去生长液冲洗、固定之后,用小镊子

或手指把玻片从六孔板拿出来。

擦干盖玻片的背面,在玻片

背面四周涂一点凡士林,粘贴于载玻片上,这一点很重要,在以后的操作里会省去盖玻片经常脱落麻烦。

细胞爬片的保存和抗原修复问题总结

1.

体浓度

细胞爬片可以用

请告知.多谢!

!

含叠氮钠

PBS

液保存

.但不知道具

0.04--0.08%。

但是我建议对于细胞爬片,还是尽量快的进行

处理,以防不必要的问题!

2.louischenwrote:

但我的细胞爬片经过4%多聚甲醛固定,PBS冲洗后直接就放在了-20度,还能用于免疫组化吗?

丢失

3.mRNA原位杂交经4%多聚甲醛固定,固定液需加

DEPC水。

其它建议用甲醇固定。

-20度保存

4.如果是4%多聚甲醛固定,然后放在PBS中保存,在

4度冰箱里保存两周没问题。

时间再长就没试过了。

5.丙酮中固定5-10分钟,然后风干,放置4度保存过

夜应该是没有问题。

不要固定过夜,蛋白质固定过度,会影响抗原的暴露,影响免疫组化结果。

如果是胞浆或胞核抗原

出现假阴性结果,可考虑应用0.5%的triton-100孵育30分钟,渗透细胞膜。

如果玻片没有经过特殊处理,不要用其他抗原修复的方法,会造成掉片,我曾有过这方面的体会

6.丙酮固定后,PBS洗涤3次,即可保存至4度冰箱备

用。

7.

(1)细胞爬片先用TBS洗3次,每次5分钟

(2)4%多聚甲醛固定,室温,20分钟

(3)70%-80%-90%-95%-100%梯度酒精脱水,通风橱内干燥,-80度保存。

2周没有问题的,我保存过2个月都有信号,不过还是保存时间短一点的好

8.我的心肌细胞爬片用不同浓度的乙醇依次脱水后,就放在室温中,因为是要拍电镜,但是学校电镜坏了,呵呵,所以放了一个月后去拍,还是很好

9.细胞爬片用4%多聚甲醛或冷丙酮等固定,用PBS冲洗后,晾干,放在-20度保存一个月没有问题的。

10.细胞爬片,有机溶剂如4%多聚甲醛或冷丙酮等固定

后,轻轻摇动玻片或培养皿等,静置

2min

左右,弃去固定

液,不用

洗而是采用空气干燥,干燥后的标本可于

-70℃

长期保存。

解冻时要小心抗原破坏,应先将标本转移于干冰

预冷的固定液,然后再将混合液转移至室温下,固定液到达

室温时取出标本,再用PBS冲洗,在做以后的步鄹

11.我也做过细胞爬片的组化染色,不过没有遇到类似

的问题。

细胞培养好后用PBS洗一遍,然后4%多聚甲醛4

度固定15分钟,自然风干。

室温保存几周内都可以用的。

我想这可能与抗原的类型有关,有的对氧化等损伤比较敏

感,有的差一些。

最好避光保存在4度,同时尽量隔绝空气。

免疫荧光与普通DAB显色差别只再二抗的标记,样品的保

存应该是没有多大差别的。

12.细胞爬片丙酮固定后-20度保存,现在要再做免疫荧光,将保存的爬片拿出37度复温然后常规操作就可以了

13.爬片做免疫组化的优势在于抗原新鲜,细胞形态保存较好。

若爬片需长期保存并出现你这样的问题,原因可能

是:

1)试验步骤有误,建议重复并加阳性对照片。

2)加一抗前处理同石蜡切片,可进行抗原修复,如胰酶消化或热修复。

3)因为抗原抗体反应在液相中进行,故对已极度干燥的爬片

充分水化很重要。

建议试验前用PBS浸泡过夜。

如不能解决

你的问题请QQ联系:

81825645。

本人在湖南省肿瘤医院病

理科(长沙市)做免疫组化。

14.4%多聚甲醛或冷丙酮固定都可以,也有用无水酒精的,固定好后放-20度,2-3个月是没有问题的。

15.对于一般的细胞免疫组化,我的做法是:

