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当原代培养成功后,培养的细胞通过增殖达到一定数量后,必需对细胞从原培养瓶中加以分离,经稀释后再接种于新的培养瓶中,这一过程即为传代培养,亦称为继代培养或连续培养。

如果原代细胞是正常细胞,随着培养时间的延长和细胞不断分裂,形成的单层细胞汇合,细胞之间相互接触而发生接触性抑制,生长速度减慢甚至停止;

另外,由于密度过大生存空间不足而引起营养枯竭,加之代谢物积累也不利于细胞生长或发生中毒。

此时,就需要将将培养细胞从原培养器中取出,加以分离,以1∶2或1∶3以上比率转移到另外培养器皿(瓶)内扩大培养,此过程称为传代(passage)。

原代培养细胞经首次传代成功后即成为细胞系,由原先存在于原代培养物中的细胞世系组成。

细胞传代后一般经三个阶段:

游离期;

指数增生期和停止期。

培养细胞的“一代”是指传代培养的累积次数,其与细胞世代或倍增不同,细胞转移扩大培养的1代中,细胞约能倍增3~6次。

细胞增殖的旺盛程度通常用细胞分裂指数表示,即细胞群的分裂相数/100个细胞。

一般细胞分裂指数介于0.2%~0.5%,肿瘤细胞可达3~5%。

细胞接种2~3d时分裂增殖旺盛,是活力最好时期,称指数增生期(对数生长期),适宜进行各种试验。

  体外培养细胞和生长类型不同,传代培养的方法也不同。

贴附型生长的细胞要先进行消化,制成细胞悬液再传代;

而悬浮型生长的细胞可直接传代,或离心后传代。

3.细胞活力测定:

在标准化培养和实验条件下,细胞数目及活力测定极其重要。

1983年Mosmann首次应用MTT比色法检测培养细胞活力。

MTT的化学名称为3-(4,5-二甲基噻唑-2)-2,5-二苯基四氮唑溴盐,商品名为噻唑蓝。

其具有接受氢原子而发生显色反应。

检测原理为,活细胞线粒体中的琥珀酸脱氢酶能使琥珀酸脱氢,脱下的H+通过受氢体传递,能使外源性染料MTT还原为不溶性的蓝紫色结晶物,并沉积在细胞中。

细胞中的蓝紫色结晶物可以溶解在二甲基亚砜(DMSO)中,并表现为一定的色度。

用酶联免疫检测仪在490nm波长处测定其光吸收值,并根据光吸收值的高低判断活细胞数量。

在一定细胞数范围内,光吸收值与活细胞数成正比。

死细胞内酶失去活性,故无此功能。

该检测方法灵敏度高、重复性好、操作简便、经济安全,具有良好的相关性。

广泛用于一些生物活性因子的活性检测、大规模的抗肿瘤药物筛选、细胞毒性试验以及肿瘤放射敏感性测定等。

三.实验物品

1.材料:

乳鼠、、HeLa细胞(人宫颈癌细胞)。

2.器材:

超净工作台、解剖器材、酒精灯、离心管、移液管、吸管、烧杯、大平皿、96孔培养板、不锈钢滤网(100目、200目)、水浴箱、血细胞计数板、培养瓶、CO2培养箱、离心机、盖玻片,擦镜纸,香柏油、倒置相差显微镜、显微镜、全自动酶标仪(bio-rad550型)。

3.试剂:

(1)75%乙醇

(2)PBS液(pH7.2)配方:

   Nacl8g、Kcl0.2g、Na2HPO41.44g、KH2PO40.24g  调pH7.4 定容1L

(3)无钙、镁离子PBS液

(4)D-HanK液(无钙、镁离子的HanK液)

(5)消化液(0.25%胰蛋白酶、0.02%EDTA各1份)

(6)0.25%胰蛋白酶溶液(胰蛋白酶0.25g、D-Hanks液100ml,pH7.4)

