抗抑菌试验Word格式.docx

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每涂抹1次，平板应转动60°

，最后将棉拭子绕平板边缘涂抹一周。

盖好平皿，置室温干燥5min。

（4）抑菌剂样片贴放:

每次试验贴放1个染菌平板，每个平板贴放4片试验样片，1片阴性对照样片，共5片。

用无菌镊子取样片贴放于平板表面。

各样片中心之间相距25mm以上，与平板的周缘相距15mm以上。

贴放好后，用无菌镊子轻压样片，使其紧贴于平板表面。

盖好平皿，置37℃温箱，培养16h～18h观察结果。

用游标卡尺测量抑菌环的直径（包括贴片）并记录。

试验重复3次。

测量抑菌环时，应选均匀而完全无菌生长的抑菌环进行。

测量其直径应以抑菌环外沿为界。

2.1.8.2.4 

评价规定

（1）抑菌作用的判断:

抑菌环直径大于7mm者，判为有抑菌作用。

抑菌环直径小于或等于7mm者，判为无抑菌作用。

（2）3次重复试验均有抑菌作用结果者，判为合格。

（3）阴性对照组应无抑菌环产生。

否则试验无效。

2.1.8.2.5 

注意事项

（1）每次试验均应设置阴性对照，不可省略。

在报告中亦必须将对照组的结果列出。

（2）接种用细菌悬液的浓度应符合要求。

浓度过低，接种菌量少，抑菌环常因之增大;

浓度过高，接种量过多，抑菌环则可减小。

（3）应保持琼脂浓度的准确性，否则可影响抑菌环的大小。

（4）培养时间不得超过18h。

培养过久，部分细菌可恢复生长，抑菌环变小。

（5）抑菌环直径可受抑菌剂的量、抑菌性能和干湿度影响。

故抑菌剂滤纸片应在试验当天制备。

2.1.8.3最小抑菌浓度测定试验（琼脂稀释法）

2.1.8.3.1原理

本试验采用琼脂稀释法将不同浓度的抑菌剂混合溶解在琼脂培养基中，然后点种细菌，通过细菌的生长与否，确定抗（抑）菌物质抑制受试菌生长的最低浓度，即最小抑菌浓度（MinimalInhibitoryConcentration，MIC）。

本方法适用于不溶性抗（抑）菌产品。

2.1.8.3.2试验器材

（1）菌株

金黄色葡萄球菌ATCC6538，大肠杆菌8099或ATCC11229。

可根据抑菌剂的用途，选择特定的菌株。

（2）水解酪蛋白琼脂培养基（MH），称取38gMH琼脂培养基，溶于1000ml水中，加热至沸腾溶解，然后121℃高压灭菌15min，置45℃～50℃水浴备用，此培养基将用于对照试验。

（3）0.03mol/L磷酸盐缓冲液pH7.2。

（4）加样器（1μl～10μl）。

（5）45℃～50℃水浴恒温箱。

（6）吸管、试管、平皿。

（7）37℃培养箱。

2.1.8.3.3操作步骤

（1）抗（抑）菌溶液的配制：

以无菌操作取5ml或5g（固体研磨后）样品，放入45ml灭菌磷酸缓冲液中，充分震荡溶解，配成10%的均匀分散的溶液或悬液。

（2）含抗菌剂培养基配制：

将已配成10%的抗（抑）菌溶液或悬液用PBS做对倍系列稀释成不同浓度的受试液，置45℃～50℃水浴恒温备用。

（3）双倍浓度培养基配制：

称取76gMH琼脂培养基，溶于1000ml水中。

加热至沸腾溶解。

然后121℃压力蒸汽灭菌15min，置45℃～50℃水浴备用。

此培养基将用于稀释抗（抑）菌溶液或悬液。

（4）含抗（抑）菌液培养基的配制：

分别取10ml系列稀释的抗菌液加入平皿内。

将在45℃～50℃水浴中的双倍MH琼脂培养基10ml，加入平皿内，边加边摇晃平板，使抗（抑）菌液和培养基充分混匀，待凝固后备用。

（5）用加样器取1μl～2μl（含菌量约为107cfu/ml）菌悬液点种于含抗（抑）菌液培养基的平皿，接种后所形成的菌液圈直径约5mm～8mm（每个点菌量约为104cfu）。

