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无菌技术的实训心得体会5篇
a;无菌技术是指在医疗、护理操作过程中,保持无菌物品、无菌区域不被污染,防止病原微生物侵入人体的一系列操作技术和管理方法,是预防感染的一项重要而基础的技术。
下面就是带来的无菌技术的实训心得体会，希望能帮助大家!
无菌技术的实训心得体会1
1.在开始实验前要制定好实验计划和操作程序。
有关数据的计算要事先做好。
根据实验要求，准备各种所需器材和物品、清点无误后将其放于操作场所内，然后开始消毒，以避免往返拿取造成污染机率增大。
超净工作台台面每次实验前用75%酒精擦拭，按照顶板→侧壁→器械→挡风玻璃→操作台面的顺序对超净台内部进行彻底的消毒。
然后开启超净台和无菌培养室的紫外灯照射30min，关闭紫外，启动风机运转15分钟后，方可开始实验操作。
在工作台面消毒时切勿将培养细胞和培养用液同时照射紫外线。
2.无菌操作工作区域应保持清洁及宽敞，必要物品，例如试管架、吸管吸取器或吸管盒等可以暂时放置，其它实验用品用完即应移出，以利于气流流通。
实验用品以75%酒精擦拭后放入无菌操作台内。
实验操作应在台面中央的无菌区域，勿在边缘之非无菌区域操作。
3.小心取用无菌实验物品，避免造成污染。
勿碰触吸管尖端或容器瓶口，思想汇报范文亦不要在开口容器的正上方操作。
容器打开后，以手夹住瓶盖并握住瓶身，倾斜约45°角取用。
4.操作人员应注意自身安全，须穿戴实验衣及手套后才进行实
验。
对于来自人类或是病毒感染之细胞株应特别小心操作，并选择适当等级的无菌操作台。
操作过程中，应避免引起气溶胶的产生，小心毒性药品，例如DMSO，并避免尖锐针头的伤害等。
5.每次操作只处理一株细胞株，且即使培养基相同也不共享培养基，以避免失误混淆或细胞间污染。
为拿取方便，工作台面上的用品要有合理的布局，原则上应是右手使用的东西放置在右侧，左手用品在左侧，酒精灯置于中央。
工作由始至终要保持一定顺序性，组织或细胞在未做处理之前，勿过早暴露在空气中。
同样，培养液在未用前，不要过早开瓶;用过之后如不再重复使用，应立即封闭瓶口。
6.实验完毕后，关闭超净台风机，以75%酒精擦拭操作台面及其他实验物品，将多余的物品拿出超净台，打开风机运转15min，关闭风机并打开紫外灯照射30min。
7.定期检测CO2钢瓶的CO2压力;CO2培养箱的CO2范文参考网浓度、温度、水盘是否有污染;定期更换紫外线灯管及HEPA过滤膜，预滤网。
预防是防止细胞培养过程中发生污染的最好办法。
只有预防工作做在前，才能将发生污染的可能性降到最小程度。
一般预防可从以下几方面着手：
1、添加抗生素
2、从物品、用品消毒灭菌着手细胞培养所用物品清洗、消毒要彻底，各种溶液灭菌除菌要仔细，并在无菌试验阴性后才能使用。
操作室及剩余的无菌器材要定期清洁消毒灭菌。
3、从操作者做起进无菌室前要用肥皂洗手，按规定穿隔离衣。
工作开始要先用75%酒精棉球擦手、擦瓶口和烧灼瓶口。
操作者动作要轻，必须在火焰周围无菌区内打开瓶口，并将瓶口转动烧灼。
操作时尽量不要谈话，若打喷嚏或咳嗽应转向背面。
操作时要常更换吸管，一旦发现吸管口接触了手和其他污染物品应弃去。
实验完毕用消毒水浸泡的纱布擦台面。
4、防止细胞交叉污染在进行多种细胞培养操作时，所用器具要严格区分。
范文写作吸取营养液、PBS、细胞悬液及其它各种用液时，均应分别使用吸管，不能混用，以防扩大污染或导致细胞交叉污染。
