过氧化氢酶活力的测定实验报告docWord格式.docx

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过氧化氢酶活力的测定实验报告docWord格式.docx

3.酸式滴定管;

4.恒温水浴;

5.容量瓶。

  (三)试剂:

1.10%H2SO4;

2.0.2mol/LpH7.8磷酸缓冲液;

3.0.1mol/L高锰酸钾标准液称:

取KMnO4(AR)3.1605g,用新煮沸冷却蒸馏水配制成1000ml,再用0.1mol/L草酸溶液标定;

4.0.1mol/LH2O2市售30%H2O2大约等于17.6mol/L,取30%H2O2溶液5.68ml,稀释至1000ml,用标准0.1mol/LKMnO4溶液(在酸性条件下)进行标定;

5.0.1mol/L草酸:

称取优级纯H2C2O4.2H2O12.607g,用蒸馏水溶解后,定容至1000ml。

  三、实验步骤

  

(一)酶液提取:

取小麦叶片2.5g加入pH7.8的磷酸缓冲溶液少量,研磨成匀浆,转移至25ml容量瓶中,用该缓冲液冲洗研钵,并将冲洗液转至容量瓶中,用同一缓冲液定容,4000rpm离心15min,上清液即为过氧化氢酶的粗提液。

  

(二)取50ml三角瓶4个(两个测定,另两个为对照),测定瓶加入酶液2.5ml,对照加煮死酶液2.5ml,再加入2.5ml0.1mol/LH2O2,同时计时,于30℃恒温水浴中保温10min,当即加入10%H2SO42.5ml。

  用0.1mol/LKMnO4标准溶液滴定,至显现粉红色(在30min内不消失)为终点。

  四、结果计算

  酶活性用每g鲜重样品1min内分解H2O2的mg数表示:

  过氧化氢酶活性(H2O2mg/g/min)=(A-B)×

VT/(W×

VS×

1.7×

t)

  式中:

A对照KMnO4滴定ml数;

B酶反映后KMnO4滴定ml数;

VT提取酶液总量(ml);

  VS反映时所用酶液量(ml);

W样品鲜重(g);

t反映时刻(min);

  1.71ml0.1mol/LKMnO4相当于1.7mgH2O2。

  过氧化氢酶的活性测定

  在植物体中,黄素氧化酶类的代谢产物常包括H2O2,如光呼吸中的乙醇酸氧化酶、呼吸

  作用中的葡萄糖氧化酶、氨基酸氧化酶、醛氧化酶等。

H2O2的积存可致使破坏性的氧化作用,

  而过氧化物酶和过氧化氢酶那么能够清除H2O2,

是植物体内重要的活性氧清除系统之一。

其活

  性还与植物的抗逆性有紧密关系,本实验利用高锰酸钾滴定法测定过氧化氢酶活性。

  一、原理:

过氧化氢酶属于血红蛋白酶,含有铁,它能催化过氧化氢分解为水和分子氧,

  在此进程中起传递电子的作用,H2O2那么既是氧化剂,又是还原剂。

  R(Fe+2)+H2O2=====R(Fe+3OH-)2

  R(Fe+3OH-)2+H2O2===R(Fe+2)2+2H2O+O2

  归并上式:

2H2O2====2H2O+O2

  据此,可依照H2O2的消耗量或O2的生成量测定该酶活力大小。

  在反映系统中加入必然量(反映过量)的过氧化氢溶液,经酶促反映后,用标准高锰酸

  钾溶液(在酸性条件下)滴定多余的过氧化氢。

  5H2O2+2KMnO4+4H2SO4→5O2+2KHSO4+8H2O+2MnSO4

  即可求出消耗的H2O2量。

  二、仪器和用具:

研钵、三角瓶50cm3×

4、铁架、酸式滴定管、恒温水浴、容量瓶

  三、试剂:

  10%H2SO4;

0.2mol/l磷酸缓冲液pH7.8;

