检验科标本采集手册范本Word文档下载推荐.docx

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1.目的

抽取静脉血标本以做各项检验。

2.适用范围

适用于本科做生化、免疫、血常规等项目所需血液标本的采集。

3.物品准备：

止血带、一次性垫巾、无菌棉签、复合碘消毒液、一次性采血针、负压真空管（数量和种类根据要求选取后检查灭菌日期、有效期及有无漏气）、试管架、编号笔、口罩。

4.检验申请单填写要求：

4.1检验申请单用钢笔填写，使用正楷字，字迹清楚，填写完整。

4.2填写内容包括：

受检者姓名、性别、年龄、临床诊断、送检标本、检验项目、标本采集年月日时、申请医生及采样者签名。

5.操作步骤：

5.1查对检验申请单、受检者姓名及是否已按医嘱准备，向受检者解释操作目的，以取得合作。

在采血管上贴好与检验申请单相对应的标签。

5.2选择血管，常用肘窝静脉、肘正中静脉、前臂内侧静脉，小儿可采用颈外静脉、大隐静脉。

5.3在穿刺部位肢体下放一次性垫巾、止血带。

5.4用复合碘棉签消毒穿刺部位。

5.5在静脉穿刺部位上方4-7厘米处扎止血带，嘱受检者握紧拳头，使静脉充盈显露。

5.6穿刺：

推荐使用真空采血技术。

摘掉静脉穿刺针上的保护套，进行静脉穿刺，穿刺成功后，用贴好标签的负压真空管采集静脉血，松开止血带，受检者松拳，用棉签压住进针处，拔出针头，嘱采血对象按压2-3分钟。

