烯效唑浸种对小麦幼苗生长的影响Word格式.docx
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根系活力；
叶绿素含量；
R/T
前言：
烯效唑化学名称：
（E）-1-对氯苯基-2-（1,2,4-三唑-1-基）-4,4-二甲基-1-戊烯-3-醇（C15H18ClN3O），属广谱性、高效植物生长调节剂，兼有杀菌和除草作用，是赤霉素合成抑制剂。
具有控制营养生长，抑制细胞伸长、缩短节间、矮化植株，促进侧芽生长和花芽形成，增进抗逆性的作用。
对后茬作物影响小，可通过种子、根、芽、叶吸收，并在器官间相互运转，但叶吸收向外运转较少。
向顶性明显。
适用于水稻、小麦，增加分蘖，控制株高，提高抗倒伏能力。
用于果树控制营养生长的树形。
用于观赏植物控制株形，促进花芽分化和多开花等。
1、材料与方法
1.1供试材料：
渝麦7号
1.2种子处理及幼苗栽植
1.2.1选种：
选取保存良好未受病虫害危害的小麦种子。
1.2.2表面消毒：
选取的小麦种子用清水洗净后用0.1%升汞消毒10min，然后用清水冲洗3-4次。
1.2.3浸种：
分别用0、10mg/L、20mg/L、40mg/L的烯效唑处理种子24h。
1.2.4催芽：
将不同浓度烯效唑处理后的种子分别均匀平铺在4个盘中，然后在小麦种子上盖上一层湿润的草纸，做好浓度标记放于25摄氏度恒温箱中催芽3-5天。
1.2.5栽植：
取8个杯子，在杯口蒙山纱布，用橡皮筋固定。
取每种以不同浓度烯效唑处理过的小麦种子栽植到纱布上，每种浓度栽植两杯（本次试验中每一组只栽植了一种浓度处理后的小麦种子）。
每杯栽植30株左右，栽植好后再杯内装上清水，水量以能淹到3/4的根长适宜。
小麦种子催芽处理（图片来源于网络）恒温箱中培养（图片来源于网络）
已经发芽的小麦种子（图片来源于网络）栽植小麦幼苗（图片来源于网络）
2、小麦幼苗根系活力测定（TTC法）[1]
2.1标准曲线制作
2.1.1取1mg/L的TTC于50mL容量瓶中，加一勺保险粉和乙酸乙酯后剧烈震荡，使TTC充分还原为红色的TPF并溶与乙酸乙酯，然后用乙酸乙酯定容到容量瓶刻度线。
此时溶液中TPF的浓度为20ug/mL。
2.1.2将上述TPF溶液稀释成系列浓度，取10mL容量瓶8个，分别编号，一次向各管加入TPF溶液0、2.00、4.00、8.00、10.00、12.00、12.00、14.00ug/mL，再加乙酸乙酯定容到刻度线。
2.1.3以空白坐参比在分光光度计上测定485nm下的吸光度，并绘制标准曲线。
2.2样品处理及测定
取根尖（1cm左右）40条，放于内含2mLTTC和2mL磷酸缓冲液的小玻璃瓶中，37摄氏度下保温1h。
然后取出根尖置于滤纸上吸干水分，在研钵中加入5-8mL乙酸乙酯将根尖研磨成匀浆。
研磨后转入离心管离心（3000r/min，2min），离心后将上清液转入试管定容至10mL，摇匀后再分光光度计下485nm波长测定器分光度，并计算其结果。
根系活力（ugTPF.根-1.h-1）=c.v/40*1
3、叶绿素含量测定[2]
3.1实验材料：
小麦叶片0.1g左右
3.2测定方法：
取叶片于研钵中，加入少许Caco3和少量石英砂以及5mL左右80%的乙醇研磨成匀浆。
将匀浆过滤并定容。
取上述溶液1mL稀释至10mL摇匀，以80%丙酮为参比液在分光光度计下633nm和645nm波长下测定器光密度值，并计算结果。
Chla（mg.g-1）=（12.7OD663-2.69OD645）*（V/w*1000）
Chlb（mg.g-1）=（22.9OD645-4.68OD663）*（V/w*1000）
Chl总含量（mg.g-1）=（20.2OD645+8.02OD663）*（V/w*1000）
4、丙二醛（MDA）含量测定[3]
4.1实验材料：
小麦叶片0.5g
4.2实验方法：
取叶片加入石英砂和TCA2mL研磨成匀浆，再加入8mLTCA混匀，转入离心管离心（3000r/min，10min）取上清液加入试管中，加3mLTBA混匀。
同时取3mLTCA和3mLTBA于另一试管中，两试管沸水浴10min，取出冷却至室温后，以后一支试管做参比在分光光度计下测定450nm、532nm。
650nm波长下的吸光度。
C（umol.L-1）=6.45（OD532-OD650）-20.56OD450
MDA含量（umol.g-1FW）=（C*V*10-3）/W
5、形态指标测定
5.1根长：
测定胚芽至最长根尖处的长度，取10个数据求平均数。
5.2根数：
数从胚部发生的根数，取10个数据求平均。
5.3苗高：
测量从胚至最长叶尖处的长度，取10个数据求平均。
5.4叶片数
5.5根干重、叶干重及根冠比（R/T）
取10株幼苗从基部分开，去掉籽粒，分别把根和苗置于两个铝盒中，105摄氏度杀青15-20min，然后80摄氏度烘干至恒重（约4h）称量根干重、叶干重并计算根冠比。
6、游离脯氨酸含量测定——酸性茚三酮法
6.1标准曲线制作
6.1.1取6支试管，按以下数据配置溶液