(7)0.4%台盼蓝、

(8)培养液:

EMEM培养液(Eagle’sMinimumEssentialMediumEagle氏最低要求培养基):

EMEM85份,小牛血清15份,加入青霉素、链霉素贮存液1份,使青霉素、链霉素的最终浓度分别为100单位及100ng/ml。

EMEM培养基可选用各种商品供应之粉末培养基,按生产厂商提供资料配制并除茵。

4℃冰箱贮存。

DMEM(Dulbecco’sModificationofEagle’sMedium):

RPMI1640培养液(90%RPMI1640、10%胎牛血清、双抗(青霉素,链霉素)100单位/ml

7.4%NaHCO3调pH至6.8~7.0)

RPMI1640维持液(5%胎牛血清、余同上)

(9)0.5%MTT溶液(5mg/ml)、

MTT0.5g,溶于100ml的磷酸缓冲液(PBS),用0.22μm滤膜过滤以除去溶液里的细菌,放4℃避光保存两周内有效。

在配制和保存的过程中,容器最好用铝箔纸包住。

最好现用现配。

(10)二甲基亚砜

(11)碘伏

四.实验步骤

原代培养

组织块培养法:

1.动物处死 取新生大鼠(出生2~3天)一只,用颈椎脱臼法处死;

为避免过多血细胞的干扰,也可采用剪断颈动脉放血的方法处死。

然后,把新生大鼠浸入盛有75%乙醇的烧杯中2-3秒,取出后放在大平皿中携入超净工作台。

2.取材 用碘酒和75%乙醇再次消毒一次,打开消毒器械包用镊子新生大鼠腹部皮肤,用解剖剪开腹腔,充分暴露腹腔;

用另一镊子轻轻夹起肠管,翻置一侧,充分暴露位于腹腔背壁脊柱两侧的肾脏(右肾略低);

取下双侧肾脏,放入消毒培养皿中。

(或取出肝组织置于培养皿中。

3.剪切 剪开肾膜,剥向肾门,去除肾膜及脂肪;

用吸管吸取灭菌PBS(或Hanks液)将肾脏清洗3次,去除血污;

将肾脏移入另一平皿中,沿纵轴剪开肾脏,剪去肾盂,用眼科剪将肾组织反复剪碎,直到剪成0.5~1mm3组织块;

用吸管加2~3滴培养液轻轻吹打,使组织块悬浮在培养液中。

(或肝组织用Hanks液反复冲洗,以除去血细胞,将肝组织移入另一个培养皿中,用吸管吸取0.5ml培养基置于肝组织上,用另一眼科剪将其剪成0.5~1mm3组织块。

4.接种:

用弯头吸管小心分次吸取组织块,使组织块吸在吸管端部,要避免吸得过高,组织块粘附于吸管壁而丢失。

将组织块均匀排布在培养瓶底部,控制组织块间距在0.5cm左右,每

25ml培养瓶底可摆布15~20块。

轻轻翻转培养瓶,使瓶底向上,翻瓶时勿使组织块流动,加入2~3ml培养液(液层厚约15mm),塞好瓶塞,置CO2培养箱37℃培养2~3h,(勿超过4h)。

此时组织块略干燥,能贴附于瓶壁上。

5.培养:

慢慢翻转培养瓶,使培养液浸泡附于瓶底的组织块,置培养箱中静止培养。

操作过程中动作一定要轻,减少振动,使培养液慢慢覆盖组织块,否则会使组织块脱落,影响贴壁培养。

6.观察 24小时后取出观察,移动培养瓶时要尽量使培养液震荡撞击组织块。

在显微镜下观察已贴壁的组织块有无细胞长出。

消化培养法:

1.处死动物、取材及剪切:

