中检院送检细胞制剂检定项目SOP文档格式.docx

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中检院送检细胞制剂检定项目SOP文档格式.docx

细胞表面抗原分析

CD90

流式细胞术(FCM)

不低于95%

CD73

CD105

CD44

CD166

CD45

不得过2%

CD34

CD19

CD14

HLA-DR

【微生物学安全性检查】

无菌

需氧菌及真菌

全自动血培养仪监测

系统检测

阴性

厌氧菌及真菌

内毒素

凝胶法

支原体

培养法

逆转录病毒

PERT法检测逆转录酶活性

HIV-1

荧光PCR核酸检测

HBV

HCV

HCMV

EBV

HPV

人细小B19病毒

HHV6/7

PCR核酸检测

HTLV

猪细小病毒

猪细环病毒

猪圆环病毒

牛副流感病毒

牛腺病毒

牛细小病毒

牛腹泻病毒

牛呼肠孤病毒

【生物学活性检查】

诱导分化能力检测

成骨成脂诱导分化染色法

具有成骨成脂诱导分化潜能

成瘤性检测

软琼脂克隆生长试验

无克隆形成

细胞流式检测标准操作程序

1目的:

对细胞表面抗原进行流式鉴定,保证检测的准确性。

2范围:

细胞流式检测的全过程

3责任人:

技术部

4内容

4.1仪器和试剂

4.1.1仪器设备:

流式细胞仪(FACSCaliburTM)、台式离心机、1000µ

L微量移液枪、100µ

L微量移液枪、10µ

L微量移液枪。

4.1.2试剂以及耗材:

FITC单克隆抗体、APC单克隆抗体、PE单克隆抗体、PerCP单克隆抗体、相应的同型对照;

1XPBS;

鞘液专用流式管、枪头。

4.1.3样本准备

4.1.3.1将样本按条码号顺序排列好,每份样本按照检测抗体种类的需要取流式专用管若干支,分别标记好单阳管、阴性管、同型对照管和样本检测管。

4.1.3.2各取100µ

L样本加入标记好的流式管中,然后根据流式管标记的信息分别添加对应的抗体。

充分混匀,置4℃冰箱避光孵育30分钟。

4.1.3.5孵育结束以后加入1mlPBS,充分混匀,1200rpm离心5分钟。

4.1.3.7弃上清液,加入300µ

LPBS。

充分混匀,随后上机检测。

4.2仪器开机程序

4.2.1依次打开稳压电源,主电源,流式细胞仪电源,计算机。

4.2.2开启电脑,在出现的密码登录框中,输入BDIS,按Enter。

4.2.3打开鞘液筒抽屉,检查鞘液筒和废液筒存液情况,鞘液筒空则需要加液,废液筒满则取出倒除,检查管路是否有气泡,否则应排除,没有问题以后,打开鞘液压力开关。

4.2.4开机后,仪器预热5min,即可开始进行实验。

4.2.5实验之前,仪器清洗,专用流式管装满双蒸水,放置仪器吸液管下,设备“run+high”情况下,然后PRIME(排空气)模式运行两次。

4.2.6流式细胞仪上样前FAScomp质控分析

4.2.6.1标准微球的制备(标准微球“CalBRITEbeads”保存4度)

三色检测:

管1:

1滴Unlabeled+0.5ml鞘液(或者0.5ml蒸馏水)

管2:

1滴unlabeled+FITC,PE,Percp各一滴+1ml鞘液

四色检测:

1滴unlabed+1滴APC+0.5ml鞘液

1滴unlabed+FITC,PE,Percp,APC各一滴+1ml鞘液

4.2.6.2打开FAScomp软件,在“sighin”窗口下,输入信息,然后“accept”,进入“setup”窗口。

4.2.6.3“setup”窗口下,选择分选模式:

“Lyse/wash”(用于溶血素洗涤样本)(通常选择该模式),“Lyse/Nowash”(用于溶血处理后的免洗样),然后输入CaliBRITEBeads”批号(批号为6位编码,最后一位为大写字母),选择存储文件。

4.2.6.4然后点击“RUN”,进入PMT窗口,在该窗口下,用管1为样品,选择“RUN-/high”。

点击“start”自动调节光电倍增管的电压,屏幕出现闪烁“PMTSsetsuccessfully”,点击“NEXT”。

4.2.6.5在“COMP”窗口下,用“管2”为样品,选择“RUN/HIGH”,点击“START”,可执行自动调节荧光补偿:

FL1-%FL2,FL2-%FL1和FL3-%FL2,屏幕出现“COMPENSATIONSETSUCCESSFULLY”便可点击出“NEXT”。

4.2.6.6在“sens”窗口下,依然用管2为样,点击“start”可自动检测各参数灵敏度。

4.2.6.7在“summaryreport”下得到所有检测的结果。

4.2.6.8质控完成后,移去标准微球管并插上双蒸水流式管,在“summaryreport”状态下,点击“quit”键,或从“filemenu”中选择“quit”退出程序。