（6）以同样方法接种不含抗（抑）菌成分的MH琼脂平板，作为阳性对照。

（7）将接种后的平板放置35℃培养箱中，倒置培养18h～24h，观察结果。

2.1.8.3.4评判规定

菌落生长被完全抑制的最低抗（抑）菌液浓度为该样品对受试菌的MIC。

单一菌落生长可忽略不计。

2.1.8.3.5注意事项

（1）接种时，应由低抗（抑）菌剂浓度向高浓度平板依次接种，最后接种对照平板。

（2）为了保证平板受热均匀，培养时平板堆放不得超过4个。

2.1.8.4最小抑菌浓度测定试验（营养肉汤稀释法）

2.1.8.4.1原理

本试验将不同浓度的抑菌剂混合溶解于营养肉汤培养基中，然后接种细菌，通过细菌的生长与否，确定抗（抑）菌剂抑制受试菌生长的最低浓度，即最小抑菌浓度（MinimalInhibitoryConcentration，MIC）。

本方法式用于可溶性抑菌产品。

2.1.8.4.2试验器材

（1）试验菌株：

（2）营养肉汤培养基，见附录A。

（3）稀释液，见附录A。

（4）吸管、试管

（5）37℃培养箱。

2.1.8.4.3操作步骤

（1）按2.1.1.2所示方法制备的金黄色葡萄球菌、大肠杆菌悬液

将抗（抑）菌溶液用蒸馏水做对倍系列稀释成不同浓度的受试液，取各稀释度受试液2.5ml加入到含2.5ml双倍浓度营养肉汤的试管中。

（3）取0.1ml含菌量约为108cfu/ml菌悬液接种于含抗（抑）菌剂的营养肉汤的试管中，作为试验组样本。

（4）以同样方法接种不含抗（抑）菌剂的营养肉汤的试管中，作为阳性对照组样本。

（5）取2支含营养肉汤的试管中，作为阴性对照组样本。

（6）将试验组样本、阳性对照组样本及阴性对照组样本放置37℃培养箱中，培养48h，观察结果。

（7）试验中应将试验用菌悬液进行活菌培养计数，其作用浓度应为5×

106cfu/ml。

2.1.8.4.4评判规定

当阳性对照管有细菌生长（混浊），阴性对照管无菌生长（透明），试验用菌悬液的作用浓度为5×

106cfu/ml时，试验组无菌生长的最高稀释度所对应的抗（抑）菌剂浓度，为该样品对受试菌的MIC。

2.1.8.4.5注意事项

接种时，应由低抗（抑）菌剂浓度向高浓度依次接种，

2.1.8.5滞留抑菌效果试验

2.1.8.5.1原理

本试验通过模拟适合细菌生长、繁殖和可能产生感染的皮肤条件下，使用随机性、双盲的、配对比较的方法检测抗（抑）菌香皂和抗菌沐浴露12h或24h的滞留抑菌效果。

2.1.8.5.2试验器材

（1）试验产品:

试验品为25套按顺序编号的香皂样品。

每套2块，一块为测试样品皂，另一块为不含抑菌剂的对照皂。

（2）不含抑菌剂的洗发水25瓶（200ml/瓶）

（3）不含抑菌剂的香皂25块

（4）胰蛋白酶大豆肉汤培养基（TSB）

（5）胰蛋白酶大豆琼脂培养基（TSA）

（6）0.075mol/L的磷酸盐缓冲液

（7）70%酒精

（8）恒温箱

（9）金属筒（直径2.2cm、高度3cm）

（10）一次性接种环（直径4mm）

（11）小塑料碗（直径2.2cm，高2.5mm，）

（12）胶带（Darapore，3M公司生产）

（13）尼龙刮菌棒

（14）Triton-X100 

500ml

（15）外用抗生素软膏（例如:

百多邦莫匹罗星软膏）

（16）玻璃弯棒

（17）羊血

（18）金黄色葡萄球菌ATCC27217（此株金黄色葡萄球菌是一种低毒性、对青霉素敏感、对四环素有抗药性的色素株，曾用于许多试验研究，没有任何严重副作用）。

（19）皮肤消毒剂

2.1.8.5.3试验步骤

（1）调整阶段

试验开始前7d至14d，受试者使用不含抗（抑）菌成分的香皂、洗发水和沐浴液进行日常的洗手、洗澡。

此阶段持续至少7d，但不超过14d。

（2）清洗阶段

清洗阶段共3d，受试者每天用抑菌皂清洗一侧前臂，用对照皂清洗另一侧前臂，清洗过程如下:

1）先清洗左臂，用流动水（水温应保持在35℃～37℃）打湿前臂内侧；

2）用香皂从手腕至臂肘上下摩擦15s；

3）用手在涂有香皂的手臂上上下摩擦泡沫45s；

4）用流动的清水冲洗前臂15s，不要搓擦；

5）用纸巾沾干前臂.不要搓擦；

6）重复以上步骤清洗右臂；

7）按上面所描述的试验步骤每日清洗前臂3次，每次间隔至少一个小时，在最后一次清洗之后，需记录好时间，在12h之后，进行滞留效果检测。

在第9次清洗前臂以后，受试者不能洗澡、淋浴或洗净前臂，直到试验结束。

用品包的标签上注明洗哪只手臂。

清洗前后的两块香皂的重量及受试者完成清洗的情况，须记录下来。

（3）试验阶段

清洗阶段的第四天（最后一次清洗后12h或24h），将在受试者每只前臂上划出一个试验区，对试验区进行接种、封包和回收存活细菌，具体步骤如下:

1）将金黄色葡萄球菌（ATCC27217）连续转种3代，取第3代培养物接种于胰蛋白大豆肉汤培养基（TSB）中，在35℃±

2℃的条件下培养20h±

2h。

然后用胰蛋白酶大豆肉汤适当稀释菌悬液，使菌悬液浓度约为108cfu/ml～109cfu/ml。

2）细菌接种:

在受试者的每只前臂中间部位（不要在手腕和肘皱褶处），用带有印墨直径为3.0cm的玻璃量筒扣在皮肤上，划分出一个试验区。

使用加样器取10μl上述菌悬液，接种于前臂试验区（菌落数为106cfu/试验区～107cfu/试验区），用一次性接种环，把接种物涂成一圆形，使其与试验区边缘应有4mm～5mm的距离。

3）封包:

细菌接种后立即用小塑料碗扣于染菌区上面，再用胶带将小塑料碗固定在皮肤上，记录封包的时间。

4）回收存活细菌：

接种后2h±

5min对前臂上接种的区域进行取样。

将金属筒放置于试验区中间部位，不要接触到盖有印墨的边缘。

将1ml含0.1%triton-X100的0.075mol/L磷酸盐缓冲液吸移至金属筒内，用尼龙刮菌棒刮洗金属筒罩住区域内的皮肤60s，将筒内液体吸移至试管内，再加1ml含0.1%tritonX-100的0.075mol/L磷酸盐缓冲液，对该区域内的皮肤进行第2次刮洗30s，将第2次擦洗的液体，注入含第1次刮洗液体的试管中。

5）实验区试验后的消毒处理:

一个实验区采样之后，需用70%的酒精对实验区进行消毒。

然后对另一个实验区以同样方法进行采样，采样结束后，先用70%的酒精对实验区进行消毒，然后用皮肤消毒剂对两只前臂进行消毒处理，处理后清水冲洗，擦干，再涂少量的抗生素软膏。

6）平皿接种与培养:

对每一个取样进行平皿接种，以0.0375mol/L磷酸盐缓冲液对样品进行10倍系列稀释，选适当稀释度取0.1ml接种于2个含5%羊血的TSA平板表面，用玻璃弯棒涂匀，在35℃±