在进行换液或传代操作时，手或注射器、滴管等不能经过开口瓶口上方，不能触及瓶口，以免把细胞带到培养液中污染其他细胞。
加液时如吸管尖碰到瓶口，则应将吸管丢掉。
细胞一旦购置或从别处引入，均应及早留种冻存，一旦发生污染可重新复苏培养。
5、无菌室的彻底消毒
0.1%新洁尔灭全面彻底擦洗无菌室;甲醛熏蒸法：
甲醛是一种广谱灭菌剂菌，其水溶液和气休对各种细菌、芽孢及真菌等微生物均有杀灭作用。
容器破碎及感染性物质的溢出的处理：
1小玻璃瓶及其他容器等被传染性物质污染的破碎物品，以及培养物等溅洒的传染性物质，应当立即佩戴手套用布或纸巾覆盖。
2在上面倒上消毒剂，并使其作用适当时间。
3清理破碎物品及污染物，再用消毒剂擦拭污染区域。
4用于清理的布等应当放在盛放污染性废弃物的容器内。
5如果实验表格或其他材料被污染，在妥善转抄或拷贝后，应当将其弃入污染废弃物容器。
无菌技术的实训心得体会224种器械名称及用途
一、手术刀：
由刀片和刀柄组成用来切开组织和解剖组织，可根据手术部位和性质的不同而更换大小不同的刀片，据需要采用不同的执刀方式：
抓持式、执笔式、执弓式、反挑式。
二、手术剪：
分为组织剪和线剪组织剪用以分离，解剖和剪开组织;线剪用来剪断缝线，剪开敷料和引流管等。
三、血管钳主要用于钳夹血管或出血点，以达到止血的目的，也用于分离组织，牵引缝线，夹持和拔出缝针等。
组织钳：
用于牵拉阑尾等不易滑脱，不易损伤组织。
巾钳：
固定布巾用。
敷料钳：
夹持敷料
四、持针器用来夹持缝针缝合，也可用于拔针和打结。
五、手术钳分有齿和无齿两种，用于夹持、提起组织以便于剥离、剪开或缝合。
无齿镊用于夹持脆弱组织如血管、神经和黏膜等。
有齿镊用于夹持筋膜、肌腱等韧带组织。
六、拉钩分手持和自动两类。
手持的又分皮肤拉钩、甲状腺拉钩、阑尾拉钩、S形拉钩。
用于牵拉开手术表面的组织，充分暴露操作部位，以便进行手术。
甲状腺拉钩用于较浅部位牵拉暴露，主要用于甲状腺手术中。
阑尾拉钩用于较小的腹部切口如阑尾。
S形拉钩用于腹部深部手术。
自动拉钩用于盆腔、腹部手术，可自行固定牵开。
七、吸引器用于吸取胃肠道内容物，胸腹腔及脓肿内液体内液体等，血液。
八、缝针用于缝合各种组织几贯穿缝扎，分为圆针和三角针。
圆针用于缝合一般软组织如胃肠道，血管和筋膜等。
三角针让用于缝合皮肤及软骨等。
九、缝线分为不吸收和可吸收两类。
不吸收的如丝线，可吸收的如肠线。
用于缝合组织或结扎血管等，肠线仅用于不应留有异物的伤口。
1实习二打结法实习日期：
3月14日
一、各种打结法临床上结的种类：
方结、三重结、外科结、张力结，其中方结用得最多。
打结方法分单手打结法、双手打结法和持钳打结法。
1.方结：
结扎较牢固，为外科手术中最常使用的结扣，由两个旋转方向相反的单结重叠而成，适用于较少的组织和较小的血管以及各种缝合的结扎。
无菌技术的实训心得体会3
1.认识无菌术在外科手术中的重要性。
2.熟练掌握外科无菌操作的原则和方法。
4学时
1.吴在德主编外科学第六版
2.吴在德主编外科实习医师手册第三版
3.郭晓惠主编临床医师实践技能考试
1.无菌毛刷、肥皂或肥皂水，酒精或新洁尔灭的泡手桶，无菌小毛巾。
2.干手套，消毒手术衣，消毒液，消毒器械，各种手术铺巾、模型。
1.带教老师讲解和示范。
2.学生在老师的指导下进行操作练习。
第一部分手术人员术前准备
一、传统的肥皂水洗手法：
1.做好洗手的准备——手术人员换上手术室准备的清洁衣裤和鞋子。
剪短指甲，去除积垢。
手部、前臂有破损或感染时不能参加手术。