5.7为受检者整理衣袖。

5.8采血完毕后，产生的医疗垃圾按规定分类处理。

6.注意事项

6.1采血前应核对好姓名和检验项目，明确标本要求。

6.2抗凝管收集血标本后，立即将试管轻轻颠倒5～6次，使血液与抗凝剂充分混匀。

6.3一般生化、免疫检验用干燥非抗凝管收集标本，采样量3-5ml。

若检验项目较多，应适当增加采样量。

6.4血常规检验用EDTAK2抗凝管收集标本，采样量0.5-1毫升。

6.5凝血四项、血红蛋白电泳、3P试验用枸橼酸钠（0.2ml）抗凝管收集标本，采样量必须准确，为1.8ml。

血沉用枸橼酸钠0.4ml抗凝，抽血1.6ml。

6.6高铁血红蛋白还原试验（G6PD）以枸橼酸钠0.2ml抗凝，另加入葡萄糖20mg，抽静脉血1.8ml，混匀。

6.7糖化血红蛋白测定需用肝素管抗凝。

6.8血液粘度测定需同时抽取血常规、血沉和肝素抗凝血（5ml）三份样本。

6.9餐后，血糖、血脂可增加而影响测定结果，故一般应空腹抽血。

有些食物成分：

高蛋白、高脂及饮食可引起血中蛋白、血脂、尿酸增高；

香蕉、咖啡等可引起尿中儿茶酚胺代谢产物的测定等。

6.10药物影响：

如异菸肼、庆大毒素、氨芐青毒素可使谷丙转氨酶活性增高、咖啡因可使胆红素增加。

因此，建议检查前几天就停止使用有干扰的药物，且申请单最好能注明近期用药情况。

7.标本运输及实验前存放：

低温条件2-8℃或室温运输，1小时内送检。

1小时内分离出血清，室温放置不超过4小时，4℃保存不超过8小时，长时间保存需在冰冻条件下，且只能冻融1次。

标本拒收标准：

抗凝剂不符合，采血量不准确，凝固，溶血，脂血、无条码、无标识标本不能作测定。

8.附加检验项目申请：

8.1标本采集送出后需附加检验项目的，其申请应在标本采集当天上午11点30分以前电话通知实验室。

8.2附加检验项目申请为本检验科目录外项目的需提前一天与检验科联系，以便联系其它实验室进行检测。

9.其它：

如分析失败，将对同一原始样本进行检验。

如仍不能发出报告者，分析原因并告知受检者重新采样检验。

10.相关文件

10.1采样管理程序

10.2标本管理程序

11.相关记录

末梢血采集作业指导书

采集末梢血标本以做门诊血常规检验。

适用于门诊检验科做血常规等项目所需血液标本的采集。

一次性采血针、75%酒精、无菌棉球、0.5毫升离心管

（EDTAK2抗凝管）、试管架、编号笔、微型震荡器、口罩。

受检者姓名、性别、年龄、化验单编号、临床诊断、送检标本、检验项目、标本采集标本年月日时、申请医生及采样者签名。

5.2常用选择无名指，先用酒精棉球消毒，然后用一次性采血针穿刺，让血液自然流出，用消毒棉球轻拭去第一滴后，将血液收集在0.5毫升离心管（EDTAK2抗凝管），约0.2-0.3毫升。

