免疫组化技术总结较好Word格式文档下载.docx

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4、免疫组化实验一定要设置阳性对照和阴性对照。

阳性对照一般是用肯定表达这种抗原的切片来做；

阴性对照一般是用PBS或非一抗替代一抗来进行反应，其余步骤均一致。

前者是排除方法和实验系统有无问题；

后者是排除有无一抗外的非特异性染色。

5、免疫组化的应用广泛，是当前实验研究的最重要方法之一。

如今发SCI论文时，明显感觉仅靠量化的数据来发文章很难，加一些形态学数据或图片，老外十分欢迎，可能是怕你学术造假吧。

当然也不能做假阳性或假阴性结果。

6、免疫组化技术掌握与否的鉴定标准是同一切片或不同切片中不同抗原均从摸索浓度或条件而做出优良的染色切片。

我在平时带教中就发现许多研究生把我已经摸索很成熟的反应条件、浓度、方法步骤，重复运用于同一性质的切片和同一种抗体，做出来后就觉得自己已经掌握了免疫组化方法，更换一种抗体后，居然连二抗的种属来源都拿错了。

失败往往促进你去思考试验原理和过程，成功有时也加快你自傲。

7、实验方法需要动手+动脑。

如今我还不敢说我在免疫组化什么都知道。

我只所以今天敢在这里说这说那，这是因为我经过了反复的动手+动脑，把理论原理运用于实践，在把实践中发现的问题带到理论知识中去解决，最终把理论与实践融会贯通。

一、概念和常用方法介绍

1、定义

用标记的特异性抗体对组织切片或细胞标本中某些化学成分的分布和含量进行组织和细胞原位定性、定位或定量研究，这种技术称为免疫组织化学（immunohistochemistry）技术或免疫细胞化学（immunocytochemistry）技术。

2、原理

根据抗原抗体反应和化学显色原理，组织切片或细胞标本中的抗原先和一抗结合，再利用一抗与标记生物素、荧光素等的二抗进行反应，前者再用标记辣根过氧化物酶（HRP）或碱性磷酸酶（AKP）等的抗生物素（如链霉亲和素等）结合，最后通过呈色反应或荧光来显示细胞或组织中化学成分，在光学显微镜或荧光显微镜下可清晰看见细胞内发生的抗原抗体反应产物，从而能够在细胞爬片或组织切片上原位确定某些化学成分的分布和含量。

3、分类

1）按标记物质的种类，如荧光染料、放射性同位素、酶（主要有辣根过氧化物酶和碱性磷酸酶）、铁蛋白、胶体金等，可分为免疫荧光法、放射免疫法、免疫酶标法和免疫金银法等。