2.先用肥皂作一般洗手，再用无菌刷蘸肥皂水刷洗手和臂部，从指尖到肘上l0cm处，两臂分段交替刷洗。
3.同样的方法和顺序共进行三次洗刷，每洗一遍约需3分钟，三次共需约10分钟。
4.取无菌小毛巾擦干两手、前臂、肘关节和部分洗刷过的上臂，注意对摺毛巾的技巧和擦干顺序。
5.将双手，前臂和肘部浸泡在70%的酒精桶内5分钟或
1:
1000新洁尔灭，或
1:
2021洗必泰，浸泡范围应达肘上6cm处。
6.浸泡好的双手必须上举，不可下垂，保持双手上举，作拱手姿势。
二、新型灭菌剂的刷手法：
1.碘尔康刷手法的操作技巧：
2.灭菌王刷手法的操作技巧：
3.目前应用的消毒液品种很多，还有如活力碘、碘伏等，使用方法基本相同。
三、穿消毒手术衣
1.取出消毒手术衣，提住衣领二角并轻轻抛起，两手迅速插入袖管，两臂前伸，让巡回人员帮助穿上。
2.向前稍弯腰，使腰带悬空，两手交叉，提取腰带向后递，由巡迥护士在身后将腰带系紧。
无菌技术的实训心得体会4
1、保持无菌物品及无菌区域不被污染。
2、防止病原微生物侵入或传播给他人，防止交叉感染。
〔评估〕
1、操作项目、目的。
2、操作环境是否整洁、宽敞、安静。
3、无菌物品的存放是否合理，有无过期。
〔计划〕目标/评价标准：
⑴患者明确无菌操作重要性，愿意配合。
⑵无菌物品、无菌区域未被污染。
⑶无交叉感染。
用物准备：
⑴无菌持物钳：
常用无菌持物钳有三叉钳、卵圆钳和长、短镊子四件。
⑵无菌容器：
常用的有无菌盒、罐、盘、及储槽等。
⑶无菌包：
包内有无菌治疗巾、敷料、器械等。
⑷无菌溶液、启瓶器、弯盘。
⑸无菌橡胶手套。
⑹治疗盘、小手巾、小纸条、签字笔。
〔实施〕操作步骤：
1、无菌持物钳的使用：
用于取用和传递无菌物品。
⑴衣帽整齐、洗手、戴口罩，检查有效日期→将容器盖打开→使钳端闭合垂直取出，使用保持钳断向下→用后闭合钳端，垂直放回容器，浸泡时轴节松开，液体在轴节上2—3CM;并每周更换，使用频率较高，应每天更换一次。
⑵注意事项：
A不可在盖孔中取、放持物钳;B不可触及容器上缘及液面上的容器内壁，防止持物钳在空气中暴露过久;C禁忌夹取油纱布，以及用来换药或消毒皮肤。
2、无菌容器的使用：
用于盛放无菌物品。
⑴衣帽整齐、洗手、戴口罩，查灭菌日期→取物时，打开容器盖，平移离开容器，内面向上，置于稳妥处或拿在手中，用完后立即盖严→手持无菌容器时，应把住容器底部。
⑵注意事项：
A防止盖内面及边缘触及手及任何非无菌区域。
B避免容器内无菌物品在空气中暴露过久。
3、无菌包的使用：
⑴衣帽整齐、洗手戴口罩。
A、包扎法：
将物品放于包布中央，用包布一角盖住物品左右两角先后盖上，并将角尖向外翻折，盖上最后一角，以“十”字形包扎好，用化学指示胶带贴好。
B、开包法：
查包的名称、灭菌日期，将无菌包平放在宽敞平坦、清洁、干燥的操作台上，揭开系带，卷刚在包布下，按顺序打开无菌包，用无菌钳夹取所需物品，放在事先准备的无菌区内，如包内物品未用完，按原来的折痕包好，注明开包时间。
无菌技术的实训心得体会5无菌操作基本技术
1.在开始实验前要制定好实验计划和操作程序。
有关数据的计算要事先做好。
根据实验要求，准备各种所需器材和物品、清点无误后将其放于操作场所内，然后开始消毒，以避免往返拿取造成污染机率增大。
超净工作台台面每次实验前用75%酒精擦拭，按照顶板→侧壁→器械→挡风玻璃→操作台面的顺序对超净台内部进行彻底的消毒。
然后开启超净台和无菌培养室的紫外灯照射30min，关闭紫外，启动风机运转15分钟后，方可开始实验操作。
在工作台面消毒时切勿将培养细胞和培养用液同时照射紫外线。
