拟南芥总蛋白提取Word文档下载推荐.docx

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拟南芥蛋白;

蛋白质分析

Abstract

Therearemanymethodsofthewithdrawtionoftheplantproteins,nomatteranymethod,itmustpreservethebiologymacromolecularstructuretobeintegrityintheoperation,preserveactivitytopreventthedegradationanddegenerationphenomenon.Spaceforproteinstructuremainlyrelyonhydrogenbonding,saltbondingandtheVanderWaalsbonding,theexistenceoftheeventacid,alkalitreatment,hightemperature,Mechanicaldramaticroleandstrongradiationcanleadtothelossofactivity,itshouldchoosetheconditionsfortheverymodest.SDS-PAGEastheisolationandidentificationofbiologicalmacromoleculesinoneoflaboratorymeans,ithasbecomeoneoftheimportantlaboratorytechniqueinMolecularbiology.

Thisexperimentusesthreedifferentmethods(twomethodsareproteinstodissolvesolution,onemethodisproteinprecipitation)withdrawsthetissues,proteinofArabidopsisthaliana(alltheproteinofArabidopsisthaliana,theleafproteinofArabidopsisthaliana,theinjuriestissueproteinofArabidopsisthaliana),andthentheproteinatlasindifferenttissuesandorgansofArabidopsisthalianawereanalyzedwithSDSpolyacrylamidegel,andthen,throughtheanalysisoftheSDS-PAGEpicturewecananalysisthedifferentextractbufferandthedifferentproteinofthedifferentorganizations.

Finally,theresultsindicatethatthebestmethodisextractbuffer2—theSDS-PAGEpictureistheclearest,theextractbuffer3thatisthetrichloroaceticacidacetonenext,thelastistheextractbuffer1whichisPBS.ThekindsofproteininthewholeArabidopsisthalianaweremostandclearestinthesethreetissues,thekindsofproteinintheleafwereleast,thisphenomenoncanbeexplainedbythattheprotein'

scontentandtheprotein'

stypearedifferent,thisindicatesthatthenumberofthestripbeltbandhastherelevancewiththefunctionnature,thephenomenonthatthenumberoftheleafproteinistheleastindicatethatthecontentandtypeoftheleafproteinareonlyapartofthewholeproteinofArabidopsisthaliana;

asaresultofthattheculturemediumhasinfluencewiththerootprotein,thepictureofthewholeproteinhasathickbelt.Inaddition,thisexperimenttakestwodifferentbleachingmethods,oneisrapidbleaching,theotherisbleachingliquid,theresultshowsthattherapidbleachingmethodnotonlysimpleandconvenient,butalsohaveabettereffect,sowecanuseitextensively.

KeywordsSDS-PAGEelectrophoresis;

Arabidopsisthalianaprotein;

Theproteinanalysis

1引言·

·

1

1.1拟南芥简介·

1.2SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳·

2

1.3拟南芥蛋白提取·

3

1.4实验研究的意义·

1.5展望·

4

2材料、主要试剂及主要仪器·

2.1实验材料·

2.1.1拟南芥培养·

2.1.2培养拟南芥愈伤组织·

2.2主要试剂及药品·

5

2.2.1溶液的配置·

2.2.2所用主要药品和试剂·

7

2.3主要仪器·

8

3实验方法·

3.1样品蛋白的制备——蛋白质的提取·

3.1.1提取液1、2和水提取蛋白·

3.1.2提取液3提取蛋白·

9

3.1.3SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳·

4结果与分析·

10

4.1不同方法提取拟南芥不同组织蛋白的效果比较分析·

4.2丙酮法提取蛋白与其它提取法的比较·

11

4.3拟南芥蛋白分子量分析·

13

5讨论·

5.1金属离子螯合剂在蛋白提取中起重要作用·

5.2关于谱带倾斜现象·

5.3关于拟南芥各组织蛋白·

5.4染色、脱色·

14

6结论·

15

参考文献·

16

致谢·

18

1引言

1.1拟南芥简介

拟南芥(Arabidopsisthaliana)十字花科。

二年生草本,高7~40厘米。

基生叶有柄呈莲座状,叶片倒卵形或匙形;

茎生叶无柄,披针形或线形。

总状花序顶生,花瓣4片,白色,匙形。

长角果线形,长1~1.5厘米。

花期3~5月。

我国内蒙、新疆、陕西、甘肃、西藏、山东、江苏、安徽、湖北、四川、云南等省区均有发现[1]。

图1-1拟南芥花图1-2拟南芥植株

这种植物具有以下特点:

(1)形态个体小,高度只有30cm左右;

