兔动脉血压的调节实验报告.docx

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兔动脉血压的调节实验报告

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兔动脉血压的调节实验报告

　　篇一：

机能实验报告家兔血压调节

　　实验报告

　　实验次序：

一实验项目：

家兔血压调节

　　班级：

11临本姓名：

符宏展学号：

112号

　　实验类型（打√）：

（基础□综合□设计□）

　　二、实验操作原始（数据）记录及实验结果的分析

　　实验时间：

20XX年4月11日（星期四晚上19:

00~22:

00）

　　马健明符宏展朱佛妹叶超群黄小花张鹏黄锦霞

　　篇二：

家兔动脉血压的神经体液调节实验报告

　　[目的与要求]

　　1学习直接测定家兔动脉血压的急性实验的方法

　　2观察神经,体液因素对心血管活动的影响

　　[基本原理]

　　在正常人体内,任何高等动物的动脉血压时相对稳定的.这种相对稳定是通过神经和体液调节来实现的,其中以静动脉窦-主动脉弓压力感受性反射最为重要.此反射即可使升高的血压下降,又可使降低血压升高,故有血压缓冲反射之称.家兔的主动脉神经在解剖上独成一支,易于分离与观察起作用

　　本实验是应用液导系统直接测定动脉血压,即由动脉插管与压力传感器连通,其内充满抗凝液体,构成液导系统,将动脉插管插入动脉,动脉内的压力及其变化,可通过封闭的液导系统传导压力感受器,由计算机采集系统记录下来

　　[动物与器材]

　　家兔,手术台,常用手术器械,止血钳,眼科剪,支架,双凹管,气管插管,动脉插管,三道管,动脉夹,计算机采集系统,压力传感器,保护电极,照明灯,纱布,棉球,丝线,注射器（1ml,5ml,20ml）,生理盐水,4%柠檬酸钠,20%-25%氨基甲酸已酯,肝素（200u/ml）,肾上腺素（1:

5000）,已酰胆碱（1:

10000）

　　【方法与步骤】

　　1、实验仪器的准备

　　打开计算机采集系统，接通压力传感器。

从显示器的“实验项目”中找出“循环实验”的“家兔血压的调节”条，使显示器显示压力读数。

　　2、连通液导系统并制压

　　将压力传感器的下方支管，通过输液管连接三通管，再连接动脉插管。

上侧管供制压时排除管内空气使用。

先用装有20ml4%柠檬酸钠的注射器，通过三通管向连接动脉插管的输液管内推注，使之充满液体（不要使动脉插管高过压力传感器的上方支管）后，再用止血钳夹住动脉插管端的输液管。

然后继续向三通管内推注，直至充满压力传感器的上方支管，并用塞子塞住（注意：

液导系统内不可有气泡）。

继续向三通管内推注，同时观察显示器上压力变化。

当加压到120mmhg时既可关闭三通管。

观察压力是否变化，如果压力下降，则需要检查液导系统的漏液原因，并重新制压。

调节血压显示器的灵敏度，使30~130mmhg的变化都能在显示器上明显的反映出来。

将动脉插管端的导管内充满肝素溶液。

　　3、动物的准备

（1）按照实验4-9方法，麻醉家兔并进行颈部手术，插入气管插管、分离主动脉神经。

同时分离迷走神经并穿线备用。

再将止血钳从颈总动脉下方穿过，轻轻张开止血钳，分离出2~3cm长的颈总动脉。

分离出的颈总动脉外壁应该十分光洁，外面并无结缔组织及脂肪等物。

在动脉上穿两条备用棉线，分别打上活结。

将两线分别拉至分离出的动脉两端备用。

同样方法分离另一侧血管与神经（一侧动脉用于插管侧压，另侧动脉实验用）。

由于家兔的品种不同，个体之间也有差异，常发现3条神经的解剖位置有些变异。

主动脉神经的最后确认，蓄意对血压的影响为准。

（2）动脉插管首先用5ml注射器从耳缘静脉注入肝素（200u？

kg体重）以防凝血。

然后在一侧动脉行动脉插管术以记录血压。

其方法如下：

　　将动脉头端的备用线尽可能靠头端结扎（务必扎紧，以防渗血），然后在另一备用线的向心侧（尽可能近心端），用动脉夹夹闭。

轻轻提起动脉头端的结扎

　　线，用锐利的眼科剪在靠近扎线的稍后方，沿向心方向斜向剪开动脉上壁（注意：

不可只剪开血管外膜，也切勿剪断整个动脉，剪口大小约为管径的一半）。

一手持弯头眼科镊，将其一个弯头从剪口处插进动脉少许，轻轻挑起剪开的动脉上壁，另一手将准备好的动脉插管由开口处插入动脉管内。

如果插入较浅，可用一手轻轻捏住进入插管的动脉管壁，另一手拿住动脉插管，顺势轻轻推进至6~8mm左右（如果手感滞涩，说明插管并未进入动脉，必须退出插管，重新剪口再插），用备用线将动脉连同进入的插管扎紧（插管不可因扎线松动而滑出，亦不可漏液），并将余线系在插管的固定侧支上，以免滑脱。