细胞爬片

用冰的纯丙酮固定20MIN,再在通风柜将丙酮吹干,—-20

度保存,用丙酮固定作用是沉淀蛋白质和糖,穿透性很强,

保存抗原的免疫活性好。

所以丙酮常用做细胞细胞爬片的固

定剂。

当然还是要根据你的实验目的决定用那种固定剂。

1.多聚甲醛(常用4%):

可用于免疫电镜;

也可用于

免疫荧光染色。

主要检测组织内一些性能娇弱的抗原特别

是细胞表面抗原,例如各类淋巴细胸分化决定簇(CD)、主要

组织相容性抗原等

2.乙醇。

优点:

穿透性强、抗原性保存较好。

缺点:

但醇类对低分子蛋白质、多肽及胞浆内蛋白质保存效果较

差,使蛋白变性的作用轻,固定后可再溶解;

染色过程中,温

育时间长,抗原可流失而减弱反应强度

3.甲醛(福尔马林)应用最广优点:

形态结构保存好,

且穿透性强,缺点:

甲醛放置过久可氧化为甲酸,使溶液

pH降低,影响染色;

分子间交联形成的网格结构可能部分或

完全掩盖某些抗原决定簇,使之不能充分暴露。

可造成假阴

性的染色结果。

16.4度是不能保存这么长时间(1个月)的,如果抗原已

被分解,再修复也没用!

17.弃去固定液,不用PBS洗而是采用空气干燥,干燥后的标本可于-70℃长期保存。

18.爬片置于

37度

中洗三次,每次

3到

5秒钟,

然后在

4%多聚甲醛中固定

15分钟,然后再用

37度去离子

水将甲醛冲干净,注意手法轻柔,要不然掉片很厉害。

同时操作过程中注意玻片的正反面,要不然真的是前功尽弃。

载玻片上。

注意一定要等中性树胶彻底干了之后才能做后续

实验,要不然玻片会掉下来的,就又是前功尽弃了做好的细胞爬片可以放在-20保存备用,具体能保存多长时间不太清楚,当然尽量早用。

19.固定后放点PBS,然后放在4度冰箱中保存,我最长保存两个月的,然后再做免疫组化,应该没有太大的问题的。

20.固定后4度可以存放一周,-20度存放半年,我现在也要做这个,实验室老师教的。

21.四度放1周应该没问题的,你最好放在-20度,我在

-20度放一个月都还出结果的.很多人作的片子很多,不可能

一次作完,一个月没问题.

22.最佳的固定及保存方法:

(1)中性缓冲福尔马林(不必调pH):

马林(40%甲醛,用时加入过量碱式MgCO3中和)

10.0ml

Na2HPO4.12H2o1.9653g

NaH2PO4.2H2O0.5460g

0.85%NaCl溶液溶解,定容至100ml。

(2)细胞固定:

待细胞接近长成单层时,用镊子取出盖

玻片,迅速于37℃PBS中漂洗2次,每次3-5秒,以清除血

清。

(3)将盖玻片投入中性缓冲福尔马林溶液中室温固定

(4)用镊子取出盖玻片,PBS漂洗2次,每次3-5秒,

晾干保存于-20℃备用。

可长期保存,做实验时,取出片子,

入PBS湿润后即可进行你的实验。

(H.E.)或免疫荧光。

(本帖没

有加分)

23.细胞爬片固定以后要放在-20度的冰箱.1个月内可

以用.

24.skywalkerzzwrote:

过氧化氢处理这一步,用三蒸水稀释商品浓度为30%的过氧化氢,然后室温下玻片放在其中浸

泡10min,是不是过氧化氢导致细胞严重脱片?

/双氧水,你的细胞极可能是过氧化

氢导致严重脱片

25.本人比较喜欢用4%得多聚甲醛,20分钟很好用的。

保存的时候注意片子最好晾干,不要挤压,防止粘片和碎裂。

26.细胞爬片固定好以后,如果要保存,我们的做法是

倒掉固定液,PBS漂洗后干片保存在4度,最长半年没问题。

27.1、用新鲜配制的预冷的4%多聚甲醛缓冲液室温固

定15min,PBS(0.01mol/l,pH7.4)洗涤3遍后是否就可以进

行免疫细胞化学染色了

2、爬片PBS(0.01mol/l,pH7.4)洗涤3遍后是否能保

存,怎样保存?