与组织块培养法相同。

剪切后的组织块再用灭菌的PBS(或Hanks液)清洗数次,直到PBS澄清为止。

移入无菌离心管中,静置数分钟,使组织块自然沉到管底,弃上清。

2.消化及分散组织块 按组织块体积5~10倍量,吸取0.25%胰蛋白酶-0.02%EDTA混合消化液加到含组织块的无菌离心管中,与组织块混匀后,加盖无菌塞子密封,置37℃水浴中消化10~20min,其间每5min摇动一次,使组织块散开并与消化液充分接触。

当组织块变得疏松、颜色略白时,从水浴中取出离心管,在超净工作台内静置后吸去含胰蛋白酶的上清(此步骤可以在800~1000rpm离心3~5min去除含胰蛋白酶的上清),加入2~3ml培养液,终止消化。

用吸管反复吹打,直到大部分组织块分散成单细胞或细胞团状态为止。

最后将此细胞悬液用100目、200目的不锈钢滤网过滤至烧杯中。

3计数及稀释:

从过滤的细胞悬液中取1ml,用血细胞计数板计数。

根据计数结果,用培养液稀释,稀释后的细胞密度以5×

105~1×

106为宜。

4.接种培养:

将稀释好的细胞悬液分装于培养瓶中,一般25ml小方瓶分装4~5ml,青霉素瓶分装1ml。

培养瓶上做好标记,培养瓶盖旋紧后再松半个螺旋,置CO2培养箱在37℃培养。

5.观察:

接种培养后要每日观察培养液是否污染、颜色变化及细胞生长状况。

培养液黄色且混浊表示污染,紫红色表明细胞生长不良,桔红色表明细胞生长良好。

传代培养

贴壁细胞的传代培养:

1.准备 从培养箱中取出原代培养细胞,在显微镜下观察,确认已长成致密单层、生长良好,适宜传代培养。

将培养瓶连同所需实验用品备齐,放入超净工作台内,所有实验操作均在超净工作台内进行。

2.消化 弃去原代培养瓶内的旧培养液,加入适量无钙、镁离子PBS液(或Hanks液),轻轻摇动培养瓶,清洗残留在细胞表面培养液和碎片,弃去清洗液。

在培养瓶内加入消化液(0.25%胰蛋白酶、0.02%EDTA各1份)约2~3ml,以液面盖满细胞为宜。

培养瓶置室温或培养箱内2~3min后,在倒置显微镜下观察培养瓶中的细胞,当发现细胞胞质回缩、细胞间间隙增大时,或翻转培养瓶肉眼观察,细胞单层出现针孔大小的缝隙,则快速弃去消化液;

如未出现缝隙,则继续消化,直到出现缝隙。

向培养瓶中加入PBS液(或Hanks液),轻转培养瓶清洗残留的消化液后倒掉PBS液(或Hanks液)。

3.分装 在培养瓶内加入新配制的培养液约3ml,并用吸管反复吹打瓶壁,至细胞层全部脱落,再轻轻吹打细胞悬液,使细胞散开。

吹打时应按一定的顺序进行,即从培养瓶底部的一侧开始吹打至另一侧结束,尽量使每个部位的细胞都能被吹到。

吹打时不能太用力,尽量不产生气泡,避免损伤细胞。

在倒置显微镜下观察细胞,当贴壁细胞均已悬浮于培养液中,且细胞已分散单细胞或细胞团时,终止吹打。

取细胞悬液计数并用台盼蓝染色,计算细胞密度及细胞活力,据此对细胞悬液补加适量培养液稀释,调整细胞密度为1×

106/ml,将其分装到2瓶或多瓶中。

原代培养的细胞首次传代时,细胞密度宜大些,以使细胞尽快适应新的环境,利于细胞生存和增殖。

如原培养瓶为5ml培养液,分装2瓶时,则需补加培养液到10ml,混匀后分一半到另一培养瓶中。

在分装好的培养瓶上标明日期、细胞代号等标志。

4.培养与观察 轻轻摇动分装好的培养瓶,置CO2培养箱37℃培养。

接种后要每日观察培养液的颜色及细胞生长状况,通常,细胞传代培养2h左右,细胞即能贴壁生长,2~4h可形成单层。

培养过程中,可通过0.5%台盼蓝染色了解培养细胞中死、活细胞的比例。

 