4.2.7打开cellquestpro软件,按”common+B”组合键,连接流式细胞仪。

4.2.8从“cytometer”菜单中选择“detectors”(或者键盘“common+1”)、“threshold”(或者“common+2”)、“compensation”(或者键盘“common+3”)、“status”(键“common+4”),将出现各自对应的窗口,将其拖至空白处。

4.2.9确定软件与细胞仪完成连接。

如果有必要,可点击Cytometer视窗,观察软件与细胞仪是否完成连接。

4.2.10完成连接后,在Cytometer视窗下方会显示CytometerConnected。

检视各项试剂液面是否正常。

在Cytometer视窗右下方会显示各项试剂液面高度。

视实验需要补充FACSFlow,倒除废液。

如果视窗下方显示CytometerDisconnected,可尝试重新启动Cellquestpro软件。

4.2.11接着可以开始规划实验挡、或设置仪器。

4.3上样检测

4.3.1在工具板中选择点图,在文件的空白区点击,然后拖动对角线至所需大小,出点图对话框,点击“plottype”,选择“acquisition->

analysis”;

X、Y轴默认为FSC、SSC,然后上阴性管,调节FSC、SSC电压,再设置目标细胞群“region”,该“region”在调节荧光探测器时使用,在工具板中选择多边形“region”,在FSC/SSC散点图上,设淋巴细胞“region”,该“Region”在调节荧光探测器时使用;

在工具板中选择多边形的“Region”,在FSC/SSC点图上,设目标细胞群“region”,在“region”外点击,将拖至空白区。

然后建立FL1/FL2、FL3/FL2、FL3/FL4点图,选择“G1=R1”,在工具板上选择象限标尺,三个点图上画象限,指定阴性/阳性区域,调节FL1、FL2、FL3、FL4电压,使细胞群调在各点图所在图的左下角,点击“Acquisitioncontrol”窗口中的“pause”,移去阴性对照管。

4.3.2依次上FITC、PE、Percp、APC单阳管,必要时,调节FL2-%FL1、FL1-%FL2、FL2-%FL3、FL3-%FL2、FL3-%FL4、FL4-%FL3的补偿,调节完成后,点击“acquisitioncontrol”窗口中的“pause、abort”,移去单阳管。

4.3.3插上同型对照管,删除FL1/FL2、FL3/FL2、FL3/FL4点图,建立FL1、FL2、FL3、FL4直方图,点击“acquisitioncontrol”窗口中的“pause、abort”,之后Setup之面方框‘√’去掉,然后点击‘Acquire’,收集10000个细胞,然后同型管图型外阳性区域画直方图Marker,设定Marker左右边界,移去同型对照管。

4.3.4插上样本检测管,点击“acquisitioncontrol”窗口中的“pause、abort”,之后Setup之面方框‘√’去掉,然后点击‘Acquire’,收集10000个细胞,结束以后,移去样本管,插上双蒸水管,将仪器处于“standby”状态。

4.3.5分析数据,选中一个图表,点击菜单中stats,选择“HistogramStats”,出现该选中图的数据分析结果,选择Stats菜单下的“EditHistogramStats”,出现对话框,去掉一些不需要的参数,点击OK。

4.3.6数据储存,首先在Cytometer视图菜单下选择InstrumentSetting保存数据条件,然后Files视图菜单下选择saveDocumentas保存数据模板,之后可使用相关软件进行数据分析。

4.4仪器关机程序

4.4.1换上双蒸水管。

4.4.2在High+Run条件下,运行3min,2次,然后PRIME+high进行排空气2次。

4.4.3点选File>

>

Quit退出软件。

关闭细胞仪,关闭电脑。

如有必要,请加入1/10体积

漂白水,再倒掉废液,避免生物性危险。

4.4.4填写运行记录。

5修订记录

序号

版本号

修订内容摘要

修订人/修订日期

支原体培养法检测标准操作程序

规范培养法检测支原体的标准操作程序

细胞产品中支原体的检测

4.1实验试剂耗材

4.1.1仪器:

生物安全柜,二氧化碳培养箱,电动移液器,移液枪

4.1.2耗材:

EP管,200µ

l枪头,5ml移液管,15ml离心管

4.1.3试剂:

支原体培养法检测试剂盒

4.2实验步骤

4.2.1用5ml移液管取细胞培养上清于15ml离心管中备用。

4.2.2取出试剂盒的测试板准备种样本,移液枪吸取100ul培养液加入A1-空白对照孔。

4.2.3将100ul细胞培养上清加到UU-MH培养瓶中,混匀。

4.2.4吸取100ulUU-MH培养瓶中的混合液体分别接种到样本检测的微孔中,所有微孔滴加1-2滴试剂盒中的矿物油。

4.2.5将测试板加盖后置培养箱中35-37℃培养24-48小时,观察结果:

接种标本的培养基培养后,澄清透明不变色为阴性,澄清透明并呈明显红色为阳性。

4.2.6若偶遇培养基变浅红色(即变色不明显),建议延长12~24h培养报结果(可能刚感染支原体,标本中支原体数量过少或受抗生素抑制作用而使变色不明显)。

5记录

5.1试剂盒的支原体鉴定报告单

6修订记录

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