1、洗过就可以做免疫组化了。

2、固定过后自然干燥,不要洗,-20度保存。

做之前

再洗。

28.细胞固定最好用丙酮或酒精,不要用4%多聚甲醛,以免抗原交联,这样组化时不用再抗原修复。

细胞固定后可

室温保存在丙酮中,不使之干燥。

29.如果是检测膜上的物质,好象不能用酒精,

30.适当密度后取出固定(丙酮-20固定10~20min),再进行免疫染色。

31.一批细胞爬片,如果细胞爬片是在玻璃上,冷丙酮固

定15-20分钟,然后放-20度,没有问题。

24孔板或6孔板里进行,冷丙酮

会腐蚀板子,最好4%多聚甲醛。

32.细胞爬片用纯丙酮固定10分钟,取出干燥后用锡纸包裹,-70度保存。

33.4%多聚甲醛固定后PBS水洗,自然干燥后用锡纸包裹,-20度冻存不超过1月。

34.如果细胞贴壁困难,可将片子先用纯血清挂一层,

凉干后再养细胞。

35.可以买NUNC公司的专用细胞培养用盖玻片,商品

名Thermanox&

#8482;

Coverslips。

高分子材料,耐高温灭菌,经过特殊表面处理,细胞容易贴附。

可以用剪刀任意裁剪,

使用效果好。

果比玻璃盖玻片效果好很多。

36.我们通常是把细胞玻片固定好后,用PBS冲洗干净,然后用酒精脱水(80%,90%,100%,100%酒精各一次,每

次10分钟左右),然后放在烘箱里烘干,这是就相当于石蜡切片了,可以保存一定的时间。

可以的。

免疫细胞化学染色操作规程

一、材料和

1、玻片:

须用免疫组化专用玻片,或用2%多聚赖氨酸包被

处理玻片。

2、5-10%正常山羊血清封闭液,用PBS配。

3、3%牛血清白蛋白(BSA),用PBS配。

4、0.01MPH7.4PBS

5、1%BSA-PBS(含0.05%Tween20)

6、AEC底物

(1)底物缓冲液(20X)PH4.6

醋酸(分子量60.6)30.6ml

Triton-100

醋酸钠3H2O(分子量136.1)66.68克

加蒸馏水到960ml,调PH到4.6,最后加蒸馏水到总体积

1000ml

(2)AEC(20X)

AEC15mg/ml,溶在DMF(二甲基甲酰胺,分子式HCOH(CH3)2分子量73.10中)

(3)0.6%H2O2(20X)

临用时,

(1)

(2)(3)各50ul,在1ml双蒸馏水中混匀30

分钟内有效。

7、DAB(即DAB-4HCL)

(1)1.5克DAB在100ml水溶液中(20X)

(2)1MTris(20X),用HCL调PH到7.4

(1)

(2)(3)各滴加入1ml二蒸水中,新鲜配,避光,30

溶解后(可加热到500C),加水合氯醛50克(水合氯醛

ChloralHyclrate,分子量165.4),枸橼酸1克,充分溶解,

于棕色瓶中,室温或40C保存。

8、苏木素复染液

苏木素

1克

碘酸钠

0.2克

钾矾

50克

9、含

10%及

2%小牛血清的

DMEM

培养液。

10、3%H2O2:

30%H2O2

1份,加

9份双蒸水,临用时配。

11、细胞抗原玻片及

96孔细胞抗原板(见

ICCprotocol04

12、封片液:

1克明胶,溶于

30ml350C

水中,加入

35ml

甘油(或用甘油封片)和650mg石碳酸(先溶于0.6ml水中)。

二、细胞内源过氧化物酶阻断(使用

HRP

标记二抗或

SP法

时必须阻断)

1、从冰箱取出细胞片或细胞板,

置室温或

370C10-15

分钟,

使恢复温度。

2、加3%H2O2,细胞片20ul/孔,培养板100ul/孔,使充分

覆盖住细胞。

3、室温10分钟后,甩掉H2O2,用PBS轻轻淋洗2分钟。

用滤纸吸干细胞周围水份,96孔在滤水纸上扣干,但注意保

持细胞湿润。

三、封闭

细胞片用5-10%正常山羊血清(20ml/孔),细胞板用2-5%BSA(PBS配制)100ul/孔,置370C孵育30分钟后甩掉封闭液,

不洗。

四、免疫化学染色

1、分别加一抗和所有对照一抗,细胞法10-20ul/孔,细胞板

50ul/孔,使充分覆盖细胞。

37℃1小时或4℃冰箱过夜;