注意：

插管应与动脉血管的方向一致，以防插管尖端扎破动脉管壁。

轻轻取下向心端动脉夹，可见动脉血与插管内液体混合。

再取下通向压力传感器的止血钳，此时显示器上出现血压的波动曲线。

　　4、实验观察

（1）观察正常血压曲线调节扫描速度与增益，可以明显地观察到心室射血与主动脉回缩形成的压力变化与收缩压、舒张压的读数。

有时可以观察到血压曲线随呼吸变化，心搏为一级波，呼吸波为二级波。

然后将扫描速度调慢，观察正常血压曲线。

（2）轻轻提起对侧完好颈总动脉上的备用线，用动脉夹夹闭30s（于夹闭前记录动脉通畅时的血压曲线），观察并记录血压变化。

出现变化后即取下动脉夹，记录血压的恢复过程。

　　（3）记录对照血压曲线后，用手指按压颈动脉窦（下颌下方内侧），观察并记录血压变化。

当血压明显下降时，则停止按压，待血压恢复（如果血压反而升高，说明按压的是血管，需重新寻找按压位置）。

　　（4）刺激主动脉神经使刺激输出端连接保护电极，轻轻提起主动脉神经上的备用线，小心地将神经置于保护电极之上。

记录对照血压曲线后，再用中等强度的连续电脉冲信号，通过保护电极，刺激神经10~20s。

血压出现明显下降后即可停止刺激，并待血压恢复。

如果血压并不下降，可调整刺激强度或刺激频率再行刺激。

任何刺激都无效时，则表示此神经并非主动脉神经。

需要重新辨认神经后再行实验。

　　（5）分别刺激主动脉神经中枢端和外周端双结扎主动脉神经后（务必结扎），从两扎线结之间剪断神经。

记录对照血压后，同法分别刺激神经的中枢端和外周端，观察并记录血压变化。

　　（6）刺激迷走神经记录对照血压后，用同样的方法刺激迷走神经，观察血压下降曲线与（4）有何不同（如果血压下降很快、很低，应立即停止刺激）。

　　（7）结扎并剪断迷走神经同时结扎双侧迷走神经后剪断，观察血压有何变化。

　　（8）刺激迷走神经外周端分别刺激两侧迷走神经外周端，观察并记录血压变化有何不同。

　　（9）肾上腺素对血压的影响记录对照血压曲线后，用1ml注射器，从耳缘静脉注入0.1~0.3ml肾上腺素溶液，观察并记录血压变化及恢复曲线。

　　（10）乙酰胆碱对血压的影响同法注入0.1~0.2ml乙酰胆碱溶液，观察并记录注射前后血压变化。

　　（11）失血对血压的影响从另一侧动脉插管后慢慢放血，观察放血量对血压的影响。

　　5、整理实验结果，并将实验结果填入下表

　　家兔血压实验记录表

　　篇三：

家兔血压调节实验报告

　　实验报告

　　专业班级：

康复治疗技术2班实验小组：

第四组姓名：

卢锦锟实验日期：

20XX年11月10日

（一）实验项目：

家兔动脉血压调节

（二）实验目的：

　　1、掌握神经体液因素及受体阻断或兴奋药物对家兔心血管活动的影响机制。

　　2、掌握动脉血压作为心血管功能活动的综合指标及其相对恒定的调节原理和重要意义。

　　3、掌握家兔实验的基本方法和技术（静脉麻醉、静脉输液、动脉插管、分离神经等）。

　　4、掌握压力生物信号采集与处理系统的使用。

　　（三）基本原理：

（要求对写出关键点）

　　动脉血压是心血管功能活动的综合指标。

正常心血管的活动在神经、体液因素的调节下保持相对稳定，动脉血压相对恒定。

动脉血压的相对恒定对于保持各组织、器官正常的血液供应和物质代谢是极其重要的。

通过实验改变神经、体液因素或施加药物，观察动脉血压的变化，间接反映各因素对心血管功能活动的调节或影响。

　　实验仪器与试剂：

bL-420生物信号采集与处理系统、血压换能器、刺激电极、哺乳类动物手术器械、注射器（5mL、1mL）等；3%戊巴比妥钠、0.3%肝素、1:

10000盐酸肾上腺素、1:

10000去甲肾上腺素、1:

1000异丙肾上腺素、0.01%多巴胺、1%酚妥拉明、0.01%普萘洛尔、0.001%乙酰胆碱、0.01%阿托品

　　1、夹闭颈总动脉血压升高，心跳加快。

这是由于颈动脉窦管壁的外膜下分布有丰富的感觉神经末梢，是动脉张力感受器。

这个感受器位于兔颈总动脉的远心端，颈内动脉与颈外动脉的分叉交界处。

夹闭颈动脉后，远心端的颈动脉窦张力感受器感受到血压下降，传出神经冲动的频率减慢。

信息沿窦神经上传至延髓孤束核心血管中枢。

使心迷走紧张减弱，心交感和心缩血管紧张加强，作用于心脏，使心率加快，心输出量增加，血管收缩，血管外周阻力增加。

从而血压恢复性升高。

若血压下降过大，交感缩血管紧张还会扩展到静脉系统，是静脉收缩，促进血液回心，使每博输出量增加。

　　2、静脉注射0.01%重洒石酸去甲肾上腺素：

去甲肾上腺素与血管平滑肌上的α和β2受体结合，使血管收缩，管径变小，外周阻力增加，从而使平均动脉压升高。

此外，去甲肾上腺素还可以使心率增加，心收缩力变大，因此血压升高。

　　3、静脉注射0.005%盐酸异丙肾上腺素：

异丙肾上腺素能与骨骼肌血管β2受体结合，骨骼肌血管（在全身血管中比例较大）持续舒张抵消了皮肤粘膜血管的收缩作用，因而出现后降压作用。

　　4、静脉注射0.01%盐酸肾上腺素：

肾上腺素能与心肌β1受体结合激动心肌心肌收缩力增强，因此心率加快，传导加速，心排出量增多而导致收缩压升高。

肾上腺素能激动腹腔内脏血管α1受体，使动腹腔内脏血管收缩，血压升高。

　　5、静脉注射1%酚妥拉明：

α受体阻断剂，α受体的作用：

α受体为传出神经系统的受体，根据其作用特性与分布不同分为两个亚型:

α1、α2。

　　α1受体主要分布在血管平滑肌（如皮肤、粘膜血管，以及部分内脏血管），激动时引起血管收缩;α1受体也分布于瞳孔开大肌，激动时瞳孔开大肌收缩，瞳孔扩大。

　　α2受体主要分布在去甲肾上腺素能神经的突触前膜上，受体激动时可使去甲肾上腺素释放减少，对其产生负反馈调节作用。

　　（四）实验主要设备和仪器、药品和用品（要求分类、简洁、清晰表述）

　　1、仪器设备：

婴儿秤、兔手术台、哺乳动物手术器械一套，bL-420生物机能实验系统，动脉夹、压力换能器等；

　　2、试剂用品：

20%氨基甲酸酯（5mL/kg）、1%去甲肾上腺素、1%肝素、生理盐水、1g/L异丙肾上腺素、1g/L酚妥拉明、5mL、10mL、20mL注射器各一支、三通管、插管、小烧杯等；

　　（五）实验的步骤与方法（列出主要步骤、方法要点）

　　1、动物手术：

（1）、麻醉、固定：

家兔称重后，按5mL/kg从耳缘静脉缓慢注射20%氨基甲酸酯。

将家兔麻醉后，使其仰卧固定在兔手术台上。

（2）颈部手术：

颈部备皮，沿颈前正中切开皮肤5~6cm，分离气管并做气管插管。

分离两侧的迷走神经，穿线备用。

手术完毕后，用温生理盐水纱布覆盖手术野。

分离左侧颈总动脉、右侧颈外静脉，分别备线。

　　（3）插管肝素化后，行右侧颈外静脉插管，通过三通管接动脉血压描记检测装置，然后静脉注射1%全身肝素（按2mL/kg为标准）让家兔全身肝素化。

　　2、实验装置：

（1）准备检压系统：

将动脉插管于压力换能器相连，通过三通管用1%肝素化充满动脉插管和压力换能器，排尽里面的气泡，然后关闭三通管备用。

（2）将记录动脉的压力换能器连接在bL-420生物机能实验系统的通道1上，描记动脉血压。

　　（3）打开计算机，启动bL-420生物机能实验系统，点击系统菜单，选择实验项目，调整相关参数。

　　3、实验观察与记录：

（1）记录正常曲线；

（2）夹闭右侧颈总动脉，观察曲线变化；

　　（3）静脉给药：

　　①按0.1mL/kg静脉注射0.01%重洒石酸去甲肾上腺素

　　②按0.1mL/kg静脉注射0.005%盐酸异丙肾上腺素

　　③按0.1mL/kg静脉注射0.01%盐酸肾上腺素

　　④按0.2mL/kg静脉注射1%酚妥拉明

　　⑤按0.1mL/kg静脉注射0.01%肾上腺素

　　（六）实验参考指导（相关教材、参考资料、学习网站等）