SDSPAGE测定蛋白质相对分子质量实验报告Word文档格式.docx
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浓缩胶的作用是有堆积作用，凝胶浓度较小，孔径较大，把较稀的样品加在浓缩胶上，经过大孔径凝胶的迁移作用而被浓缩至一个狭窄的区带。
当样品液和浓缩胶选TRIS/HCl缓冲液，电极液选TRIS/甘氨酸。
电泳开场后，HCl解离成氯离子，甘氨酸解离出少量的甘氨酸根离子。
蛋白质带负电荷，因此一起向正极移动，其中氯离子最快，甘氨酸根离子最慢，蛋白居中。
电泳开场时氯离子泳动率最大，超过蛋白，因此在后面形成低电导区，而电场强度与低电导区成反比，因而产生较高的电场强度，使蛋白和甘氨酸根离子迅速移动，形成一稳定的界面，使蛋白聚集在移动界面附近，浓缩成一中间层。
此鉴定方法中，蛋白质的迁移率主要取决于它的相对分子质量，而与所带电荷和分子形状无关。
聚丙烯酰胺凝胶电泳作用原理
聚丙烯酰胺凝胶为网状构造，具有分子筛效应。
它有两种形式:
非变性聚丙烯酰胺凝胶电泳（Native-PAGE）及SDS-聚丙烯酰胺凝胶（SDS-PAGE）;
非变性聚丙烯酰胺凝胶，在电泳的过程中，蛋白质能够保持完整状态，并依据蛋白质的分子量大小、蛋白质的形状及其所附带的电荷量而逐渐呈梯度分开。
而SDS-PAGE仅根据蛋白质亚基分子量的不同就可以分开蛋白质。
该技术最初由shapiro于1967年建立，他们发现在样品介质和丙烯酰胺凝胶中参加离子去污剂和强复原剂（SDS即十二烷基硫酸钠）后，蛋白质亚基的电泳迁移率主要取决于亚基分子量的大小（可以忽略电荷因素）。
二、实验目的
1.学习SDS-PAGE测定蛋白质分子量的原理。
2.掌握垂直板电泳的操作方法。
3.运用SDS-PAGE测定蛋白质分子量及染色鉴定。
三、实验原理
1.电泳
带电颗粒在电场作用下，向着与其电荷相反的电极移动的现象。
在一定的电场强度下，分子在凝胶介质中的迁移速率取决于分子的大小、构型和带电量的大小。
2.PAGE
聚丙烯酰胺凝胶〔PAG〕是由单体丙烯酰胺（Acr）和交联剂甲叉双丙烯酰胺（Bis）在加速剂四甲基乙二胺（TEMED）和引发剂过硫酸铵（AP）的作用下聚合交联而成的三维网状构造的凝胶。
以此凝胶作为支持介质的电泳称为PAGE。
PAGE具有电泳和分子筛的双重作用。
PAG机械强度好，有弹性，透明，化学性质稳定，改变Acr浓度或Acr与Bis的比例可以得到不同孔径的凝胶。
PAGE分为连续系统和不连续系统两大类。
连续系统电泳体系中缓冲液pH值与凝胶中的一样.带电颗粒在电场作用下，主要靠电荷和分子筛效应。
不连续系统中带电颗粒在电场中泳动不仅有电荷效应、分子筛效应，还具有浓缩效应，因而其别离条带清晰度及分辨率均较前者佳。
3.SDS-PAGE根本原理
SDS-PAGE是在蛋白质样品中参加SDS和含有巯基乙醇的样品处理液，SDS是一种很强的阴离子外表活性剂，它可以断开分子和分子间的氢键，破坏蛋白质分子的二级和三级构造。
强复原剂巯基乙醇可以断开二硫键破坏蛋白质的四级构造。
使蛋白质分子被解聚成肽链形成单链分子。
解聚后的侧链与SDS充分结合形成带负电荷的蛋白质-SDS复合物。
蛋白质分子结合SDS阴离子后，所带负电荷的量远远超过了它原有的净电荷，从而消除了不同种蛋白质之间所带净电荷的差异。