悬浮细胞的传代培养:

少数细胞,如某些癌细胞、血液中白细胞,体外培养时为悬浮生长、不贴壁,其传代培养的方法不同于贴壁生长的细胞,可通过离心收集细胞后传代或直接传代。

1.离心传代 超净工作台内用吸管将培养瓶内的细胞吹打均匀,如有半贴壁的细胞应将其吹打下来。

将细胞悬液转移到无菌离心管中,平衡后800~1000/min离心5min,弃上清,加适量新配制的培养液打匀成细胞悬液。

细胞计数,按1:

2或1:

3的比例将细胞悬液稀释,分装于新的培养瓶中进行培养。

培养及观察等操作同贴壁细胞的传代培养。

2.直接传代 让悬浮细胞慢慢沉淀到瓶底,弃去上清液1/2~1/3后,用吸管吹打成细胞悬液,其后的操作同上。

培养细胞活力测定

1.接种细胞:

用0.25%胰蛋白酶消化HeLa细胞,并用培养基制成单个细胞悬液,以5×

104/ml接种于96孔培养板,每孔200μl,5%CO2、37℃培养3~5天。

整个实验分为3个组:

加药实验组、不加药对照组及不接种细胞也不加药的空白组。

每组8个复孔。

培养24h实验组加药处理。

继续培养至72h。

2.染色:

每孔加入20μl0.5%MTT溶液(5mg/ml),若实验组所加药物能与MTT反应,应先离心弃去培养液,小心用PBS冲2-3遍后,再加入含MTT的培养液。

继续培养4h。

3.离心:

与另一96孔板平衡后,1000r/min,离心10min,用力甩去上清。

4.溶解:

每孔加入200μl二甲基亚砜,避光振荡10min,以溶解紫色结晶。

5.测定:

用全自动酶标仪(bio-rad550型)测定波长570nm(490nm?

)处各孔的吸光值(OD值)。

实验组和对照组OD值以空白组OD值调零。

6.计算实验组细胞存活率、抑制率:

细胞存活率越小,说明实验组药物的作用强度越大;

抑制率越大,说明实验组药物的作用强度越大。

计算公式如下:

细胞存活率=(实验组OD值/对照组OD值)×

100%

抑制率=〔(对照组OD值一实验组OD值)/对照组OD值〕×

五.实验结果和记录

1.组织块法培养细胞的观察

培养24h后,倒置显微镜下可观察到组织块周围开始有少量的细胞。

一般最先长出形态不规则的游走细胞,接着长出成纤维细胞或上皮细胞,随着细胞的延长,组织块周围形成较大的生长晕,以后细胞生长加快,呈放射状向外扩展逐渐连成一片(图7-1)。

即有少量细胞从组织块周围游离而出,当细胞从组织块游出

量增

时,应根据培养液颜色,补加或更换培养液。

培养液表面如有漂浮的组织块,要及时吸弃。

细胞生长良好时,10~15天可长成致密单层,需传代培养。

图7-1组织块周围细胞呈放射状向外扩展

2.胰蛋白酶消化法培养细胞的观察

正常情况下,倒置显微镜下可观察刚接种的细胞均呈圆形悬浮于培养液中,接种24h后可见许多细胞贴壁,细胞由圆形悬浮状态伸展成梭形(图7-2,图7-3);

若细胞生长不良或培养液变红,应在无菌条件下,更换培养液。

培养3~4d时,细胞增殖旺盛,数量增多,细胞透明,颗粒少,界限清楚,可见细胞岛形成;