管号
1
2
3
4
5
20ug/mL脯氨酸
0.4
0.8
1.2
1.6
2.0
80%乙醇
茚三酮
冰醋酸
6.1.2把各试管摇匀后置于沸水浴保温15min，冷却至室温后再分光光度计下以515nm波长测定其分光度，并绘制标准曲线。
6.2样品的提取及测定
6.2.1取叶片0.5g左右，研磨成匀浆后转入大试管，80摄氏度保温20min。
再加入人造沸石和活性炭，震荡2min过滤。
6.2.2测定：
用乙醇定容至刻度线，沸水浴5min冷却至室温后以2mL乙醇+2mL茚三酮+2mL冰醋酸做参比在分光光度计下用515nm波长测定其分光度。
7、结果与分析
7.1不同浓度烯效唑处理对渝麦7号幼苗根活力的影响
表1:
不同浓度烯效唑处理对渝麦7号幼苗根活力的影响
处理浓度（mg/L）
根系活力（ugTPF·
g-1株·
h-1）
1.315
10
2.635
20
2.717
40
1.804
图1：
不同浓度烯效唑处理对渝麦7号幼苗根活力的影响
由表1和图1可以看出经不同浓度的烯效唑浸种处理后，小麦的根系活力均较未经处理有所提高；
但到达一定程度后随着烯效唑浸种浓度的提高根系活力有所降低。
以上4种浓度相比较约15mg／L的稀效唑溶液处理的小麦种子，根系活力最强。
7.2不同浓度烯效唑处理对渝麦7号幼苗叶绿素含量的影响
表2：
不同浓度烯效唑处理对渝麦7号幼苗叶绿素含量的影响
Chla含量（mg·
L-1）
Chlb含量（mg·
0.607
1.3395
1.945
0.817
0.1795
0.997
1.12
0.4558
1.666
0.837
0.2569
1.09
图2:
不同浓度烯效唑处理对渝麦7号幼苗叶绿素含量的影响
由表2和图2可以看出不同浓度烯效唑处理后幼苗叶绿素含量都在一定程度上有所下降；
10mg/L处理的下降最为明显，以后又呈上升趋势，超过20mg/L后趋于平稳。
7.3不同浓度烯效唑处理对渝麦7号幼苗丙二醛含量的影响
表3:
不同浓度烯效唑处理对渝麦7号幼苗丙二醛含量的影响
MDA含量（μg/g.FW）
4.799*10-3
5.59*10-3
4.5885*10-3
3.2325*10-3
图3:
由表3和图3可以看出不同浓度的烯效唑溶液浸种后小麦幼苗叶片中MDA的含量先有稍稍上升，以10mg/L的处理浓度达到上升顶端，随后显著下降，总体较未处理小麦幼苗MDA含量有大幅下降。
7.4不同浓度烯效唑对渝麦7号幼苗的形态特征的影响
表4:
不同浓度烯效唑对渝麦7号幼苗的形态特征的影响
苗高（cm）
根长（cm）
根数
叶片数
苗干重（g）
根干重（g）
22.53
21.99
6.6
2.4
0.176
0.0905
0.514
15.42
23.72
5.4
0.1823
0.1043
0.572
11.81
29.82
4.3
2.75
0.1463
0.0973
0.665
11.52
25.47
3.6
2.65
0.133
0.096
0.722
图4:
不同浓度烯效唑对渝麦7号幼苗的苗高和根长的影响
图5:
不同浓度烯效唑对渝麦7号幼苗的根数和叶片数的影响
图6:
不同浓度烯效唑对渝麦7号幼苗的根干重和苗干重的影响
图7:
不同浓度烯效唑对渝麦7号幼苗的根冠比的影响
由表4和图4、图5、图6、图7可以看出：
不同浓度烯效唑对渝麦7号幼苗的形态特征的影响以经不同浓度的烯效唑浸种处理后，随着烯效唑浸种浓度的提高，抑制株高的作用越来越明显；
对根的作用则相反，小麦根系长度增加；
根数随处理浓度减少，叶片数反之。
根冠比与对照相比也随着处理浓度的增长缓慢增加。
8、结论与讨论
烯效唑是植物生长延缓剂，其作用机理是抑制赤霉素的生物合成，降低内源赤霉素水平；
从而抑制细胞的伸长，延缓植物生长。
本研究表明，烯效唑浸种能明显控制幼苗高度，使得苗高显著降低，表现较好的壮苗长势长相，且这种控高促壮效应随烯效唑浓度的增大而增强。
同时烯效唑浸种处理小麦幼苗能增强根系活力。
烯效唑处理的幼苗根系活力显著提高，使根系的代谢作用更旺盛，促发新根，达到壮苗的效果,这有利于作物育更好的苗，从而提高经济效益。
参考文献：
[1]熊庆娥.植物生理学实验教程[D].四川科学技术出版社.2011年8月
[2]李合生.现代植物生理学[D].高等教育出版社.2011年12月
[3]樊高琼刘帆任万军.烯效唑干拌种对小麦叶片衰老特性的影响[J].四川农业大学学报,2007
[4]唐国雄.烯效唑对小麦生长的影响[J].2007
[5]杨安中.烯效唑对小麦产量及产量因素的影响[D].《安徽农业技术师范学院学报》.1996年02期
鸣谢：
本次有关烯效唑浸种对小麦生长的影响及论文撰写终于完成，在这过程中遇到了无数的困难和障碍，都在老师和同学的帮助下度过了。
尤其要强烈感谢曾富春老师，她在课堂上和课外对我进行了无私的指导和帮助，在此向帮助和指导过我的曾老师和每一位参与了实验并无私提供了实验数据的同学表示最衷心的感谢。
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