高效液相色谱法EP4Word文档格式.docx

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高效液相色谱法EP4Word文档格式.docx

液相色谱法中使用的固定相有多种,包括:

—二氧化硅、氧化铝或多孔石墨,用于正常相色谱法。

该方法是根据吸附和(或)质量分布的不同进行分离。

—树脂或带酸基(或碱基)的多聚体,用于离子交换色谱法。

该方法是在待分离的离子与移动相中的离子之间的竞争基础上进行分离。

—多孔硅石或多聚体,用于尺寸排阻色谱法。

该方法是根据分子量之间的不同进行分离的,与空间排阻法色谱法相对应。

—多种由多聚体、硅石或多孔石墨经过化学变性的固定相,用于反相液体色谱法。

该方法是主要根据移动相和固定相之间的分子隔离来进行分离。

— 

 

经过特殊化学变性的固定相如纤维素或直链淀粉衍生物、蛋白质或肽、环糊精等,用于旋光对映体的分离(手性色谱法)

大多数分离都基于一种隔离机制,即用化学变性硅作固定相,用极性溶剂作移动相。

载体(如二氧化硅的硅烷醇基)的表面与各种硅烷试剂发生反应,在载体表面产生以共价键联系的、覆盖大量活动部位的甲硅烷基衍生物。

键合相的性质是确定色谱系统分离性能的一个重要参数。

现将常用的键合相列于下表中:

辛基

Si-(CH2)7-CH3

C8

十八烷基

Si-(CH2)17-CH3

C18

苯基

Si-(CH2)n-(C6H5)

C6H5

氰基丙基

Si-(CH2)3-CN

CN

氨基丙基

Si-(CH2)3-NH2

NH2

二醇

Si-(CH2)3-OCH(OH)-CH2-OH

除非制造商另有说明,使用二氧化硅的反相色谱柱在pH值为2。

0~8。

0的移动相中是稳定的。

而装有多孔石墨或聚合物颗粒(如苯乙烯-二乙烯基苯共聚物)的色谱柱在更宽的pH值范围内是稳定的。

在某些情况下,可用未改性的二氧化硅、多孔石墨或化学变性的极性硅(如氰基丙基或二醇)做固定相,加上非极性移动相进行正常相色谱分析。

用于分析分离时,最常用的移动相的粒度为3μm~10μm不等。

移动相的颗粒可以是不同孔径和比表面积的球状或不规则形状。

这些参数构成了固定相的色谱特性。

就反相来说,其固定相的性质、键合程度(如以载碳表示的)以及该固定相是否有尾帽(即残留的甲硅烷醇基已被甲硅烷基化)仍是其决定因素。

当残留甲硅烷醇基存在时,会产生拖尾峰,特别是碱性物质的拖尾峰。

除非专论中另有规定,分析色谱法中使用的色谱柱应为不锈钢,其长度和内径各异(Ø

)。

内径小于2mm的柱子通常叫做微孔柱。

分析时,移动相和柱子的温度必须保持恒定。

大多数分离是在室温下进行的,但是可以给柱子加热,提高柱效。

在给柱子加热时,建议温度不超过60 

°

C,以免固定相老化或移动相的成分发生变化。

移动相

对正常相色谱分析法来说,其使用的极性溶液要少些。

严格控制移动相中的水份,才能得到可再现的结果。

而在反相液相色谱分析法中,则使用水性移动相(有机改性剂可有可无)。

移动相的组份通常需过滤,除去大于0。

45 

μm的微粒。

多组份的移动相的制备方法是:

(除非规定了质量)量取各组份所需体积后进行混和。

或者,可以用配量阀控制的单个泵来输送溶剂,所需的溶剂在配量阀中按比例进行混和。

泵送前,通常用喷射氦、音波或在线膜(或真空模块)的方式以避免在检测器中产生气泡,从而脱去溶剂中的气泡。

配制移动相所有的溶剂通常不含稳定剂,若用紫外检测器,其在检测波长上应是透明的。

所用溶剂及其他成份的质量应合适。

如需调节pH时,只能用移动相中的水性成份,而不是混合物来调节。

使用缓冲液时,在色谱分析结束后,用移动相(5 

%,V/V)中的水和有机改性剂的混合物适当冲洗色谱系统,防止盐类结晶。

移动相也可以含有其他成份,如进行离子对色谱分析时用反离子;

用非手性固定相进行色谱分析时用手性选择器等。

检测器

紫外/可见(UV/Vis)分光光度计,包括二级管阵列检测器,是最为常用的检测器。

也可用荧光分光光度计、差示折光计、电化检测器、质谱仪、光散射检测器、放射性检测器或其他特殊检测器。

方法

在室温或专论中规定的温度下,用规定的移动相和流速平衡色谱柱,直到出现稳定的基线。

配制所需的待检品溶液和参照溶液。

配制的溶液中不得有固体颗粒。

衡量系统稳定性的标准在《色谱分离技术》(2。

46)一章中有描述。

调整色谱系统的参数以满足系统适应性标准,其调整幅度也在同一章节中进行了描述。

窗体底部

46。

色谱分离技术(EP4)

