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植物组织培养实验

实验一植物组织培养实验室的构造和功能

一、目的要求:

掌握如何组建植物组织培养实验室,熟悉组培中设计的各种仪器设备和器皿用具。

二、仪器与用具

超净工作台、空调机、蒸馏水发生器、高压灭菌锅、低温冰箱、普通冰箱、电磁炉、各种电子天平、pH仪器等设备,以及各种试验器皿和器械用具等。

三、方法步骤

1.了解组织培养实验室守则以及有关注意事项。

2.掌握仪器设备和器皿用具的名称与用途以及实验室的构造。

3.参观组培实验室的构建情况,包括准备室(化学实验室)、缓冲室、无菌操作室(接种室)和培养室的设计要求,以及内部仪器设备的名称及其作用。

四.实验报告

1.将本次实验内容整理成实验报告

2.设计一个植物组织培养实验室的组建方案。

实验二MS培养基母液的配制与保存

一、目的要求

通过MS培养基母液的配制与保存,掌握配制与保存培养基母液的基本技能。

二、材料与用具

配制MS培养基所需的药品(见附表)。

植物生长调节物质、各类天平、烧杯、容量瓶、蒸馏水、0.1mol/L的NaOH、0.1mol/L的HCl、母液瓶、标签、冰箱等。

三、方法与步骤

1.母液的配制

(将MS母液配置表画在黑板上,举例讲解母液的配制过程,包括称量、溶解、定容三步,再将班级分为五个组进行配制)

2.植物生长调节物质母液的配制

①称量:

用微量0.001或0.0001的分析天平或由电子天平准确称取生长素(或细胞分裂素)50mg。

②溶解:

生长素(如IAA、IBA、NAA、2、4-D)可用少量的0.1mol/LNaOH溶解,细胞分裂素(如KT、ZT、6-BA)可用0.1mol/L的HCl加热溶解。

③定溶:

将溶解的植物生长调节物质倒入50ml容量瓶,用水冲洗小烧杯数次,最后加蒸馏水定容至50ml,配制成浓度为1mg/ml的溶液。

3.母液的保存

①装瓶:

将配好的母液分别倒入瓶中,贴好标签,注明培养基名称、母液号、配制倍数(或浓度)以及配制日期。

②储藏:

将母液瓶储放在4℃冰箱内备用。

四、实验报告

将本次实验内容整理成实验报告(叙述母液配置过程)。

 

附表MS培养基母液配制(单位:

mg)

母液

成分

规定量

扩大倍数

称取量

母液体积(ml)

配1L培养基

吸取量(ml)

编号

种类

1

KNO3

NH4NO3

MgSO4.7H2O

KH2PO4

1900

1650

370

170

10

10

10

10

19000

16500

3700

1700

1000

100

2

CaCl2

332

10

3320

1000

100

3

MnSO4.H2O

ZnSO4.7H2O

H3BO3

KI

NaMoO4.2H2O

CuSO4.5H2O

CoCl2.6H2O

16.9

8.6

6.2

0.83

0.25

0.025

0.025

100

100

100

100

100

100

100

845

430

310

41.5

12.5

1.25

1.25

500

10

4

Na2-EDTA

FeSO4.7H2O

37.3

34.5

100

100

1865

1725

500

10

5

甘氨酸

盐酸硫胺素(VB1)

盐酸吡哆醇(VB6)

烟酸

肌醇

2.0

0.1

0.5

0.5

100

100

100

100

100

100

100

5

25

25

5000

500

10

注意:

配制前核实各种化学成分的含水量

实验三固体培养基的配制

一、目的要求

通过MS固体培养基的配制,掌握配制培养基的基本技能。

二、材料与用具

MS培养基母液、植物生长调节剂、琼脂、蔗糖、蒸馏水、移液管、量筒、容量瓶、电磁炉、酸度计、0.1mol/LNaOH(HCl)、培养瓶、记号笔等。

三、方法与步骤

1.按母液顺序和规定量,用量筒和移液管提取母液,放入1000ml的容量瓶中,MS1-100ml、MS2-100ml、MS3-10ml、MS4-10ml、MS5-10ml。

