CD4+和CD8+T淋巴细胞检测.docx
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CD4+和CD8+T淋巴细胞检测
CD4+和CD8+T淋巴细胞检测
1 范围
本章规定了用多平台三级程序法和单平台一步法检测全血中的CD4+和CD8+T淋巴细胞。
2 规范性引用文件
1997RevisedGuidelinesforPerformingCD4+T-CellDeterminationsinPersonsInfectedwithHumanImmunodeficiencyVirus（HIV）MMWR46（RR-2）;1-29Publicationdate:
01/10/1997。
3 实验室条件
3.1人员
进行HIV感染者CD4+和CD8+T淋巴细胞检测的人员须具有艾滋病实验室的上岗资格，并接受过省级以上艾滋病实验室安全及实验操作技术培训。
3.2 设施和设备
3.2.1 样品处理区：
生物安全柜、离心机、冰箱、水浴箱、旋转振荡器、精确移液器（5μl~50μl、20μl~200μl、200μl~1000μl）。
3.2.2 流式细胞仪检测区：
流式细胞仪
3.3 功能分区
实验室原则上应分为样品处理区和流式细胞仪检测区,各区的功能是：
3.3.1 样品处理区应达到生物安全Ⅱ级（BSL-2）实验室要求，用于样品处理、流式检测样品制备。
3.3.2 流式细胞仪检测区用于制备好的样品上机检测。
4 样品采集、运输和接收
4.1 样品的采集
4.1.1 选择合适的抗凝剂，分别用于血液学检测和流式细胞仪的免疫表型检测。
4.1.1.1 用于血液学检测的抗凝剂
（1）EDTA（1.5±0.15mg/ml血液）。
（2）在血球分析仪生产商允许的时间范围内检测，不超过30h，不检测超出抗凝时间范围的样品。
4.1.1.2 用于流式细胞仪免疫表型检测的抗凝剂
（1）用K3EDTA抗凝，收集样品应在30h以内，尽早（8h以内）处理。
（2）用ACD或肝素抗凝，收集样品在48h以内，尽早（8h以内）处理。
4.1.2 静脉采血收集血样，将血液注入一个事先加入适当抗凝剂的试管（用真空试管）。
4.1.2.1 当收集儿童样品时，采用儿童用注射器、小试管。
4.1.2.2 采血后立即握住试管两端，颠倒混匀数次，将血液与抗凝剂混匀，以防止凝固。
4.1.3 准备适当数量的样品管
4.1.3.1 当同一样品的血球检测和流式细胞仪免疫表型检测在不同实验室内进行时，用2个装有K3EDTA的试管即可。
4.1.3.2 在所有其它条件下用2个试管（用K3EDTA作血球检测，用K3EDTA、ACD或肝素作流式细胞仪免疫表型检测）。
4.1.4 对所有样品编号，并写明日期和收集时间。
4.2 样品运输
4.2.1 在室温下（18~23℃）保存和运输样品，避免极端温度（冷冻或过热）。
超过37℃的温度会破坏细胞，对血液学和流式细胞仪的检测有影响。
天气热时，需要用一个隔热的容器装样品，并且把这个容器放于另一个有冰袋和吸热物质的容器中。
这种方法有助样品的保存。
4.2.2 尽可能快地将样品送至免疫表型检测实验室。
4.2.3 如需运送样品到其它地点时，应将装样品的试管放于一个防漏的容器中，并将此容器放于一个装有充足的吸水性物质的纸罐中，以防止震动并可吸收所有因试管破裂漏出的血液。
盖紧纸罐，用橡皮带系紧。
4.2.4应选择特定的方案，并且安排合适的时间收集和运输样品。
4.3 样品接收
4.3.1 样品到达以后立即检查试管及其所装的血样。
4.3.2 如有以下现象发生，采取正确的方法处理：
4.3.2.1 如果样品较热或较冷，但没有明显的溶血或结冰，可以处理样品，但要在工作表的报告上注明温度条件。
不要马上加热和冷冻样品以使其达到室温，因为这样会对免疫表型检测的结果产生不利的影响，散射光模式的不正常会显示出所受到的影响。
4.3.2.2 不可检测溶血或结冰的样品。
4.3.2.3 不可检测凝血的样品。
4.3.2.4 如果样品的采集时间已超出48h，不可检测。
5 方法
目前用于CD4+和CD8+T淋巴细胞计数的检测方法分为自动检测方法和手工操作法。
自动检测方法包括流式细胞仪（主要采用单平台一步法）和专门的细胞计数仪，手工操作法包括几种手工操作试验，需要显微镜或酶联免疫试验设备。
6实验资料的记录
6.1 实验应及时、准确地记录结果。
6.2 实验记录中应包括以下内容：
日期、操作者、所有样品、实验内容、过程（步骤）、结果及有无事故等。
6.3 整个实验室的实验资料要统一有专人负责，按固定格式记录在案。
6.4 计算机生成的实验结果，存档备案；定期拷贝计算机结果文档，备案保存。
7 结果报告
7.1 按照实验结果填写CD4+和CD8+T淋巴细胞检测报告单，检测人员签字。