2℃的培养箱中培养48h±

4h，计数菌落数。

7）抑菌率的计算

抑菌率=[（对照平均菌落数－试验平均菌落数）/对照平均菌落数]×

100%

2.1.8.5.4 

判定标准

试验不得少于16人次，抑菌率≥50%，可判定该产品在规定的时间内有滞留抑菌作用。

2.1.8.5.5注意事项

（1）受试者录用标准

①年龄介于18岁至65岁的男性或女性；

②受试者应身体健康；

③前臂应完好无损且没有皮肤病及其它皮肤问题；

④同意在整个试验期间，避免使用抗（抑）菌洗液和乳膏、局部类固醇类药和全身或局部使用抗生素，除非因为并发病症医生要求使用；

⑤同意在清洗阶段使用非药物香皂或洗液洗澡和淋浴，但受试者不能清洗前臂。

在第9次洗完前臂以后，不洗澡，淋浴或洗净前臂，直到试验结束。

（2）排除受试者的标准 

如果受试者有下列情况之一，不能被录用参加试验

①同时参加另外一个临床试验

②在过去的14d中，参加过任何一种形式的关于清洁手或手臂的试验

③对香皂、去污剂、香水或青霉素过敏

④怀孕妇女

⑤诊断患有糖尿病、肝炎、艾滋病（HIV阳性）、器官移植者，

（3）其它试验限制

①受试者不得使用其它清洁用品；

②受试者应避免洗热水盆浴和游泳；

③受试者应避免接触未干的油漆、涂料或者其它溶剂；

④受试者应避免在手腕处和前臂上喷洒香水。

（4）在试验完成后的48h～72h内，需检查前臂上有无小脓疱、水疱，隆起的红色痒疱。

出现这些情况的受试者应尽快通知检验单位。

2.1.8.6洗衣粉抗（抑）菌效果鉴定方法8

2.1.8.6.1原理

本方法通过模拟洗衣机的洗衣过程，检测抗（抑）菌洗衣粉（剂）的抗菌作用。

2.1.8.6.2 

试验器材 

（1）试验菌株

大肠杆菌ATCC11229，金黄色葡萄球菌 

ATCC6538。

（2）培养 

基

营养琼脂（琼脂含量为1.5%）

营养琼脂A：

在营养琼脂中另加入1.5%的琼脂。

TSA营养肉汤。

（3）牛血清白蛋白（过滤除菌）

（4）烷基酚聚氧乙烯醚（Tergitol）

（5）碳酸钠 

（6）标准 

硬水

（7）非离子浸湿剂：

见测试棉布制备部分

（8）冲洗溶液 

（9）中和剂（经中和剂鉴定试验合格）

（10）吐温80 

（过滤除菌）

（11）去离子水或蒸馏水灭菌

（12）不锈钢转轴（由一条直径0.16cm不锈钢丝制成，如图2-2）

俯视图 

侧面图

图2-2 

缠绕测试布条的不锈钢转轴

（13）有金属螺盖的玻璃罐（容积为470ml，可高压灭菌，并可放入转轴的广口罐），将罐口覆盖牛皮纸，加盖，于121C灭菌25min 

备用。

（14）转动速 

度为45r/min～60r/min的滚 

动摇床

（15）可调恒温水浴箱

（16）吸管（1ml，5ml，和10ml）

（17）培养皿

（18）铺有滤纸 

的玻璃培养皿。

（29）菌种保存管

（20）细菌培养箱

（21）涡流振荡器

（22）细菌比浊仪

（23）棉布（32支纱/cm×

32支纱/cm平织棉布）

（24）别针、镊子、无菌手套、3mm～5mm玻璃珠、秒表、载体布片2.5cm×

3.75cm，见测试棉布准备。

2.1.8.6.3实验准备

（1）测试棉布的制备

①非离子浸润剂的制备：

取5g烷基酚聚氧乙烯醚，5g碳酸钠加入到1L去离子水中。

②洗涤液的制备：

1.5g非离子浸润剂，1.5g碳酸钠，加入到3L去离子水中。

将大约300g测试棉布加入3L洗涤溶液。

加热煮沸1h。

取出棉布在煮沸的去离子水中清洗 

5min。

然后放入凉去离子水中 

5min。

以去除残留 

的浸润剂。

然后将棉布晾干。

（2）测试棉布和转动支架的准备：

取处理过的棉布，剪成5cm宽，重量为15g1g的布条，将其一端插入固定在测试转动支架的水平方向的外边，然后在3条水平支架间以足够的张力缠绕12个整圈，将布条的另一端用不锈钢别针固定在前一圈布条上。

最后以

121℃压力蒸汽灭菌15min，备用。

（3）细菌悬液的制备：

取0.5ml营养肉汤冻干 

的菌种溶解，接种于含10ml 

的营养肉汤的试管，于35C2C培养24h。

然后，振荡混合均匀。

用10μl接种环在营养琼脂平板上划线，置于35C2C培养24h。

然后，从 

平板上挑取单个菌落种入菌种保藏管中，上下摇动10次，吸弃多余液体，置－80C冰箱保存。

试验前，从菌种保藏管中取出1粒带菌小颗粒放入营养琼脂斜面，晃动斜面。

将斜面至35℃培养24h。

每天转种1次，连续传3代。

第四天，用5mlPBS洗脱斜面上的菌苔，取0.5ml加入到含9.5mlPBS的试管中，混匀，取1ml～2ml加入含有20ml营养琼脂B的细胞培养瓶中，晃动培养瓶使菌液覆盖整个琼脂表面。

