雄性生殖细胞特异性表达GFP小鼠的繁殖及其表型鉴定文档格式.docx

雄性生殖细胞特异性表达GFP小鼠的繁殖及其表型鉴定文档格式.docx

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Specificity;

Generecombination;

Greenfluorescent 

protein

生殖系统的改变是造成不孕不育的重要原因，如何简易快速的检测生殖系统的损伤是目前研究的一个热点。

在绝大多数物种中，Ddx4基因特异性表达于生殖细胞中[1]，常被用作分子标记研究配子发生和原始生殖细胞的起源、迁移、分化等方面。

雄性生殖细胞的DDX4蛋白表达，从12.5dpc生殖嵴一直持续到减数分裂后的精子细胞[2]。

本研究利用生殖系统特异性启动子Ddx4启动的Cre酶，通过Cre/loxP位点特异性重组系统[3]产生雄性生殖细胞特异性表达GFP小鼠模型，为后续进行雄性小鼠生殖系统发育和毒性研究提供理想的动物模型。

1材料与方法

1.1实验动物

SPF级B6.FVB-Tg（Ddx4-cre）1Dcas/JnjuDdx4-cre小鼠（以下简称为Ddx4-cre小鼠）4只，雌雄各半，雄性为杂合子（T/W），雌性为纯合子（T/T）；

SPF级B6.129（Cg）-Gt（ROSA）26Sortm4（ACTB-tdTomato,-GFP）Luo小鼠（以下简称Rosa26mT/mG小鼠）4只，雌雄各半，均为纯合子（mut/mut）。

小鼠周龄4-8周，均购自南京大学南京生物医药研究院【SCXK（苏）2010-0001】。

饲养于北京大学实验动物中心【使用许可证：

SYXK（京）2011-0003】，饲养条件符合SPF级实验动物的饲养标准。

Ddx4-cre小鼠在Ddx4启动子调控下在生殖系统中特异性表达Cre酶的转基因小鼠[4]。

Rosa26mT/mG小鼠是全身组织器官表达红色荧光蛋白的转基因小鼠，当其与Cre转基因小鼠交配产生的后代将发生Cre酶介导的特异性基因重组，将敲除mT基因，从而激活mG基因的表达，产生绿色荧光蛋白（图1）[5]。

1.2动物交配

Ddx4-cre小鼠4只，雌雄各半，雄性为杂合子，雌性为纯合子，1：

1交配，扩大种群。

Rosa26小鼠4只，雌雄各半，均为纯合子，1：

Ddx4-cre小鼠6只，雄性，杂合子（T/W）；

与Rosa26小鼠6只，雌性，纯合子（mut/mut）；

1：

1交配，获得F1代雄性小鼠，其基因型可分为两种Ddx4-cre（T/W）；

Rosa26mT/mG（mut/wt）与Ddx4-cre（W/W）；

Rosa26mT/mG（mut/wt）。

而在表达Cre酶的组织，会产生Cre酶诱导的基因重组，切除mT基因。

通过交配产生子代可能的基因型和表型见图2。

图2Ddx4-cre♂小鼠与Rosa26mT/mG♀小鼠交配可能产生的子代的基因型和表型

FIG.2GenotypeandphenotypeofoffspringbymatingtheDdx4-cremalemicewiththeRosa26mT/mGfemalemice

1.3双阳性F1代雄性小鼠的筛查

利用PCR的方法，对母代和子代雄性小鼠进行基因型鉴定。

提取鼠尾DNA，PCR扩增检测Ddx4-cre基因和Rosa26mT/mG基因，确定小鼠基因型，筛选基因型为Ddx4-cre（T/W）；

Rosa26mT/mG（mut/wt）的子代小鼠，为双阳性F1代雄性小鼠。

Ddx4-cre基因扩增条件为94℃30sec，62℃35sec，72℃45sec，35个循环；

Rosa26mT/mG基因扩增条件为94℃30sec，61℃1min，72℃1min，35个循环。

所使用的引物及其意义见表1。

表1PCR引物、扩增片段及目的

Table1PCRprimer 

fragmentsizeandpurpose

基因GenesF（5’-3’）R（5’-3’）扩增片段fragmentsize目的purpose

Ddx4-creCACGTGCAGCCGTTTAAGCCGCGTTTCCCATTCTAAACAACACCCTGAA240bp（T/W）确定F1雄性小鼠是否携带了其父代的Ddx4-cre基因