蛋白质的电泳迁移率主要决定于亚基的相对分子质量。
而与其所带电荷的性质无关。
当蛋白质的分子量在17,000～165,000之间时，蛋白质-SDS复合物的电泳迁移率与蛋白质分子量的对数呈线性关系：
lgMW=K-bm
将分子量的标准蛋白质在SDS-PAGE中的电泳迁移率对分子量的对数作图，即可得到一条标准曲线。
只要测得未知分子量的蛋白质在一样条件下的电泳迁移率，就能根据标准曲线求得其分子量。
四、实验器材和材料试剂
仪器:
垂直板型电泳槽;
直流稳压电源;
50或100μl微量注射器、玻璃板、水浴锅，染色槽;
烧杯;
吸量管;
常头滴管等。
原料:
低分子量标准蛋白质按照每种蛋白0.5-1mgml-1样品溶解液配制。
可配制成单一蛋白质标准液，也可配成混合蛋白质标准液。
试剂:
（1）别离胶缓冲液（Tris-HCl缓冲液PH8.9）:
取1mol/L盐酸48mL，Tris36.3g,用无离子水溶解后定容至100mL；
（2）浓缩胶缓冲液（Tris-HCl缓冲液PH6.7）:
取1mol/L盐酸48mL,Tris5.98g,用无离子水溶解后定容至100mL；
（3）30%别离胶贮液:
配制方法与连续体系一样，称丙烯酰胺（Acr）30g及N，N’-甲叉双丙烯酰胺（Bis）0.8g，溶于重蒸水中，最后定容至100ml，过滤后置棕色试剂瓶中，4保存；
（4）10%浓缩胶贮液:
称Acr10g及Bis0.5g，溶于重蒸水中，最后定容至100mL，过滤后置棕色试剂瓶中，4贮存；
（5）10%SDS溶液:
SDS在低温易析出结晶，用前微热，使其完全溶解；
（6）1%TEMED;
（7）10%过硫酸铵（AP）:
现用现配；
（8）电泳缓冲液（Tris-甘氨酸缓冲液PH8.3）:
称取Tris6.0g,甘氨酸28.8g,
SDS
1.0g,用无离子水溶解后定容至1L；
（9）样品溶解液:
取SDS100mg，巯基乙醇0.1mL，甘油1mL，溴酚蓝2mg，0.2mol/L，pH7.2磷酸缓冲液0.5mL，加重蒸水至10mL（遇液体样品浓度增加一倍配制）。
用来溶解标准蛋白质及待测固体；
（10）染色液:
0.25g考马斯亮蓝G-250，参加454mL50%甲醇溶液和46mL冰乙酸即可；
（11）脱色液:
75mL冰乙酸，875mL重蒸水与50mL甲醇混匀。
五、实验操作
1.制胶玻板的清洗
用海绵和洗涤剂轻柔地清洗，严禁使用刷子和颗粒状的去污粉与洗衣粉，完全冲洗干净后烘干。
2.垂直板电泳槽
3.凝胶的制备
①别离胶的制备
配制12%别离胶。
在烧杯中依次参加重蒸水3.35ml,别离胶缓冲液〔1.5mol/LTris-HCl,pH8.8〕2.5ml,10%SDS0.1ml,凝胶储藏液4.0ml，10%过硫酸铵50ul和TEMED10ul。
由于AP和TEMED相遇后凝胶即开场聚合，所以应立即混匀混合液，用移液枪抽取凝胶液加至长、短玻璃板间的窄缝，留出梳齿的齿高加1cm的空间停顿灌胶，小心覆盖一层蒸馏水，37℃烘箱下聚合〔约30min〕。
待别离胶聚合完全后，除去覆盖的蒸馏水。
②浓缩胶的制备
配制5%浓缩胶。
在烧杯中依次参加重蒸水2.92ml,浓缩胶缓冲液（0.5mol/LTris-HCl,pH6.8）1.25ml,10%SDS0.05ml,凝胶储藏液0.8ml，10%过硫酸铵25ul和TEMED10ul。