吸弃多余菌液，然后将培养瓶倒置平放在35℃培养箱中，培养24h。

用5mlPBS和3g灭菌玻璃珠洗脱细胞瓶中的菌体，用PBS调整浓度至1×

108cfu/ml～5×

108cfu/ml，然后加入3%的牛血清白蛋白。

（4）染菌载体的制备：

每片载体接种20μl菌悬液，放回培养皿中，加盖，于35℃2℃在培养箱中干燥20min。

（5）测试样品的制备：

至少在实验开始前20min，将盛有265ml硬水的玻璃罐在水浴箱中恒温至测试温度（25℃1℃）。

加入被测试样品混合溶解。

2.1.8.6.4 

试验步骤

（1）将两片染菌载体放入转动支架的第6和7层布条之间，将第3片放入第7和8层布条之间。

（2）以无菌操作方式将转动单元（支架、布条和染均载体）放入含有测试产品的玻璃罐中，加盖。

（3）玻璃罐固定在摇床上，滚动旋转洗涤20min，取下玻璃罐。

（4）以无菌操作方式，取出转动单元，取出3片染菌载体，放入到含有30ml中和剂（在测试抗菌产品的抗菌作用时，不加中和剂，只加入含0.5%吐温80的PBS）的试管中，在振荡器中混合10s。

然后振打200次，用PBS做10倍系列稀释，并选择适宜稀释度样液接种TSA平板。

每个稀释度接种两个平板。

（5）对照组除用0.5%（V/V）的吐温80替代测试产品外，其它实验条件和步骤均与试验组相同。

（6）菌数对照:

将3片染菌载体加入含有30ml0.5%吐温80的PBS试管中，在振荡器振荡10s，然后振打200次，用PBS做10倍系列稀释，并取适宜稀释度样液1.0ml，以倾注法接种TSA平板，每个稀释度接种两个平板。

（7）将试验组、对照组和菌数对照组平板倒置于35℃±

2℃培养箱中，培养48h±

4h，计数菌落数。

（8）结果计算

试验重复3次。

记录并计算测试样品的细菌总数的对数值， 

求其平均值.。

2.1.8.6.5 

评价规定

按2.1.7.4.3（7）的方法计算抑菌率，抑菌率达到50%可判为该抗菌合格；

按2.1.1.7.4（6）方法计算杀灭对数值。

杀灭对数值≥3.00，可判定该产品为消毒合格。

2.1.8.6.6注意事项

（1）将旋转单元放入玻璃罐后应将盖子盖紧，以防转动时漏水。

（2）试验时应严格无菌操作，以防止杂菌污染。

2.1.8.7振荡烧瓶试验

2.1.8.7.1原理

在液体中通过快速长时间振荡，增加微生物与抗（抑）菌产品内抑菌剂的接触以显示其抑菌作用。

试验根据抑菌率大小判断其是否具有抑菌能力。

本试验适用于对非溶出性抗（抑）菌织物的鉴定。

2.1.8.7.2试验器材

（1）金黄色葡萄球菌（ATCC6538）、大肠杆菌（8099）、白色念珠菌（ATCC10231）菌悬液的制备方法见2.1.1.2。

根据抑菌剂特定用途也可用其他菌悬液。

（2）磷酸盐缓冲液（PBS，0.03mol/L，pH值7.2～7.4）

（3）振荡摇床（300r/min）

（4）三角烧瓶

（5）营养琼脂培养基、胰蛋白胨大豆琼脂培养基（TSA）与沙堡琼脂培养基

2.1.8.7.3操作程序

（1）将抗菌物品剪切成10mm×

10mm样片，称取0.75g分装包好。

（2）将0.75g样片放入250ml的三角烧瓶中，分别加入70mlPBS和5ml菌悬液，使菌悬液在PBS中的浓度为1×

104cfu/ml～5×

104cfu/ml。

（3）将三角烧瓶固定于振荡摇床上，在作用温度为20℃～25℃的