(2)生长周期快,从播种到收获种子一般只需6周左右;

(3)种子多,每株每代可产生数千粒种子;

(4)形态特征简单;

(5)基因组小,只有5对染色体。

拟南芥广泛用于植物遗传学、发育生物学和分子生物学的研究,已成为一种典型的模式植物,被科学家誉为“植物中的果蝇”。

虽然这种植物在许多方面“简单”,但它的大多数基因与其他“复杂”的植物基因具有很高的同源性,另外,由于这种植物的全部基因组测序已经完成,因此可以预测,拟南芥在植物学所有领域的研究中将发挥更大的作用[2]。

1.2SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳

1937年瑞典化学家Tiseliue首先开发了蛋白质电泳技术,并成功地将血清蛋白分成几个组分。

原理:

迁移率是带电颗粒在一定电场强度下,单位时间内介质中的迁移距离,可公式计算:

U=V/E=Dl/Ut

U:

迁移率,单位是cm/V.s或cm/V.min

V:

泳动速度,单位是cm/s或cm/min

E:

电场强度,单位是V/cm

D:

泳动距离,单位是cm

T:

电泳时间,单位是min或s

L:

支持物长度,单位是cm

SDS是十二烷基硫酸钠(sodiumdodecylsulfate)的简称,是一种阴离子表面活性剂,加入到电泳系统中能使蛋白质的氢键、疏水键打开,并结合到蛋白质分子上(在一定条件下,大多数蛋白质与SDS的结合比为1.4gSDS/1g蛋白质),使各种蛋白质-SDS复合物都带上相同密度的负电荷,其数量远远超过了蛋白质分子原有的电荷量,从而掩盖了不同种类蛋白质原有的电荷差别。

这样就使电泳迁移率只取决于分子大小这一因素,于是根据标准蛋白质分子量的对数和迁移率所作的标准曲线,可求得未知物的分子量[3]。

聚丙烯酰胺变性凝胶电泳是对扩增产物进行检测,与其他电泳法比较具有如下优点:

①电泳区带狭窄不易扩散,供试品用量极微,电泳分离时间短,设备简单,分辨率高,重复性佳,已广泛用于酶、蛋白、聚核苷酸、多肽的分析鉴定和少量制备。

②凝胶是以单体-烯酰胺和交联剂,甲叉丙烯酰胺聚合而成的纵链交错的且有“分子筛效应的三维网状结构”。

其机械性能优良,对热稳定,无色透明,无杂质,不溶于缓冲液,在280nm波长处无紫外吸收。

电泳时无电渗和吸附作用,适于供试品的定量和精制。

本实验利用SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳分别比较不同提取方法提取拟南芥总蛋白、叶蛋白、愈伤组织蛋白的差异以及每个提取方法的优劣。

1.3拟南芥蛋白提取

蛋白质的种类有很多,提取方法也有很多种,常用的有等电点沉淀法、盐析法、有机沉淀法,不同的方法对与提取不同的蛋白具有较好的效果。

即使是同一种物质的不同组织也含不同的蛋白质,在本实验中,将采用三种方法(两种蛋白溶解法,一种沉淀蛋白法)提取拟南芥不同组织的蛋白质,然后进行SDS聚丙烯酰胺凝胶电泳分析,比较不同的提取方法的提取效果、不同组织的蛋白提取情况[4]。

不论使用哪一种方法,均必须在操作中保存生物大分子结构的完整性,保存活性防止变性及降解现象的发生。

因空间结构主要依靠氢键、盐键和范德华力的存在,遇酸、遇碱、高温、剧烈的机械作用及强烈的辐射等均可导致活性丧失,因此选择的条件应为十分温和。

同时应注意防止系统中重金属离子、细胞自身酶系及其他有毒物质的污染[5]。

1.4实验研究的意义

拟南芥已广泛用于植物遗传学、发育生物学和分子生物学的研究,已成为一种典型的模式植物,被科学家誉为“植物中的果蝇”。

虽然这种植物在许多方面“简单”,但它的大多数基因与其他“复杂”的植物基因具有很高的同源性,该种植物的全部基因组测序已经完成。

SDS聚丙烯是种很重要的分离生物大分子的实验技术,但是在实验过程也有很多应该注意的事项。

蛋白质的提取有多种方法,本实验中将选用三种不同的方法进行提取,然后将提取的蛋白样品进行SDS-PAGE分析,从而确定提取蛋白的最佳方法。

本实验通过用多种对拟南芥不同组织进行提取,提取的蛋白样品将进行SDS凝胶电泳分析,分析不同蛋白提取法的优劣以及同一植物不同组织的蛋白电泳差异,加强对SDS-PAGE的原理和操作步骤的理解和掌握。