Rosa26mT/mGTTCCCATTCTAAACAACACCCTGAA

CGAGGCGGATCACAAGCAATA250bp（mut/mut）；

确定F1雄性小鼠是否携带了其母

TCAATGGGCGGGGGTCGTT300bp（wt/wt）代的Rosa26mT/mG基因

mTAGCTGGACATCACCTCCCACAACGCGTCGCCGTCCAGCTCGACCAG1262bp验证实验鼠的睾丸组织是否

发生了cre酶介导的基因重组

1.4动物分组

为了研究通过交配产生的动物的基因型和表型，我们选取三组动物。

Ddx4-cre小鼠4只，雄性，周龄4-5周，为阴性对照鼠；

Rosa26mT/mG小鼠4只，雄性，周龄4-5周，为红色荧光蛋白对照鼠；

双阳性F1代小鼠4只，雄性，周龄4-5周为实验鼠。

1.5DNA提取

利用浓盐法提取组织DNA[6]，加入500μl（含5μl蛋白酶K）的组织裂解液放到52℃恒温水浴箱中消化过液，加入5MNaCl250μl，混匀，冰浴10min。

12000rpm，离心10min，吸上清400μl加入1ml预冷的无水乙醇，12000rpm离心10min后去上清，干燥沉淀后加入60μl去离子水55℃溶解DNA。

1.6PCR扩增体系

PCR反应体系为20μl，包括：

10×

Buffer2μl，2.5mMdNTP1.6μl，10μm引物各0.4μl，5UrTaq酶0.4μl，模板DNA1μl，去离子水14.2μl。

PCR反应产物进行1%琼脂糖凝胶电泳。

1.7组织mT基因扩增

利用三组动物的睾丸组织（去除被膜组织）及实验鼠的脑、心、肝、脾、肺、肾、肠，提取DNA，PCR扩增检测mT基因。

引物与目的片段（表1）。

扩增条件为94℃30sec，61℃30sec，72℃1min，35个循环。

1.8组织荧光观察

颈椎脱臼法处死小鼠，取出脑、心、肝、脾、肺、肾、肠、睾丸，利用小动物成像仪进行离体组织的荧光观察，红色荧光（激发光536/40nm；

发射光590/20nm）；

绿色荧光（激发光425/26nm；

发射光520/35nm），曝光时间均为1s。

1.9组织冰冻切片的荧光观察

将固定于4%甲醛溶液中的组织，转入6-10ml30%蔗糖溶液中沉糖过夜，用OCT胶包埋，储存于-20℃冰箱中，备用。

利用冰冻切片机进行组织切片（10μm），无水乙醇固定，DAPI染色，封片，观察。

1.10精子荧光观察

分离附睾置于1ml生理盐水，将附睾横切为若干段，用眼科镊子轻轻挤压附睾组织块，去掉附睾。

静止5min，荧光显微镜观察精子荧光。

2结果

2.1双阳性F1代雄性小鼠的筛查

通过F1代雄鼠鼠尾DNAPCR检测，结果（图3、图4）证明1-4号F1代雄性小鼠携带了父代的Ddx4-cre基因和母代的Rosa26mT/mG基因。

图3Ddx4-cre基因PCR电泳图图4Rosa26mT/mG基因PCR电泳图

注：

M：

MakerDL2000；

“wt”：

野生型。

注：

FIG.3PCR 

electrophoresisofDdx4-cre 

FIG.4PCR 

electrophoresisofRosa26mT/mG

Note：

MrepresentsMakerDL2000；

“wt”representswildtypeNote：

“wt”representswildtype

2.2组织mT基因的扩增

双阳性F1小鼠mT基因的扩增结果显示只有睾丸组织DNA不能扩增出mT基因（图5）。

双阳性F1代小鼠睾丸组织mT基因的扩增结果和其亲代鼠的睾丸组织DNA的PCR扩增结果见图6，F1代小鼠睾丸组织未能扩增出mT基因，而其亲代的Rosa26mT/mG鼠睾丸组织DNA可以扩增出mT基因。