色谱分离技术为多级分离方法,供试品的组份分布在2个相之间,一个是固定相,另一个是移动相。

固定相可以是固体或以固体或凝胶为载体的液体。

固定相可装载于色谱柱中,摊开作为一个层,或以膜等形式分布。

移动相可以是气体、液体或超临界流体。

可以在吸附、质量分布(分隔)、离子交换等基础上进行分离,或根据分子的理化特性(如大小、质量、体积等等)的不同进行分离。

本章描述了系统适应性中普通参数的定义、计算以及普遍要求,其分离原则、仪器和方法在下列通用方法中有具体描述:

纸色谱法(2。

26)

薄层色谱法(2。

27)

气相色谱法(2。

28)

液相色谱法(2。

29)

尺寸排阻色谱法(2。

30)

超临界流体色谱仪(2。

45)

定义

下述定义常被用来计算专论中的限量。

具备某些设备之后,某些参数如信噪比,即可用生产厂家提供的软件进行计算。

用户有责任确保软件中所使用的计算方法符合欧洲药典的要求。

否则,必须做适当修改。

色谱图

色谱图是监测器反应、用于测量流出物浓度或其他数量相对于时间、体积或距离的一种图形或其他表示。

理想化的图谱是由基线上连续的高斯峰来表示的。

保留数据

保留时间及保留体积

洗脱色谱法的保留测量可由直接由色谱图中最大峰的位置的保留时间(tR)来表示。

从保留时间中可计算出保留体积(VR)。

tR

从注样点到与该组份相应的最大峰落下的垂直线之间的、沿基线的保留时间或距离。

v

移动相的流速。

质量分布率

质量分布率(Dm)(也叫容量因子k’或保留因子k)定义如下:

KC

平衡分布系统(也叫分布常数),

VS

固定相的体积,

VM

移动相的体积。

用下式确定色谱图中某个成份的质量分布率:

从注样点到与该组份相应的最大峰落下的垂直线之间、沿基线的保留时间(或体积)或距离,

tM

滞留时间(或体积):

从注样点到与未保留组份相应的、峰最高处落下的垂直线之间、沿基线的时间(或体积)或距离。

分布系数

一种组份在尺寸排阻色谱分析法的色谱柱中的洗脱特征可由分布系数(Ko)来确定:

to

tt

从注样点到与能完全通过固定相的组份的最大峰落下的垂直线之间、沿基线的保留时间(或体积)或距离。

阻滞因素

推迟因子(RF)(也叫保留因子Rf),用于平面色谱法中,是从应用点与到斑点中心的距离与溶剂前沿飘离应用点的距离之比。

b

被测物的飘移距离,

a

溶剂前沿的飘移距离。

色谱数据

峰可用峰面积(A)或峰高(h)和半高峰宽(wh)或峰高(h)和屈曲点之间的峰宽(wi)来定义。

在高斯峰中(图2。

-1),其关系如下:

图2。

-1。

对称因子

一个峰的对称因子(As)(或拖尾因子)(图2。

-2)是从下式中计算的:

w0。

05

在峰高二十分之一处的峰宽,

d

从峰最高处落下的垂直线与在二十分之一峰高处峰前沿之间的距离。

值为1。

0时表示完全(理想的)对称。

Figure2。

-2。

柱子的性能及视在理论板数

柱子性能(视在效率)根据所用的技术,可根据等温线、等度(或等密度线)条件得出的数据进行计算。

从下式中得出的理论板数(N),其中,tR和wh值必须用同样的单位(时间、体积或距离)表示。

wh

半高峰宽。

理论板数随组份、柱子和保留时间的不同而有所不同。

分离数据

分离度

同样高度的两个组份峰之间的分离度(Rs)可用下面的公式计算:

tR1和tR2

从注样点到两个相邻峰最高处落下的垂直线之间沿基线的保留时间或距离,

wh1和wh2

半高时的峰宽。

分离度大于1.5时符合基线分离。

当各峰之间的高度完全不同时,上述给出的公式可能不适用。

在定量平面色谱分析法中,用迁移距离来代替了保留时间,其分离度可以用下列表达式进行计算:

RF1和RF2

从应用点到斑点中心的距离与溶剂前沿飘离应用点的距离之比(阻滞因子),

半高时的峰宽,

A

溶剂前沿的迁移距离。

峰谷比

在相关物质的检验中,当杂质未从被分析物中完全分离出来时,峰谷比(p/v)可作为一种系统适用性要求。

(图2.2.46.–3)。

Hp

由于杂质影响,峰在推定基线以上的高度,

Hv

由于杂质和被分析物的影响,在推定基线以上分离峰的曲线最低处的高度。

Figure2.2.46.-3.

相对保留

相对保留(R)是从下列表达式的估算中得出的:

tR2

感兴趣的峰的保留时间,

tR1

对比峰(通常指与供试品相对应的峰)的保留时间,

滞留时间(或体积):

从注样点到与未保留组份相应的、峰最高处落下的垂直线之间、沿基线的时间或距离。

在平面色谱分析法中,用滞留因子RF2和RF1代替了tR2和tR1。

定量精确度

信噪比

信噪比(S/N)影响到定量分析的精确度,是用下列公式计算的:

H

在色谱图中,用规定的标准溶液、在相当于20倍半高宽的距离中观察到的、从峰的最高处至信号的推定基线之间、对应于被测组份的峰高度(图2.2.46.-4),

h

色谱图中注样后或使

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