1.5展望

提取蛋白跑完电泳后可以做Western杂交,然后进行蛋白序列分析。

Western杂交是将蛋白质电泳、印迹、免疫测定融为一体的特异性蛋白质的检测方法。

先从生物细胞中提取总蛋白或目的蛋白,SDS-PAGE电泳将蛋白质按分子量大小分离,再把分离的各蛋白质条带原位转移到固相膜(硝酸纤维素膜或尼龙膜)上,接着将膜浸泡在高浓度的蛋白质溶液中温育,以封闭其非特异性位点。

然后加入特异抗性体(一抗),膜上的目的蛋白(抗原)与一抗结合后,再加入能与一抗专一性结合的带标记的二抗,最后通过二抗上带标记化合物(一般为碱性磷酸酶)的特异性反应进行检测。

根据检测结果,从而可得知被检生物(植物)细胞内目的蛋白的表达与否、表达量及分子量等情况。

Western杂交方法灵敏度高,通常可从植物总蛋白中检测出50ng的特异性的目的蛋白[6]。

然后也可对已获得的目的蛋白进行蛋白序列的分析。

通常使用专一化学试剂或具有不同水解专一性蛋白酶,得到有可能重叠的序列的肽段,从而推断出蛋白的氨基酸序列。

蛋白质的一级结构是其高级结构的基础,因此,蛋白质序列分析对于获得有关高级结构的信息是一个很有用的基础[7]。

2材料、主要试剂及主要仪器

2.1实验材料

2.1.1拟南芥培养[8]

⑴培养前预处理:

拟南芥(Arabidopsisthaliana,哥伦比亚野生型)种子用70%乙醇浸泡2min后,无菌水漂洗1次,再用3.5%次氯酸钠浸泡10~15min,无菌水漂洗5次,播种于MS培养基上,放入4℃冰箱中春化3天;

⑵春化后的拟南芥种子放入生长箱中培养,生长7天左右(培养箱温度周期为22℃(昼)/18℃(夜),光周期为12h(光)/12h(暗),光强为120~130μmol。

2.1.2培养拟南芥愈伤组织[9]

⑴挑选大而饱满的具有发芽能力的成熟种子,采取两步消毒法。

剥胚前用75%酒精中浸1min,再用0.1%升汞消毒8min,无菌水冲洗5~6次。

在超净台内用镊子和解剖针仔细剥取胚,成熟胚盾片向上接种于愈伤组织诱导培养基上。

⑵愈伤组织的诱导

将成熟胚每瓶接种5粒,接种后在黑暗条件下培养,温度为18℃,3~7天后,开始产生愈伤组织,15天后明显增大,统计愈伤组织诱导率。

⑶愈伤组织培养调控

愈伤组织最初多呈水浸状,质量较差,经过改良继代,其表面长出白色或黄色的愈伤组织,并迅速增殖。

愈伤组织20天继代1次,每瓶接3块,接种培养40天后观察愈伤状态。

愈伤组织的诱导和试管苗的分化在诱导培养基上培养1周,叶段和茎段的切口处开始膨大,两周后愈伤组织生长良好,表面呈粒状,局部变绿,18℃储藏以备用。

2.2主要试剂及药品

2.2.1溶液的配制[10-16]

2.2.1.1MS培养基

MS培养基配方:

大量元素(母液Ⅰ) 

mg/L

NH4NO3 

33000

KNO3 

 

38000

CaCl2·

2H2O 

8800

MgSO4·

7H2O 

7400

KH2PO4 

3400

微量元素(母液Ⅱ)mg/L

KI 

166

H3BO3 

1240

MnSO4·

4H2O 

4460

ZnSO4·

1720

Na2MnO4·

50

CuSO4·

5H2O 

5

CoCl2·

6H2O 

5

铁盐(母液Ⅲ)mg/L

FeSO4·

5560

Na2-EDTA·

7460

有机成分(母液Ⅳ)mg/L

肌醇 

20000

烟酸 

100

盐酸吡哆醇(维生素B6) 

100

盐酸硫胺素(维生素B1) 

甘氨酸 

400

其中诱导培养基附加植物激素IAA0.5-2mg,分化培养基附加6BA0.5-1mg,IAA0.5mg,蔗糖20g,琼脂1.2%,pH5.8。

2.2.1.2蛋白提取液1——PBS溶液

称取NaCl0.8006g,KCl0.02012g,KH2PO40.02722g,Na2HPO40.

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