由于AP和TEMED相遇后凝胶即开场聚合，所以应立即混匀混合液，用移液枪抽取凝胶液加至长、短玻璃板间的窄缝，灌满后小心插入梳齿，防止混入气泡，37℃烘箱下聚合〔约30min〕。
4.蛋白质样品的处理
①标准蛋白质样品的处理
低分子量标准蛋白试剂盒:
兔磷酸化酶BMW=97,400
牛血清白蛋白MW=66,200
牛碳酸酐酶MW=31,000
胰蛋白酶抑制剂MW=20,100
鸡蛋清溶菌酶MW=14,400
后，沸水浴中加热3-5min后上样。
②样液的准备
用移液枪小心吸取处理好的血清50ul至1.5ml的离心管中，再参加50ul上样缓冲液，混匀后沸水浴中加热3min，取出冷却后加样。
5.加样
用移液器分别取5μl样品液，小心将样品加到凝胶凹形样品槽底部。
6.电泳
将电泳仪的正负极与电泳槽正负极相连接，翻开电泳仪开关，设置电压为200V，电泳60mins,此时溴酚蓝染料到达凝胶底部，停顿电泳，关闭电源。
7.染色与脱色
电泳完毕后，取下玻板，在自来水下用特制板撬开短玻璃板，从凝胶板上切下一角作为加样标记，在两侧溴酚蓝染料区带中心，插入细铜丝作为前沿标记。
参加染色液染色60mins，再用脱色液脱色，直至蛋白质区带清晰，即可计算相对迁移率。
8.结果处理
量出加样端距细铜丝间的距离（cm）以及各蛋白质样品区带中心与加样端的距离（cm），按下式计算相对迁移率mR：
六、实验结果及数据处理
1.实验现象：
脱色完毕后，经观察可知，点有maker的孔跑出来的有5个清晰笔直的条带，迁移率由低到高排列这5个条带分别是分别是兔磷酸化酶B、牛血清白蛋白、牛碳酸酐酶、胰蛋白酶抑制剂、鸡蛋清溶菌酶。
点有血清蛋白的点样孔跑出的结果在别离胶与浓缩胶交界处出现一大团成分未知着色团，经教师讲解并且上网查阅资料得知这种现象可能是所谓的"
鬼带〞现象。
"
鬼带〞就是在跑大分子构象复杂的蛋白质分子时，常会出现在泳道顶端（有时在浓缩胶中）的一些大分子未知条带或加样孔底部有沉淀。
出现这种现象主要由于复原剂在加热的过程中被氧化而失去活性，致使原来被解离的蛋白质分子重新折叠结合和亚基重新缔合，聚合成大分子，其分子量要比目标条带大，有时不能进入别离胶。
但它却于目标条带有一样的免疫学活性，在WB反响中可见其能与目标条带对应的抗体作用。
处理方法为：
在加热煮沸后，再添加适量的DTT或Beta巯基乙醇，以补充缺乏的复原剂;
或可加适量EDTA来阻止复原剂的氧化。
除此之外还观察到存在"
拖尾现象〞。
这主要是样品融解效果不佳或别离胶浓度过大引起的。
处理方法：
加样前离心;
选择适当的样品缓冲液，加适量样品促溶剂;
电泳缓冲液时间过长，重新配制;
降低凝胶浓度。
2.实验数据处理：
溴酚蓝区带距加样端距离：
5.45cm待测样品迁移距离：
5.18cm
迁移距离〔cm〕
2.18
2.78
3.12
4.03
5.09
迁移率m
0.40
0.51
0.57
0.74
0.93
MW
97400
66200
31000
20210
14400
lgMW
4.99
4.82
4.49
4.30
4.16
由公式：
lgMW=K-bm
可得：
即：
当m=5.18/5.45=0.95时，lgMW=5.27，则：
MW≈10965
因此待测样品的相对分子质量约为10965。
七、思考题
1.在上样缓冲液中SDS、巯基乙醇、甘油及溴酚蓝的作用分别是什么.