7.2 根据CD命名标准报告数据，用一个简短的描述解释命名的意义。
注意：
CD4+T细胞是指辅助性T细胞。
正确的报告CD4+T细胞应该是那些CD4+和CD3+双阳性的细胞。
同样地，CD8+T细胞是T-suppressor/cytotoxic细胞，为CD3+和CD8+双阳性的细胞。
在CD4+和CD8+的判定中重要的是排除其它细胞（非T细胞）的干扰。
7.3 以全部淋巴细胞的百分比报告数据，并且修正门内淋巴细胞纯度。
例如，如果淋巴细胞纯度是94%，而CD3值为70%，可以通过0.7除以0.94乘以100得到74%，修正CD3的值。
7.4 为检测免疫亚群而取血的同时，用该血样作自动测定全血细胞（CBC）计数白细胞（WBC）及分类测定，报告淋巴细胞亚群绝对数值。
7.4.1 用淋巴细胞的总数（来自于WBC及分类）乘以淋巴细胞亚群的百分率（从流式细胞仪的数据中得到），计算绝对数值。
7.4.2 如可能，应报告计数的百分率和绝对值。
7.5 单平台一步法由计算机软件直接出结果并打印出报告单，报告单的内容包括如下结果：
CD45+AbsCnt；CD3+AbsCnt；CD3+CD4+%TLym；CD3+CD4+AbsCnt；CD3+CD8+%TLym；CD3+CD8+AbsCnt；Th/Ts及其正常参考值范围（BD公司建立的正常参考值范围见表3），检测人员签字。
表3 BD公司应用单平台一步法建立的正常参考值范围表
项 目
单 位
参考正常值范围
CD3+/CD45+
%
56%~85%
CD3+绝对数
个/μl
1027~2086
CD3++CD8+/CD45+
%
15%~34%
CD3++CD8+绝对数
个/μl
323~836
CD3++CD4+/CD45+
%
30%~54%
CD3++CD4+绝对数
个/μl
706~1125
CD4+/CD8+比值
1~2*
*另有报告：
①0.68-2.47（中华检验医学杂志，2003，26
（2）：
123-125）
②0.71-2.87（中华检验医学杂志，1998，21（4）：
223-227）
③1.38±0.34（中华检验医学杂志，1998，21
（2）：
98）
7.6 应报告所有相关数据的正常值范围（如CD4＋T淋巴细胞百分率和绝对数）。
每个实验室都应测定参考数值。
应分别建立成人和儿童的正常值参考范围，在对病人样品检测时应使用合适的参考值。
7.7 报告单经复核人复核签字及签发，加盖检验专用公章后发出。
7.8 报告发放时，可经挂号邮寄或直接交给送检人。
8 质量控制和评价
制定质量保证计划，建立内部质量控制制度。
参加室间质量评价。
正常参考数据见7.5。
9 检测CD4+、CD8+T淋巴细胞的意义
T淋巴细胞是机体免疫系统内功能最重要的一群细胞。
在正常机体内各淋巴细胞亚群相互作用，维持着机体正常免疫功能。
当不同淋巴细胞亚群的数量和功能发生异常时，可导致机体免疫功能紊乱并发生一系列病理变化。
因此，Ｔ淋巴细胞亚群的免疫分型能够提供有关患者免疫状态的重要信息。
AIDS是由HIV引起的一组综合征，HIV主要侵犯人CD4+T淋巴细胞，导致其数量上的减少和功能缺陷，使机体免疫平衡被打破造成免疫功能低下，最终导致各种机会感染和肿瘤。
因而，对HIV感染者和AIDS病人定期进行CD4+、CD8+T淋巴细胞检测具有十分重要的意义。
主要表现在以下几个方面：
9.1 了解机体的免疫状态以进行疾病分期，如美国CDC就是以此为基础制订了HIV感染者/AIDS病人的诊断和分类标准（见表4），目前国内外仍被采纳应用。
表4 1993年修订的HIV感染的分类系统和青少年及成人扩展的AIDS监测病例定义
CD4+T淋巴细胞数范围
临床分类
A
无症状，急性（原发）HIV或PGL
B
有症状，非（A）或（C）
C
艾滋病指征性疾病
1．≥500/μl
（≥29%）
A1
B1
C1
2．200~499/μl
（14%~28%）
A2
B2
C2
3．200/μl
（<14%）
A3
B3
C3
备注：
A、B、C的解释请参考《艾滋病病毒感染的诊断与治疗》邵一鸣、蒋岩、栾文民主译，
科学出版社，2002年。
9.2 长期监测CD4+T淋巴细胞绝对数的变化，有助于了解患者的病情发展，决定正确的治疗方案，并观察对治疗的反应。
如判断HIV感染者的临床合并症（当CD4+T淋巴细胞细胞＜200/ml时，很容易发生卡氏肺孢子虫肺炎；当CD4+T淋巴细胞<50时，易发生CMV感染）。
9.3 帮助确定抗HIV药物治疗及预防机会性感染治疗的适应症，如当CD4+T淋巴细胞＜200/ul时，应给予抗卡氏肺孢子虫肺炎的预防性治疗。
9.4 是用来评价一些新的、针对HIV的治疗方法和治疗药物疗效的重要指标。
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