这表明双阳性F1小鼠睾丸组织在基因水平上确实发生了Cre酶介导的基因重组。

2.3整体器官荧光观察

小鼠的离体器官的小动物成像观察，双阳性F1代鼠的脑、心、肝、脾、肺、肾、肠、睾丸组织呈现红色荧光，但睾丸组织可观察到绿色荧光而其他组织无绿色荧光（图7）。

图5F1子鼠不同组织mT基因PCR电泳图

脑；

2：

心；

3：

睾丸；

4：

肝；

5：

脾；

6：

肺；

7：

肾；

8：

肠；

MakerDL2000

Fig.5PCR 

resultsofmTgeneindifferenttissueinF1offspring

brain；

heart；

testis；

liver；

spleen；

lung；

kidny；

gut；

图6亲代和子代动物睾丸组织mT基因PCR电泳图

F1睾丸组织DNA；

Rosa26mT/mG鼠睾丸组织DNA；

Ddx4-cre鼠睾丸组织DNA。

Fig.6PCR 

resultsoftesticulartissue 

mT 

geneinF1offspringanditsparents

the 

testis 

DNAofthe 

F1mouse;

DNAoftheRosa26mT/mG 

mouse;

3：

Ddx4-cremouse.

2.4组织学荧光观察

双阳性F1代小鼠和亲代小鼠脑、心、肝、脾、肺、肾、肠、睾丸组织冰冻切片结果观察，发现只有在子代F1睾丸组织细胞中具有GFP的表达（图8），GFP主要表达于生精小管细胞中，且集中于次级精母细胞、精子细胞和精子中。

2.5精子荧光观察

倒置荧光显微镜观察双阳性F1代小鼠精子和Rosa26mT/mG鼠精子，结果表明：

F1代子鼠精子具有GFP的表达，而其亲代的Rosa26mT/mG小鼠的精子呈微弱的红色荧光（图9）。

3讨论

荧光蛋白的发现极大地促进了生物学医药科学的研究。

目前研究较广泛的荧光蛋白为红色荧光蛋白（RFP）和GFP，其中GFP享有现代生物学北斗星的美誉，其具有荧光稳定、易于检测、表达调控简单、生物安全性好等优点[7]。

本研究利用Cre/loxP位点特异性重组系统制作雄性生殖细胞特异性表达GFP小鼠模型，这为我们后续研究雄性小鼠生殖系统功能与毒性等领域提供理想的动物模型。

本实验将Ddx4-cre雄鼠与Rosa26mT/mG雌鼠交配筛选体内同时具有Cre基因与Rosa26mT/mG基因的双阳性F1代雄性小鼠，对其进行基因型和表型鉴定。

mT基因的扩增结果表明，仅在睾丸组织产生了mT基因的切除。

而离体器官的荧光观察结果表明F1代子鼠的睾丸组织具有GFP的表达，组织学荧光观察结果证明GFP主要表达于生精小管细胞中，且集中表达于次级精母细胞、精子细胞和精子中。

而大量的文献研究表明DDX4蛋白在小鼠精原细胞与初级精母细胞均有表达[8]，即精原细胞与初级精母细胞应均具有Cre酶的表达而发生特异的基因重组，但在精原细胞与初级精母细胞却未观察到绿色荧光，这可能是因为次级精母细胞、精子细胞和精子中绿色荧光强度太强，在同等条件下掩盖了精原细胞与初级精母细胞的绿色荧光。

参考文献

[1]KakiuchiK,TsudaA,GotoY,ShimadaT,TaniguchiK,TakagishiK,etal.Cell-SurfaceDEAD-BoxPolypeptide4-ImmunoreactiveCellsandGonocytesAreTwoDistinctPopulationsinPostnatalPorcineTestes.BiolReprod.2014;

90.