此时若培养液变黄、澄清,表明细胞生长,但营养成分不足,代谢产物堆积,CO2增多,可更换1/2新培养液或维持液。

此后,每3~4d,更换新培养液或维持液。

维持液与培养液的差别仅在于血清量为5%。

通常在7~10d,细胞基本形成致密单层,可进行传代培养。

图7-2细胞由圆形悬浮状态伸展成梭形并贴壁

图7-3扫描电镜观察到贴壁细胞的三维构造

六.注意事项

细胞培养的无菌操作要求

准备工作对开展细胞培养异常重要,工作量也较大,应给予足够的重视,推备工作中某一环节的疏忽可导致实验失败或无法进行。

准备工作的内容包括器皿的清洗、干燥与消毒,培养基与其他试剂的配制、分装及灭菌,无菌室或超净台的清洁与消毒,培养箱及其他仪器的检查与调试

1.器材和液体的准备

细胞培养用的玻璃器材,如:

培养瓶、吸管等在清洗干净以后,装在铝盒和铁筒中,120℃,2小时干烤灭菌后备用;

手术器材、瓶塞、配制好的PBS液用灭菌锅15磅,20min蒸气灭菌;

培养液、小牛血清、消化液等用G6滤器负压抽滤后备用。

2.无菌操作中的注意事项

在无菌操作中,一定要保持工作区的无菌清洁。

为此,在操作前要认真地洗手并用75%乙醇消毒。

操作前20~30min起动超净台吹风。

操作时,严禁说话,严禁用手直接拿无菌的物品,如瓶塞等,而要用器械,如止血钳、镊子等去拿。

培养瓶要在超净台内才能打开瓶塞,打开之前用乙醇将瓶口消毒,打开后和加塞前瓶口都要在酒精灯上烧一下,打开瓶口后的操作全部都要在超净台内完成。

操作完毕后,加上瓶塞,才能拿到超净台外。

使用的吸管在从消毒的铁筒中取出后要手拿末端,将尖端在火上烧一下,戴上胶皮乳头,然后再去吸取液体。

总之,在整个操作过程都应该在酒精灯的周围进行。

3.用灭菌的PBS(或<

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Hanks液)清洗组织块时冲洗要充分,尽量去除血细胞,避免其溶血后对培养细胞的生长产生影响

 

古希腊哲学大师亚里士多德说:

人有两种,一种即“吃饭是为了活着”,一种是“活着是为了吃饭”.一个人之所以伟大,首先是因为他有超于常人的心。

“志当存高远”,“风物长宜放眼量”,这些古语皆鼓舞人们要树立雄心壮志,要有远大的理想。

  有一位心理学家到一个建筑工地,分别问三个正在砌砖的工人:

“你在干什么?

  第一个工人懒洋洋地说:

“我在砌砖。

”第二个工人缺乏热情地说:

“我在砌一堵墙。

”第三个工人满怀憧憬地说:

“我在建一座高楼!

  听完回答,心理学家判定:

第一个人心中只有砖,他一辈子能把砖砌好就不错了;

第二个人眼中只有墙,好好干或许能当一位技术员;

而第三个人心中已经立起了一座殿堂,因为他心态乐观,胸怀远大的志向!

  井底之蛙,只能看到巴掌大的天空;

摸到大象腿的盲人,只能认为大象长得像柱子;

登上五岳的人,才能感觉“一览众山小”;

看到大海的人,就会顿感心胸开阔舒畅;

  心中没有希望的人,是世界上最贫穷的人;

心中没有梦想的人,是普天下最平庸的人;

目光短浅的人,是最没有希望的人。

  清代“红顶商人”胡雪岩说:

“做生意顶要紧的是眼光,看得到一省,就能做一省的生意;

看得到天下,就能做天下的生意;

看得到外国,就能做外国的生意。

”可见,一个人的心胸和眼光,决定了他志向的短浅或高远;

一个人的希望和梦想,决定了他的人生暗淡或辉煌。

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