2、弃去一抗,如为细胞涂片用

PBST轻轻简单淋洗

1次后,

浸于100mL含PBST洗杯,漂洗(最好在慢速摇床上)

3-5

分钟,转入第二杯

PBS(1000ml),如上法漂洗3-5

分钟。

干细胞片周围水分,

96孔板则倒掉一抗后,每孔加满

PBST

在摇床上摇洗3-5分钟后倒掉,在滤纸上扣干,但保持细胞

湿润,反复3-4次;

3、加S.P(S.P法,即放大法)

(1)加已优选好的浓度的Biotin标记二抗,细胞片10ul/孔,细胞板50ul/孔,使充分复盖细胞。

37℃温和孵育30分钟;

(2)按免疫化学染色&

#8220;

2&

#8221;

所述方法洗涤和擦干;

(3)加已优选好浓度的S.P,用量同&

(1)&

37℃孵育30分钟后按免疫化学染色&

法洗涤

及擦干;

4、间接法加二抗(不放大法)

方法同S.P法,但不用Biotin标记二抗,而改用HRP直接标

记二抗。

并省略(3)步骤;

5、加底物显色

(1)、加足量的AEC显色液,充分覆盖细胞层,细胞玻片

20ul/孔,板50ul/孔,置于37℃恒温箱孵育5-10分钟,一般

在显微镜下根据结果颜色的呈现情况掌握染色时间,以得到

满意的结果(阳性对照显色程度为&

+++&

),

用自来水即可终止反应;

(2)、复染:

苏木素染液(使用时间最好不超过两个月)加苏木素复染液1-2滴,1分钟左右,在自来水龙头下轻轻冲

洗掉苏木素,再浸于PBS中约30秒钟返蓝色,最后在蒸馏

水中漂洗。

6、封片

洗后细胞片擦去周围水分,滴加1滴甘油—明胶封片液,加

盖玻片,除去气泡,用指甲油或树胶封固玻片。

五、结果判

KSHV阳性——诱导后BCBL-1细胞有10%-30%显红

色,强度不一,未诱导BCBL-1阳性细胞(1-30%)

阴性——诱导和未诱导BCBL-1细胞完全不显

色(排除边缘效应)

MCMV/HVMV阳性——感染病毒的细胞有病灶反

应,显红色,强度不一,未感染细胞不显红色(排除非特异性染色)

阴性——感染细胞和未感染细胞不显

红色

注意:

1、一抗、二抗的稀释采用1%BSA/PBS,Sterptavidin-HRP

的稀释采用PBS

2、整个反应过程在湿盒中进行(细胞片)

3、洗涤时应使用染色缸(细胞片)六、说明

1、测血时一抗血清稀释度要求

项目

KSHV

MVMV

HCMV

其它

稀释度

1:

50,1:

100,1:

200

100,1:

500,1:

1000

可融合标准

100

阳性时

阳性

500

2、S.P法使用二抗的不同

情况

MCMV

样品母、亚上清血清、母、亚上清

血清、母克隆、亚克隆细胞培养上清

一抗为IgG型,

Biotin标记二抗Biotin-AntimouseIgG

F(ab`)2,SIGMA,CAT:

B6774

一抗为IgM型,

Biotin标记二抗Biotin-Antimouse

IgGAM,ZYMED,CAT:

62-6440

稀释度1:

2003、间接法(不放大法)使用二抗的

不同情况

项目MCMVKSHV

样品血清血清、母克隆、亚克隆细胞培养

上清

HRP标记二抗HRP-AntimouseIgG

Fc,1:

100,SIGMA,CAT:

A-0168

一抗为

IgM

型,

HRP标记二抗HRP-Antimouse

POLYVALENT,1:

A-0412

1004、对照系统,必须要做的对照系统

如下:

阳性对照:

标准一抗,阳性血清,阳性上清

阴性对照:

(1)阴性一抗对照:

小鼠免疫前血清、测上清时用原克隆上清液

(2)阴性抗原细胞对照:

未感染病毒的细胞,每个待测及对照均须做阴性细胞对照

空白对照:

不加一抗,用1%BSA替代无关对照:

与本项目无的第一

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