5.3用干棉球压住穿刺部位，嘱采血对象按压2-3分钟。

5.4在微型震荡器混匀。

马上送检。

6.2血常规用EDTAK2抗凝管收集血标本后，在微型震荡器混匀，使血液与抗凝剂充分混匀。

6.3除特殊情况外，不要在耳垂采血。

婴幼儿可自拇指或足跟两侧采血。

烧伤患者可根据情况选用皮肤完整的肢体末端。

采血部位应无炎症或水肿。

末梢采血不可用力挤压。

立即送检，如需保存，可置2-8℃存放不超过8小时。

8.其它：

9.相关文件

9.1采样管理程序

9.2标本管理程序

10.相关记录

动脉血液采集作业指导书

抽取动脉血标本，主要用做血气分析。

适用于血气分析所需血液标本的采集。

止血带、一次性垫巾、无菌棉签、复合碘消毒液、注射器（数量和种类根据要求选取后检查灭菌日期、有效期及有无漏气）、试管架、编号笔、口罩。

受检者姓名、性别、年龄、临床诊断、送检标本、

检验项目、用药情况、抽血时的体温、是否用氧及其流量、标本采集年月日时、申请医生及采样者签名。

5.1查对检验申请单、受检者姓名及是否已按医嘱准备，向受检者解

释操作目的，以取得合作。

5.2采血时用2-5ml干燥注射器，按无菌手续抽取肝素抗凝素（lml=1000U，生理盐水配制）0.2m1，来回抽动针栓，使针管全部湿润，将多余的肝素排出。

5.3选择血管，常用股动脉、肱动脉或桡动脉。

5.5选择动脉搏动最强处穿刺。

5.6穿刺

5.6.1旋紧持针器上的针头，摘掉穿刺针上的保护套，试穿刺针是否通畅。

5.6.2进行动脉穿刺，穿刺成功后，采集动脉血2ml，用棉签压住进针处，拔出针头，嘱采血对象按压2-3分钟。

5.7抽出后立即用一橡皮头封闭针头，隔绝空气，将注射器重于手中

反复旋转搓动即达抗凝，立即送检。

6.2采血中注意隔绝空气，空气中的氧分压高于动脉血，二氧化碳分

压低于动脉血，从而使血液中pO2及pCO2都改变而无测定价值。

6.3立即送检，血液不得放置过久，否则血细胞继续新陈代谢，影响数据准确。

6.4若静脉采血，可将手及前臂浸人45℃温水中20分钟，使局部静脉血动脉化，穿刺时勿用压脉带，只能缓缓吸引。

6.5也可将手指或耳垂（婴儿取足跟、大趾或头皮）毛细血管热敷或按摩，充分动脉化，以容量100l-140l肝素化毛细玻管采血。

针刺深度以血液自然流出为宜，收集时切忌气泡引入毛细玻管。

7.标本运输及实验前存放

7.1立即送检。

7.2如不能及时送检，应放入冰水中保存（勿用冰快，以防细胞破坏溶血）。

尿液标本采集作业指导书

采集尿液标本以做尿液常规、生化检验。

适用于本科做尿液常规、生化项目所需尿液标本的采集。

专用一次性尿杯、编号笔。

5.1查对检验申请单、姓名，向受检者解释操作目的，以取得合作。

5.2发一次性尿杯一个给受检者，嘱受检者留取新鲜尿立即送检，以清晨第一次中间段尿为宜。

5.3受检者按要求自己用一次性尿杯留取半杯尿标本交检验科编号待检。

6.1根据采集时间，可分为晨尿、随机尿、空腹尿、餐后尿、计时尿（2h、3h、12h、24h）等。

一般定性分析测定，可在任意时间留取标本。

常规定性分析，多采用晨尿。

计时尿多用于肾功能和有形成分排出率的估计。

许多定量分析需收集24小时尿液。

微生物检验的标本应取尿道排出的中段尿并立即送检。

一般尿液检查应留取新鲜尿液置清净、干燥容器中立即送检。

（静脉滴注大剂量青霉素、VitC时可影响尿蛋白、尿糖及尿隐血结果，应尽量避免）。

6.2特殊检验如尿妊娠试验、尿糖定性试验一般应取空腹晨尿送检。

6.3标本应避免污染。

一般定性分析标本，应在留取后马上检测。

若需保存、或收集24小时尿液，原则上应首选0～4℃冷藏，必要时可添加化学防腐剂。

常用的化学防腐剂有：

a.甲苯（或二甲苯）：

较常用，如24h尿糖定量、尿蛋白定量测定。

100ml尿液中加1ml。

不能制止尿液中已有细菌的繁殖。

b.氯仿：

防腐效果较甲苯好。

可能干扰尿沉渣镜检。

c.盐酸：

分析测定甾体激素及其衍生物或儿茶酚胺以及含氮物质时常选用。

100ml尿液中加1ml，或24小时尿液中10-15ml。

d.甲醛：

100ml尿液中加0.5ml。

用于24h尿无机离子定量及艾迪氏计数测定可干扰尿糖测定和干化学法的白细胞测定。

7.其它：

8.相关文件

8.1采样管理程序

8.2标本管理程序

9.相关记录

粪便标本采集作业指导书

采集粪便标本以做粪便常规和其他检验。

适用于本科做粪便常规和其他检验项目所需粪便标本的采集。

5.2发一次性尿杯一个给受检者，嘱受检者留取粪便标本一小时内送检。

5.3受检者按要求自己用一次性尿杯留取粪便标本交检验科工作人员编号待检。

6.1粪便常规检验留取5g左右（指头大小），粪便标本应留取新鲜粪便的病理成份，如粘液、血液（红色或黑色部份）；