答：
SDS使蛋白质变性,用于确定蛋白分子量的聚丙烯酰胺凝胶电泳，也可以用于核酸抽提操作中破坏细胞壁及裂解核酸-蛋白复合物，在乳液聚合反响中，可充当两相溶液的乳化剂；
巯基乙醇用于翻开二硫键的，使蛋白质的四级或三级构造被破坏；
甘油使样品处于下面，不易飘起，并有保护作用；
溴酚蓝用于显色。
2.在SDS-PAGE中,别离胶中的TEMED和AP的作用是什么"
过硫酸铵〔AP〕为催化剂，四甲基乙二胺〔TEMED〕为加速剂。
3.样品液为何在加样前需在沸水中加热几分钟"
样品液在沸水中加热以除掉混在其中的一些小亚基，以免影响跑胶效果。
八、实验本卷须知
1.不是所有的蛋白质都能用SDS-凝胶电泳法测定其分子量，已发现有些蛋白质用这种方法测出的分子量是不可靠的。
包括:
电荷异常或构象异常的蛋白质，带有较大辅基的蛋白质（如*些糖蛋白）以及一些构造蛋白如胶原蛋白等。
例如组蛋白F1，它本身带有大量正电荷，因此，尽管结合了正常比例的SDS，仍不能完全掩盖其原有正电荷的影响，它的分子量是21,000，但SDS-凝胶电泳测定的结果却是35,000。
因此，最好至少用两种方法来测定未知样品的分子量，互相验证。
2.有许多蛋白质，是由亚基（如血红蛋白）或两条以上肽链（如α-胰凝乳蛋白酶）组成的，它们在SDS和巯基乙醇的作用下，解离成亚基或单条肽链。
因此，对于这一类蛋白质，SDS-凝胶电泳测定的只是它们的亚基或单条肽链的分子量，而不是完整分子的分子量。
为了得到更全面的资料，还必须用其它方法测定其分子量及分子中肽链的数目等，与SDS-凝胶电泳的结果互相参照。
九、实验结果误差分析及讨论
本次试验主要是让我们学习SDS-PAGE测定蛋白质分子量的原理、掌握垂直板电泳的操作方法、运用SDS-PAGE测定蛋白质分子量及染色鉴定。
在教师的悉心指导下，经过分组分工合作完本钱次试验并观察分析完跑胶结果后，我认为本次实验还是相对较为成功的，到达了实验根本目的要求。
但在观察跑胶结果是，发现在本次实验中可能有一些操作性问题影响了实验结果，经分析有以下几点：
①在凝胶聚合过程中，我们采取了在37℃烘箱下聚合〔约30min〕，此种方法的好处是聚合时间短，聚合速度快，但同样它存在缺点，例如容易出现胶脆、凝结不均匀的现象。
因为温度的上下决定了胶凝聚的速度快慢，温度越高凝聚速度越快，但其脆性也相对增加。
如果不考虑时间问题的前提下，可以考虑采用放置4℃冰箱下过夜的方法聚合，此种方法虽耗时长，但聚合出的胶凝聚的非常充分均匀，可以排除胶本身凝聚不均匀不充分所带来的影响。
②在跑胶过程中，我们采用的是200V，60min电泳，但如果样品在浓缩胶阶段将电压相对降低一些，在样品在别离胶阶段将电压相对升高一些，这样跑出来的条带清晰度会提高。
③点样过程中由于操作不熟练或由于点样孔在拔梳子的过程中遭到局部损坏，而导致了局部样品局部未完全进入点样孔中，跑出的条带不甚清晰。
总而言之，可能由于经历考虑缺乏等一些原因，并未完全发现本次实验过程中出现的所有问题，但我相信在接下来的学习过程中，我一定会更加努力，尽自己最大可能认真细心地完成每一次实验，将误差和失误降到最低。
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