2.无菌操作工作区域应保持清洁及宽敞，必要物品，例如试管架、吸管吸取器或吸管盒等可以暂时放置，其它实验用品用完即应移出，以利于气流流通。
实验用品以75%酒精擦拭后放入无菌操作台内。
实验操作应在台面中央的无菌区域，勿在边缘之非无菌区域操作。
3.小心取用无菌实验物品，避免造成污染。
勿碰触吸管尖端或容器瓶口，亦不要在开口容器的正上方操作。
容器打开后，以手夹住瓶盖并握住瓶身，倾斜约45°角取用。
4.操作人员应注意自身安全，须穿戴实验衣及手套后才进行实验。
对于来自人类或是病毒感染之细胞株应特别小心操作，并选择适当等级的无菌操作台。
操作过程中，应避免引起气溶胶的产生，小心毒性药品，例如DMSO，并避免尖锐针头的伤害等。
5.每次操作只处理一株细胞株，且即使培养基相同也不共享培养基，以避免失误混淆或细胞间污染。
为拿取方便，工作台面上的用品要有合理的布局，原则上应是右手使用的东西放置在右侧，左手用品在左侧，酒精灯置于中央。
工作由始至终要保持一定顺序性，组织或细胞在未做处理之前，勿过早暴露在空气中。
同样，培养液在未用前，不要过早开瓶;用过之后如不再重复使用，应立即封闭瓶口。
6.实验完毕后，关闭超净台风机，以75%酒精擦拭操作台面及其他实验物品，将多余的物品拿出超净台，打开风机运转15min，关闭风机并打开紫外灯照射30min。
7.定期检测CO2钢瓶的CO2压力;
CO2培养箱的CO2浓度、温度、水盘是否有污染;定期更换紫外线灯管及HEPA过滤膜，预滤网。
预防是防止细胞培养过程中发生污染的最好办法。
只有预防工作做在前，才能将发生污染的可能性降到最小程度。
一般预防可从以下几方面着手：
1、添加抗生素
2、从物品、用品消毒灭菌着手细胞培养所用物品清洗、消毒要彻底，各种溶液灭菌除菌要仔细，并在无菌试验阴性后才能使用。
操作室及剩余的无菌器材要定期清洁消毒灭菌。
3、从操作者做起进无菌室前要用肥皂洗手，按规定穿隔离衣。
工作开始要先用75%酒精棉球擦手、擦瓶口和烧灼瓶口。
操作者动作要轻，必须在火焰周围无菌区内打开瓶口，并将瓶口转动烧灼。
操作时尽量不要谈话，若打喷嚏或咳嗽应转向背面。
操作时要常更换吸管，一旦发现吸管口接触了手和其他污染物品应弃去。
实验完毕用消毒水浸泡的纱布擦台面。
4、防止细胞交叉污染在进行多种细胞培养操作时，所用器具要严格区分。
吸取营养液、PBS、细胞悬液及其它各种用液时，均应分别使用吸管，不能混用，以防扩大污染或导致细胞交叉污染。
在进行换液或传代操作时，手或注射器、滴管等不能经过开口瓶口上方，不能触及瓶口，以免把细胞带到培养液中污染其他细胞。
加液时如吸管尖碰到瓶口，则应将吸管丢掉。
细胞一旦购置或从别处引入，均应及早留种冻存，一旦发生污染可重新复苏培养。
5、无菌室的彻底消毒
0.1%新洁尔灭全面彻底擦洗无菌室;
甲醛熏蒸法：
甲醛是一种广谱灭菌剂菌，其水溶液和气休对各种细菌、芽孢及真菌等微生物均有杀灭作用。
容器破碎及感染性物质的溢出的处理：
1小玻璃瓶及其他容器等被传染性物质污染的破碎物品，以及培养物等溅洒的传染性物质，应当立即佩戴手套用布或纸巾覆盖。
2在上面倒上消毒剂，并使其作用适当时间。
3清理破碎物品及污染物，再用消毒剂擦拭污染区域。
4用于清理的布等应当放在盛放污染性废弃物的容器内。
5如果实验表格或其他材料被污染，在妥善转抄或拷贝后，应当将其弃入污染废弃物容器。
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