若无病理成分，可各部位取材。

不得被其他异物污染，不能从尿布上取粪便标本，不得从尿壶或便盆中取标本。

6.2潜血试验，应嘱患者收集标本前3天禁食动物性食物。

服用铁剂、铋剂、动物血液及绿叶蔬菜等可影响隐血测定应注意避免。

6.3细菌检查的粪便标本应收集于灭菌封口的容器内，勿混入消毒剂及其它化学药品。

6.4阿米巴滋养体检测应注意标本保温并立即送检，立即检测。

血吸虫毛蚴孵化需全量新鲜标本（不少于30g）。

8.1标本采集管理程序

前列腺液采集作业指导书

留取前列腺液标本以做各项检验。

适用于本科做前列腺液分析各项目所需标本的采集。

洁净玻片或试管。

受检者姓名、性别、年龄、临床诊断、送检标本、检验项目、标本采集年月日时、申请医生及标本采集者签名。

5.1查对检验申请单、姓名，向受检者解释操作目的、注意事项，以取得合作。

5.2由临床医生采用前列腺按摩术，采集前列腺液于清洁玻片上（或容器内）立即送检。

6.标本运输及实验前存放：

标本应立即送检。

精液采集作业指导书

留取精液标本以做各项检验。

适用于本科做精液分析各项目所需精液标本的采集。

专用洁净干燥青霉素瓶。

受检者姓名、性别、年龄、临床诊断、送检标本、检验项目、标本采集年月日时、申请医生签名。

5.2发专用干净青霉素瓶一个给受检者，自己采用手淫方法取精液盛于干净小瓶中内，送交门诊检验室编号待检。

6.1精液检验请一周内禁欲。

6.2不能用安全套取精液送检。

一小时后取结果。

（早上11：

00前送检，下午4：

30前送检）

7.1标本立即送检。

7.2冬季应保温送检标本。

9.1标本采集管理程序

脑脊液采集作业指导书

抽取脑脊液标本以做常规、生化、免疫、细菌学等项目检验。

适用于本科做常规、生化、免疫、细菌学检验的脑脊液标本采集。

一次性垫巾、复合碘消毒液、2﹪利多卡因、血管钳、无菌洞巾、无菌纱布、无菌棉签、骨髓穿刺针、口罩、载玻片，试管及无菌管等。

5.1部位

5.1.1以髂后上棘连线与后正中线的交点为穿刺点，相当于第3～4腰椎棘突间隙，有时也可在上一或下一腰椎间隙进行。

5.2方法

5.2.1患者侧卧于硬板床，背部与床面垂直，两手抱膝紧贴腹部，头向前胸屈曲，使躯干呈弓形，脊柱尽量后凸以增宽脊椎间隙。

5.2.2常规消毒，戴无菌手套，覆盖无菌洞巾，用2％利多卡因自皮肤到椎间韧带作局部麻醉。

5.2.3术者用左手固定穿刺皮肤，右手持穿刺针以垂直背部方向缓缓刺入，针尖稍斜向头部，成人进针深度约4～6厘米，儿童约2～4厘米。

当针头穿过韧带与硬脑膜时，有阻力突然消失落空感，此时可将针芯慢慢抽出，即可见脑脊液流出。

5.2.4放液前先接上测压管测量压力，正常侧卧位脑脊液压力为70～180mmH2O或40～50滴每分钟。

可作Queckenstedt试验，了解蛛网膜下腔有无阻塞。

即在测初压后，由助手先压迫一侧颈静脉约10秒，再压另一侧，最后同时压双侧颈静脉。

正常压迫静脉后，脑脊液压力立即迅速升高一倍左右，解除压迫后10～20秒，迅速降至原来水平，称为梗阻试验阴性，示蛛网膜下腔通畅。

若压迫颈静脉后，不能使脑脊液压力升高，则为梗阻试验阳性，示蛛网膜下腔完全阻塞。

若施压后压力缓慢上升，放松后又缓慢下降，示有不完全阻塞。

颅内压增高者，禁作此试验。

5.2.5撤去测压管，收集脑脊液2-5ml送检；

脑脊液应采集三管，第一管用于细菌培养检查（无菌操作），第二管用于常规检查，第三管用于生化检查。

5.2.6术毕，将针芯插入后一起拔出穿刺针，覆盖消毒纱布，胶布固定。

5.2.7去枕平卧4～6小时，以免引起术后低颅压头痛。

6.1严格掌握禁忌症，凡疑有颅内压升高者必须先作眼底检查，如有明显视神经乳头水肿或有脑疝先兆者，禁忌穿刺。

凡患者处于休克、衰竭或濒危状态以及局部皮肤有炎症，颅后窝有占位性病变者均列为禁忌。

6.2穿刺时患者如出现呼吸、脉搏、面色异常时，应立即停止操作，并作出相应处理。

6.3鞘内给药时，应先放出等量脑脊液，然后再等量置换性药液注入。

6.4标本采集前应核对好姓名和检验项目，明确标本要求。

6.5收集标本后，必须立即送检。

久置可致细胞破坏，葡萄糖分解，病原菌破坏或溶解。

细胞计数标本应注意防止凝集。

7.1脑脊液标本应立即送检。

7.2用于微生物检验的标本应注意保温，不可置冰箱保存。

浆膜腔积液（胸水）采集作业指导书

抽取浆膜腔积液（胸水）标本以做各项检验。

适用于本科做生化、免疫、微生物等项目所需的浆膜腔积液（胸水）采集。

一次性垫巾、复合碘消毒液、2﹪利多卡因、血管钳、无菌洞巾、无菌纱布、无菌棉签、胸腔穿刺针、一次性注射器、试管（数量和种类根据要求选取后检查灭菌日期、有效期及有无漏气）、试管架、编号笔、口罩。