2.加入植物生长调节剂,加入的种类与数量,视培养物不同而异,有时也可不加。

3.加入蔗糖若干,溶解定容至1000ml,再放入9g琼脂。

4.调整PH值,经酸度计测试,用0.1mol/LNaOH(HCl)把培养基PH值调整至5.8-6.0。

5.在电磁炉上加热溶液,并不断搅拌,使琼脂不断熔化。

6.分装培养基,把配好的培养基分装到50-150ml的培养瓶中,分装后立即加盖封口,用记号笔注明培养基名称。

四、实验内容

配制火鹤培养基:

MS+NAA0.2mg/mL+蔗糖30g+琼脂9g,PH5.8-6.0。

五、实验报告

根据实验内容总结出固体培养基配制的具体过程。

实验四培养基和培养用具的灭菌

一、目的要求

通过对培养基和培养用具的灭菌,掌握高压灭菌和干热灭菌的一般操作技术。

二、材料与用具

培养皿、三角瓶、注有培养基的培养瓶、装有蒸馏水的玻璃瓶、牛皮纸、镊子、剪刀等金属器械、高压灭菌器、烘箱等。

三、方法与步骤

1.高压灭菌锅:

①洗涤

②包扎

③装水(需淹没电热丝)

④灭菌:

把需灭菌的物品放入高压灭菌锅内,当压力达120kpa,锅内的温度为121℃时,保持30min。

关掉开关,打开放气阀,让灭菌锅自然冷却。

⑤储藏:

待灭菌锅内的气体放尽,把物品从灭菌器中取出,培养基要放置在温度低于30℃,没有强光照射的专用柜中备用。

2.干热灭菌

①洗涤

②灭菌:

把洗涤干净的玻璃器皿放到烘箱中,在150℃温度下,干热灭菌1h或120℃温度下2h灭菌完毕,待冷却后取出。

四、实验报告

高压灭菌前后应注意哪些事项?

实验五无菌操作技术

一、目的要求

通过在超净工作台上进行无菌操作训练,初步掌握组织培养的无菌操作技术。

二、材料与用具

超净工作台、70%的酒精、95%的酒精、盛有培养基的培养瓶、接种器械(解剖刀、剪刀、镊子等)、酒精等、培养材料(根、茎、叶或种子等)、0.1%的升汞或“84”灭菌液、无菌水等。

三、方法步骤

1.用水和肥皂洗净双手,穿上灭菌过的专用实验服、帽子与鞋子,进入接种室。

2.打开超净工作台和无菌操作室的紫外灯,照射20min。

3.操作前10min使超净工作台处于工作状态,让过滤室空气吹拂工作台面和四周的台壁。

4.照射20min后,关闭紫外灯。

5.用70%的酒精擦拭工作台和双手。

6.用蘸有70%酒精的纱布擦拭装有培养基的培养器皿,放入工作台。

7.用解剖刀、剪刀、镊子等器械浸泡在95%酒精中,在火焰上灭菌后,放在器械架上。

8.把培养材料放进70%的酒精中浸泡30s,再用0.1%的升汞(氯化汞,HgCl2)中浸泡10min,或在“84”灭菌液(经无菌水1:

1的稀释)中浸泡10-15min,浸泡时可进行搅动,使植物材料与灭菌剂有良好的接触,然后用无菌水冲洗4-5次。

9.用火焰烧瓶口,转动瓶口使瓶口各部分都烧到,打开瓶口。

10.取下接种器械,在火焰上灭菌。

11.将灭菌后的培养材料在无菌的培养皿中切割成1×1cm大小,然后放入培养瓶,盖上瓶口。

操作期间应经常用70%酒精擦拭工作台和双手;接种器械应反复在95%的酒精中浸泡和在火焰上灭菌。

12.接种结束后,清理和关闭超净工作台。

四、实验报告

1.将本次实验内容整理成实验报告。

2.接种一周后,观察接种材料的污染情况,并分析污染原因。

实验六火鹤的增殖培养

一、目的要求

通过学习火鹤的组织培养的基本方法和步骤,熟练掌握组织培养的无菌操作技术。

二、材料与用具

1.材料:

火鹤试管无菌苗

2.仪器:

超净工作台、解剖刀、长把镊子、无菌培养皿、培养瓶等

3.培养基:

MS+NAA0.2mg/mL+蔗糖30g+琼脂9gPH:

5.8-6.0

三、方法步骤

1.选取生长健壮,长约5cm以上的火鹤试管苗。

2.在超净工作台上用蘸有70%的酒精擦拭双手和工作台以及装有培养基的培养瓶。

3.在酒精灯火焰下烧培养瓶瓶口,转动瓶口使瓶口各部分都烧到。

4.打开长有火鹤的培养瓶瓶盖,用长把镊子取出火鹤试管苗,放入灭过菌的培养皿中。

5.用手术刀将火鹤幼苗切成1.5cm长的小段,每段带有1-2片幼叶。

6.盖好瓶盖,注明品种及接种日期,放入培养室培养。

7.定期观察植株的生长、分化情况。

四、实验报告

通过火鹤茎段培养的基本方法和步骤,制定出杜鹃的微扦插繁殖方案。

实验七杜鹃茎段的微扦插繁殖

一、目的要求

通过学习杜鹃茎段培养的基本方法和步骤,学会和掌握试管微扦插繁殖的基本技术。

二、材料与用具

杜鹃试管无菌苗、超净工作台、解剖刀、长把镊子、无菌培养皿、培养瓶等

培养基:

DJ+NAA0.05mg/mL+ZT0.5mg/Ml+蔗糖30g+琼脂9gPH:

5.0

三、方法步骤

1.选取生长健壮,长约5cm以上的杜鹃试管苗。

2.在超净工作台上用蘸有70%的酒精擦拭双手和工作台以及装有培养基的培养瓶。

3.在酒精灯火焰下烧培养瓶瓶口,转动瓶口使瓶口各部分都烧到。

4.打开长有杜鹃的培养瓶瓶盖,用长把镊子取出杜鹃试管苗,放入灭过菌的培养皿中。

5.用手术刀将杜鹃幼苗切成1.5cm长的小段,每段带有1-2片幼叶。

6.将切好的茎段插入培养基中,保持茎段高度一致。

7.盖好瓶盖,注明品种及接种日期,放入培养室培养。

8.定期观察植株的生长、分化情况。

四、实验报告

将本次实验内容整理成实验报告,并观察记录杜鹃的生长分化情况。

实验八蝴蝶兰原球茎的增殖培养

一、目的要求

通过对蝴蝶兰原球茎增殖的继代培养的操作,掌握蝴蝶兰原球茎增殖的基本技术和基本方法。

二、材料与用具

1.材料:

培养瓶中蝴蝶兰原球茎。

2.仪器:

超净工作台、无菌培养皿、长把镊子、解剖刀等。

3.培养基:

⑴1/2MS+6-BA2.0mg/L+NAA2.0mg/L+蔗糖20g+琼脂9gPH:

5.8

⑵KC+BA2.0mg/L+NAA0.5mg/L+蔗糖20g+琼脂9gPH:

5.8

三、方法步骤

在超净工作台中,用长把镊子将蝴蝶兰的原球茎取出,放在无菌培养皿中,用解剖刀将其切成0.5cm左右的小块,移入上述两种培养基中,每瓶放入20块左右,盖好瓶塞,注明品种名称、接种日期、接种人,最后放入培养室中培养,定期观察其生长及增值情况。

四、实验报告

叙述上述两种培养基的制作过程及原球茎继代增值的操作要点。

实验九蝴蝶兰的定植与移栽

一、目的要求

熟练掌握蝴蝶兰定植与移栽的操作步骤。

二、材料与用具

蝴蝶兰组培苗、长把镊子、解剖刀、培养基、草炭、塑料小钵等。

三、方法与步骤

1.定植:

在超净无菌的条件下,用镊子将蝴蝶兰的组培苗取出,组培苗大小不一,将打的组培苗放在培养皿中待用,小的移入配好的培养基中使其继续繁殖生长。

培养基配方为:

活性炭1g/L+蛋白胨2g/L+花宝1号2g/L+花宝2号1g/L+蔗糖15g+琼脂9gPH:

5.6

2.移栽:

在实验室内,将大的组培苗根部沾有的培养基用清水冲洗干净,往小钵中装满草炭,同时浇入适量的水,用镊子轻轻将组培苗夹起载入其中,最后放在适宜的条件下培养,定期观察其生长状况。

四、试验报告

将本次实验内容整理成实验报告。

 

实验十萱草花茎的离体快繁

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