2）按染色步骤可分为直接法（又称一步法）和间接法（二步、三步或多步法）。

与直接法相比，间接法的灵敏度提高了许多。

3）按结合方式可分为抗原-抗体结合，如过氧化物酶-抗过氧化物酶（PAP）；

亲和连结如卵白素-生物素

-过氧化物酶复合物（ABC）法、链霉菌抗生物素蛋白-过氧化物酶连结（SP）法等，其中SP

法是比较常用的方法；

聚合物链接，如即用型二步法，此方法尤其适合于内源性生物素含量高的组织抗原检测。

4、目前几种常用免疫组化方法简单介绍 

1）免疫荧光方法

是最早建立的免疫组织化学技术。

它利用抗原抗体特异性结合的原理，先将已知抗体标上荧光素，以此作为探针检查细胞或组织内的相应抗原，在荧光显微镜下观察。

当抗原抗体复合物中的荧光素受激发光的照射后即会发出一定波长的荧光，从而可确定组织中某种抗原的定位，进而还可进行定量分析。

由于免疫荧光技术特异性强、灵敏度高、快速简便，所以在临床病理诊断、检验中应用较广。

2）免疫酶标方法

免疫酶标方法是继免疫荧光后，于60年代发展起来的技术。

基本原理是先以酶标记的抗体与组

织或细胞作用，然后加入酶的底物，生成有色的不溶性产物或具有一定电子密度的颗粒，

通过光镜或电镜，对细胞表面和细胞内的各种抗原成分进行定位研究。

免疫酶标技术是目前最常用的技术。

本方法与免疫荧光技术相比的主要优点是：

定位准确，对比度好，染色标本可长期保存，适合于光、电镜研究等。

免疫酶标方法的发展非常迅速，已经衍生出了多种标记方法，且随着方法的不断改进和创新，其特异性和灵敏度都在不断提高，使用也越来越方便。

目前在病理诊断中广为使用的有ABC法、SP三步法、即用型二步法检测系统等。

3）免疫胶体金技术 

免疫胶体金技术是以胶体金这样一种特殊的金属颗粒作为标记物。

胶体金是指金的水溶胶，

它能迅速而稳定地吸附蛋白，对蛋白的生物学活性则没有明显的影响。

因此，用胶体金标记一抗、二抗或其他能特异性结合免疫球蛋白的分子（如葡萄球菌A蛋白）等作为探针，就能对组织或细胞内的抗原进行定性、定位，甚至定量研究。

由于胶体金有不同大小的颗粒，且胶体金的电子密度高，所以免疫胶体金技术特别适合于免疫电镜的单标记或多标记定位研究。

由于胶体金本身呈淡至深红色，因此也适合进行光镜观察。

如应用银加强的免疫金银法则更便于光镜观察。

5、被检测的物质

组织或细胞中凡是能作为抗原或半抗原，如蛋白质、多肽、氨基酸、多糖、磷脂、受体、酶、激素、核酸及病原体等都可用相应的特异性抗体进行检测。

6、特点

1）特异性强。

免疫学的基本原理决定抗原与抗体之间的结合具有高度特异性，因此，免疫组化从理论上讲也是组织细胞中抗原的特定显示，如角蛋白（keratin）显示上皮成分，LCA显示淋巴

细胞成分。

只有当组织细胞中存在交叉抗原时，才会出现交叉反应。

2）敏感性高。

在应用免疫组化的起始阶段，由于技术上的限制，只有直接法、间接法等敏感性不高的技术，那时的抗体只能稀释几倍、几十倍；

现在由于ABC法或SP三步法的出现，使抗体稀释上千倍、上万倍甚至上亿倍仍可在组织细胞中与抗原结合，这样高敏感性的抗体抗原反应，

使免疫组化方法越来越方便地应用于常规病理诊断工作。

3）定位准确、形态与功能相结合。

该技术通过抗原抗体反应及呈色反应，可在组织和细胞中进行抗原的准确定位，因而可同时对不同抗原在同一组织或细胞中进行定位观察，这样就可以进行形态与功能相结合的研究，对病理学领域开展深入研究是十分有意义的。

7、从蛋白水平检测角度，免疫组化技术与Western 

blotting、ELISA的异同

1）Western 

blotting：

蛋白质免疫印迹，也是利用抗体抗原反应原理，结合化学发光等技术来检查组织或细胞样品内蛋白含量的检测方法。

与免疫组化技术相比，定量可能更加准确；

当然Western 

blotting也可定性和定位（通过提取膜蛋白或核蛋白、胞浆蛋白分别检测其中抗原含量，进而间接反映它们的定位），但敏感性远远低于免疫组化技术。

2）ELISA：

酶联免疫吸附试验，也是利用抗体-抗原-抗原结合反应原理来检查体液或组织匀浆中蛋白含量的检测。

与免疫组化技术相比，定量最准确，是分泌性蛋白检测首选方法之一。

二、实验流程简介

一、SP三步法

1）石蜡切片，常规脱蜡至水。

2）0.3%或3%H2O2去离子水（无色液体）孵育10-30分钟，以灭活内源性过氧化物酶活性。

3）蒸馏水冲洗，PBS浸泡5分钟 

4）候选步骤：

采用抗原修复：

微波（建议30分钟内4次中火）、高压、酶修复方法。

自然冷却，再用3分钟×

3次. 