在胸部叩诊实音最明显的部位，一般取肩胛线或腋后线第7～8肋间，有时也可取腋中线第6～7肋间或腋前线第5肋间。

5.2.1取坐位，两前臂置于椅背上，前额伏于前臂上；

不能起床者可取半卧位，前臂上举抱于枕部。

5.2.2常规消毒，拿无菌手套，覆盖无菌洞巾。

5.2.3用2﹪利多卡因在下一肋骨上缘的穿刺点自皮肤至胸膜壁层进行局部浸润麻醉。

5.2.4术者以左手食指和中指固定穿刺部位皮肤，右手将穿刺针的三

通活栓转到与胸腔关闭处，再将穿刺针在麻醉处缓缓刺入，当针锋抵挡感突然消失时，将三通活栓转至与胸腔相通，进行抽液。

注射器抽满后，转动三通活栓使其与外界相通，排出液体。

如用较粗的长穿刺针代替胸腔穿刺针时，先将针座后连续的橡皮管用血管钳夹住，然后进行穿刺，进入胸腔后再接上注射器，松开止血钳，抽吸液体，抽满后再次夹住橡皮管，取下注射器，将液体注入弯盘，计量及送检,作培养时应用无菌操作法留标本。

5.2.5抽液结束后拔出穿刺针，覆盖无菌纱布，稍用力压迫片刻，用

胶布固定后嘱患者静卧。

6.1手术前向患者说明穿刺目的，消除顾虑，精神紧张者，可于术前

半小时给地西泮10mg，或可待因30mg以镇静止痛。

6.2术中密切观察患者反应，如有头晕、面色苍白、出汗、心悸、胸部压迫感等反应，或出现连续性咳嗽、气促等现象，应立即停止抽液，并皮下注射0.1％肾上腺素0.3～0.5ml或进行其他对症处理。

6.3一次抽液不应过多，诊断抽液50～100ml即可；

减压抽液，首次不超过600ml，以后每次不超过1000ml；

如为脓胸，每次尽量抽尽。

6.4严格无菌操作，操作种防止空气进入胸腔，始终保持胸腔血压。

6.5标本采集前应核对好姓名和检验项目，明确标本要求。

6.6收集标本后，为防止细胞变性出现凝固或细菌破坏溶解等，必须立即送检。

可于每1000ml标本中加人EDTA100mg抗凝，以利于细胞涂片检测。

7.1低温条件2-8℃运输。

7.2微生物检验标本不应置于冰箱内，以免细菌死亡而使培养阴性。

浆膜腔积液（腹水）采集作业指导书

抽取浆膜腔积液（腹水）标本以做各项检验。

适用于本科做生化、免疫、微生物等项目所需的浆膜腔积液（腹水）采集。

一次性垫巾、复合碘消毒液、2﹪利多卡因、血管钳、无菌洞巾、无菌纱布、无菌棉签、、胸腔穿刺针、一次性注射器、试管（数量和种类根据要求选取后检查灭菌日期、有效期及有无漏气）、试管架、编号笔、口罩。

检验项目、标本采集年月日时、申请医生及采样者签名。

5.1.1左下腹脐与骼前上棘连线的中、外1/3交点。

5.1.2脐与耻骨联合连线中点上方1.0厘米，偏左或偏右1.5厘米处。

5.1.3侧卧位，在脐水平与腋中线之延长线相交处。

此处常用于诊断性穿刺。

5.1.4少量积液，尤其有包裹性