[2]FujiwaraY,KomiyaT,KawabataH,SatoM,FujimotoH,FurusawaM,etal.IsolationofaDead-FamilyProteinGeneThatEncodesaMurineHomologofDrosophila-VasaandItsSpecificExpressioninGerm-CellLineage.PNatlAcadSciUSA.1994;

91:

12258-62.

[3]Kage-NakadaiE,ImaeR,SuehiroY,YoshinaS,HoriS,MitaniS.AConditionalKnockoutToolkitforCaenorhabditiselegansBasedontheCre/loxPRecombination.PlosOne.2014;

9.

[4]GallardoT,ShirleyL,JohnGB,CastrillonDH.Generationofagermcell-specificmousetransgenicCreline,Vasa-Cre.Genesis.2007;

45:

413-7.

[5]MuzumdarMD,TasicB,MiyamichiK,LiL,LuoLQ.Aglobaldouble-fluorescentcrereportermouse.Genesis.2007;

593-605.

[6]PohJJ,GanSKE.Comparisonofcustomizedspin-columnandsalt-precipitationfinger-prickbloodDNAextraction.BioscienceRep.2014;

34:

629-34.

[7]张雨丽,张桂征,苏红梅,等.绿色荧光蛋白在转基因研究中的应用[J].生物技术通报,2010（9）:

16-19

[8]ToyookaY,TsunekawaN,AkasuR,NoceT.Embryonicstemcellscanformgermcellsinvitro.PNatlAcadSciUSA.2003;

100:

11457-62.

图1mT/mG基因发生Cre酶介导的基因重组前后的结构示意图[5]

mT／mG由鸡β-肌动蛋白启动子，CMV为增强子（PCA），在重组前，loxP位点间的tdTomato基因（mT）表达。

在Cre介导染色体内基因重组，mT基因序列被切除，PCA启动子驱动绿色荧光蛋白表达（mG）。

箭头表示转录方向。

FIG.1SchematicdiagramofthemT/mGconstructbeforeandafterCre-mediatedrecombination[5]

mT/mGconsistsofachickenβ-actincorepromoterwithaCMVenhancer（pCA）drivingaloxP-flankedcodingsequenceofmembrane-targetedtandemdimerTomato（mT）resultingintdTomatoexpressionwithmembranelocalization.AfterCre-mediatedintra-chromosomalrecombination,themTsequenceisexcisedallowingthepCApromotertodriveexpressionofmembrane-targetedenhancedgreenfluorescentprotein（mG）.Arrowsdenotethedirectionoftranscription.

图7F1代小鼠各组织荧光观察结果

FIG.7Exvivoorganfluorescence 

ofdifferenttissueinF1offspringmouse

图8组织切片荧光观察结果

A：

F1代小鼠脑组织；

B：

F1代小鼠肠组织；

C：

F1代小鼠心组织；

D：

F1代小鼠肾组织；

E：

F1代小鼠肝组织；

F：

F1代小鼠肺组织；

G：

F1代小鼠脾组织；

H：

F1代小鼠睾丸组织；

I：

Rosa26mT/mG小鼠睾丸组织。

Fig.8Fluorescence 

ofdifferenttissuebyfluorescencemicroscopy

thebraintissueof 

F1mouse；

theguttissueof 

thehearttissueof 

thekidneytissueof 

thelivertissueof 

thelungtissueof 

thespleentissueof 

thetestistissueof 

Rosa26mT/mGmouse.

图9精子荧光观察结果

F1代小鼠精子；

Rosa26mT/mG小鼠精子；

箭头指向精子。

Fig.9Sperm 

fluorescenceinF1offspringandRosa26mT/mGmouse

thespermoftheF1mouse；

B：

thespermoftherosa26mT/mGmouse；

arrowsdenotethesperm.