5）血清封闭：

室温15-30分钟，尽可能与二抗来源一致。

倾去，勿洗。

6）滴加适当比例稀释的一抗，37℃孵育2~3小时或4℃过夜（最好复温）。

PBS冲洗，3

分钟×

5次。

7）滴加生物素标记的二抗，室温或37℃孵育30分钟-1h。

8）PBS冲洗，3分钟×

9）滴加SP（链霉亲和素-过氧化物酶），室温或37℃孵育30分钟-1h。

10）PBS冲洗，3分钟×

11）显色剂显色（DAB等）。

12）自来水充分冲洗。

13）可进行复染，脱水，透明。

14）选择适当的封片剂封片。

二、即用型二步法

1）脱蜡、水化组织切片。

2）根据所应用的一抗的特殊要求，对组织切片进行预处理。

3）0.3%或3%H2O2去离子水孵育5分钟-30分钟，以阻断内源性过氧化物酶，PBS或TBS冲洗。

4）滴加一抗，室温或37℃孵育30~60分钟，或4℃过夜，PBS或TBS浸洗3分钟×

5）滴加enhangcer增强剂，37度30min，PBS或TBS浸洗3分钟×

6）滴加通用型IgG抗体-Fab段-HRP多聚体，室温/37℃孵育30分钟-1h，PBS/TBS冲洗，3分钟×

7）应用DAB溶液显色。

8）蒸馏水冲洗、复染、脱水、透明、封片。

三、免疫荧光技术（略）

四：

关键环节剖析

1、酶免疫组化的关键环节

1）标本固定：

固定的目的是①防止标本从玻片上脱落；

②除去防碍抗原-抗体结合的类脂，使抗原抗体结合物易于获得良好的染色结果；

③固定的标本易于保存。

固定剂的选择一般用4%多聚甲醛，但睾丸组织、眼可能要选用Bouin’s液或mDF液效果较好。

2）脱水、石蜡包埋和制片：

脱水用梯度乙醇（由低到高）充分脱水、对组织要完全浸蜡、切片时刀片要干净和锋利。

否则，容易裂片和脱片等。

3）脱蜡和水化：

这是为了后面的抗体等试剂能够充分与组织中抗原等结合反应。

脱蜡可以先60度20min，然后立即二甲苯1-3分别10min（这个时间是由二甲苯新鲜程度和室温等综合决定的），但当天制好的切片一般先60度3-4h。

水化用梯度乙醇（由高到低）。

若脱蜡和水化不全易出现局灶性反应和浸洗不全，而产生非特异性背景着色。

4）抗原修复：

由于组织中部分抗原在甲醛或多聚甲醛固定过程中，发生了蛋白之间交联及醛基的封闭作用，从而失去抗原性；

通过抗原修复，使得细胞内抗原决定族重新暴露，提高抗原检测率。

常用的修复方法从强到弱一般分为三种，高压修复、微波修复、胰酶修复。

修复液也分为若干种（具体的可以查阅相关资料，大量的：

中性的、高pH的等）。

我们实验室一般用微波修复中火6min*4次，效果不错。

注意微波修复后自然冷却30min左右（只要你觉得修复液的温度达室温即可）。

5）细胞通透：

目的是使抗体能够充分地进入胞内进行结合反应。

一般用TritonX-100、蛋白酶k等通透液。

如TritonX-100可以溶解细胞膜、细胞核膜、细胞器膜上的脂质而使抗体及大分子结构的物质进入胞浆和胞核内，故在细胞免疫组化时尤为推荐使用，这样抗体就能顺利进入胞内与相应抗原结合。

在免疫组织化学（>

10um厚切片）和免疫细胞化学中一般用TritonX-100作为细胞通透剂，在膜上打孔。

同时也是一种去污剂，一般在PBS中加入后终浓度是0.05%即可，而前者终浓度是0.5%-1%。

石蜡切片4um左右可以不通透，因为细胞已经被切开了。

6）灭活内源性过氧化物酶和生物素：

在传统的ABC法和SP法中，免疫组化反应结果容易收到内源性过氧化物酶和生物素的干扰