  0.1mol/l高锰酸钾标准液:

3.1605gKMnO4(AR)用新煮沸的蒸馏水配制成1000ml,用

  0.1mol/l的草酸溶液标定;

  0.1mol/lH2O2:

市售30%H2O2大约等于17.6mol/l,

取30%H2O2溶液5.68ml稀释至

  1000ml,用标准0.1mol/lKMnO4溶液(在酸性条件下)进行标定。

  四、方式:

  1.酶液提取:

取小麦叶片2.5g加入pH7.8的磷酸缓冲液少量,研磨成匀浆,转移至25ml

  容量瓶中,将研钵冲洗干净,冲洗液转移至容量瓶中,并用同一缓冲液定容,4000rpm离心,

  上清液即为过氧化氢酶粗提液。

  2.取50ml三角瓶4个(两个测定两个对照),测定加入酶液2.5ml,对照为煮死酶液

  2.5ml;

再加入2.5ml0.1mol/lH2O2,同时计时刻,于30℃恒温水浴中保温10分钟,当即加

  入10%H2SO42.5ml。

  3.用0.1mol/lKMnO4标准溶液滴定H2O2,至显现粉红色(在30分钟内不消失)为终点。

  4.结果计算:

  酶活性用每克鲜重样品在10分钟内分解H2O2的毫克数表示:

  (A-B)*Vt/V1*1.7

  酶活(酶分解的H2O2mg/g鲜重)=-------------------

  W

A-----对照用KMnO4ml数B-----酶反映后KMnO4滴定ml数

  Vt----酶液总量mlV1----反映所用酶液量mlW-----样品鲜重(g)

  1.7----1ml0.1mol/lKMnO4相当于1.7mgH2O2

  [注意].所用KMnO4溶液及H2O2溶液利用前要通过标定,0.1mol/lH2O2要新配制。

  实验48过氧化物酶活性的测定(比色法)

  过氧化物酶是植物体内普遍存在的、活性较高的一种酶,它与呼吸作用、光合作用及生长素的氧化等都有密

  切关系,在植物生长发育进程中,它的活性不断发生转变,因此测量这种酶,能够反映某一时期植物体内代

  谢的转变。

  一、原理

  在有过氧化氢存在下,过氧化物酶能使愈创木酚氧化,生成茶褐色物质,该物质在470nm处有最大吸收,

  可用分光光度计测量470nm的吸光度转变测定过氧化物酶活性。

  二、实验材料、试剂与仪器设备

  

(一)实验材料

  马铃薯块茎。

  

(二)试剂

  1.100mmol/L磷酸缓冲液pH6.0(见附录)。

  2.反映混合液:

100mmol/L磷酸缓冲液(pH6.0)50mL于烧杯中,加入愈创木酚28μl,于

  磁力搅拌器上加热搅拌,直至愈创木酚溶解,待溶液冷却后,加入30%过氧化氢19μl,混合均匀,保

  存于冰箱中。

  (三)仪器设备

  分光光度计,研钵,恒温水浴锅,100mL容量瓶,吸管,

离心机。

  1.称取植物材料1g,剪碎,放入研钵中,加适量的磷酸缓冲液研磨成匀浆,以4000r/min离心15

  min,上清液转入100mL容量瓶中,残渣再用5mL磷酸缓冲液提取一次,上清液并入容量瓶中,定容至

  刻度,贮于低温下备用。

  2.取光径1cm比色杯2只,于1只中加入反映混合液3mL和磷酸缓冲液1mL,作为对照,另1只

  中加入反映混合液3mL和上述酶液1mL(如酶活性太高可稀释之),当即开启秒表记录时刻,于分光光

  度计上测量波长470nm下吸光度值,每隔1min读数一次。

  以每分钟吸光度转变值表示酶活性大小,即以ΔA470/[min·

g(鲜重)]表示之。

也能够用每min内

  A470转变0.01为1个过氧化物酶活性单位(u)表示。

  过氧化物酶活性[u/(g·

min)]=

ΔA470——反映时刻内吸光度的转变。

W——植物鲜重,g。

  VT——提取酶液整体积,mL。

  Vs——测按时取用酶液体积,mL。

  t——反映时刻,min。

  蒲圻贝母FritillariapuqiensisG.D.Yuet

G.Y.Chen是贝母属中一新种,其有效成份生物碱含量较高,止咳成效显著[1,2]。

其中的蒲贝酮碱的成效与可待因相似,且无成瘾性,已被国家新药办立项进行一类新药开发。

但由于蒲圻贝母以野生为主,连年的采挖已使其资源慢慢枯竭,难以为新药开发提供资源保证,为此咱们对其进行了组织培育。

蒲圻贝母鳞茎切块培育22d左右,可直接从切片边缘长出多个小鳞茎,以后小鳞茎慢慢长大。

为了探讨鳞茎发生的机理,并为研究提高组培贝母鳞茎的生长率,诱发多鳞茎形成的方式,咱们在培育的不同时期取材,对鳞茎形成进程中的可溶性蛋白,过氧化物酶及酯酶同工酶的酶谱转变进行了分析。

  1材料和方式

  1.1材料

  蒲圻贝母F.puqiensis取自湖北省蒲圻市,经中国药科大学生药教研室李萍博士鉴定。

  新鲜的蒲圻贝母鳞茎在流水下冲洗3h,0.1%氯化汞表面消毒20min,无菌水冲洗5次,切成0.5cm×

0.5cm×

0.2cm的小块接种于MS附加BA2mg/L-1,IAA1mg/L-1的培育基上,在25℃黑暗条件下培育,取得无菌材料。

别离在培育的不同时刻取材,并以未进行培育的新鲜贝母鳞茎为对照,进行可溶性蛋白,过氧化物酶及酯酶同工酶酶谱分析。

  1.2方式

  1.2.1试剂的配制与凝胶的制备:

参考文献[3]的方式。

分离胶浓度为7.5%,距离胶浓度为2.5%。

  1.2.2样品制备:

称取新鲜的贝母鳞茎1g,在低温冰箱内放置1h后,加少量石英砂,加3ml提取缓冲液(0.1mol/LpH8.0的Tris-HCl缓冲液,其中含0.5mol/L蔗糖,0.06mol/L抗坏血酸,0.006mol/L半胱氨酸),在低温下研磨后离心20min,5000r/min,取上清液置-20℃下保留。

  1.2.3

电泳:

采纳垂直板式聚丙烯酰胺凝胶电泳,加入溴酚蓝作为指示染料。

稳固电流强度为12~24mA。

可溶性蛋白的点样量为50μl,用含0.05%考马斯亮蓝的12.5%三氯乙酸溶液染色4h。

过氧化物同工酶的点样量为30μl,用抗坏血酸-联苯胺染液染色,其组成为抗坏血酸70.4mg,联苯胺贮存液20ml(2g联苯胺溶于18ml文火加热的冰醋酸中,再加水72ml),0.6%过氧化氢20ml,水60ml。

酯酶同工酶的点样量为50μl,按薛应龙[4]方式,即凝胶在0.2mol/L,Tris-HCl缓冲液(pH7.1)预浸10min,然后移入含有7%醋酸-α-萘酯的丙酮溶液0.5ml,坚牢蓝12.5mg,0.2mol/LTris-HCl缓冲液(pH7.1)1ml,水23.4ml的染色液中染色10~30min,棕红色的同工酶谱带即呈现。

  2结果与分析

  按谱带颜色的深浅程度将其划分为重带、次重带、轻带,并按迁移率的大小划分为3个区,Rf在0.1~0.3为慢速区(A),在0.4~0.6为中速区(B),在0.7~0.9为快速区(C)。

篇二:

过氧化氢酶活性的测定

  华南农业大学实验报告

  专业班次11农学一班组别XX30010110

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