啤酒检验手册微生物检验部分.docx

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啤酒检验手册微生物检验部分

啤酒检验手册（微生物检验部分）

A、半成品质量检验

一、冷麦汁…………………………………………………………2

二、发酵酒…………………………………………………………2

三、贮酒…………………………………………………………4

四、一滤酒……………………………………………………6

五、清酒……………………………………………………………7

B、成品质量检验…………………………………………………8

C、原辅材料质量检验……………………………………………13

附录1：

培养基、中和剂及染色剂的配制和染色方法…………15

附录2：

玻璃器皿的洗涤、包扎与灭菌…………………………19

附录3：

无菌吸样要求……………………………………………19

附录4：

大肠菌群最可能数（MPN）检索表……………………20

A、半成品质量检验

一、冷麦汁

1、抽样方法

1.1传统发酵

1.1.1每班至少抽检一批。

1.1.2取样时先打开取样阀排放少量液体，后用70-75%的酒精由内至外消毒取样阀，再用火焰灭菌（酒精火焰外焰灼烧15秒以上）。

重新打开阀门排放样品，待阀门冷却后，取150~200ml入已灭菌的三角瓶。

1.2锥形罐发酵

逐批抽检，取样方法同A一、1.1.2

2、检验项目

好气菌（每班至少抽检一批）

厌气菌（每天至少抽检一批，原则上由日班完成）

注：

停产搞卫生后的第一批麦汁一定要抽样检验好气菌和厌气菌。

3、检验方法

3.1好气菌：

无菌操作吸取1ml样品加入已灭菌的平皿内，及时将冷却至45±1℃（手感不烫手）的营养琼脂培养基注入平皿10-15ml，并转动平皿使混合均匀。

待琼脂凝固后，翻转平板，置36±1℃的电热恒温培养箱内培养24或48±2小时后，在菌落计数器上计菌落总数，结果即是每毫升样品中所含的好气菌数。

3.2厌气菌：

无菌操作吸取1ml样品加入已灭菌的平皿内，及时将冷却至45±1℃的UBAD（或NBBD）培养基注入平皿10-15ml，并转动平皿使混合均匀。

待培养基凝固后，翻转平板，置25±1℃的厌氧培养箱内培养5~7天后，在菌落计数器上计菌落总数，结果即是每毫升样品中所含的厌气菌数。

4、结果处理

4.1检验结果以电脑报告单或书面报告单的形式报给企业领导、生技部和酿造部。

二、发酵酒

1、抽样方法

1.1传统发酵

1.1.10代的酵母，半罐即取样；满罐1小时后再取样。

1代以上（包括1代）的酵母满罐1小时后取样。

取样时先打开取样阀排放少量液体，后用70-75%的酒精由内至外消毒取样阀，再用火焰灭菌（酒精火焰外焰灼烧15秒以上）。

重新打开阀门排放样品，待阀门冷却后，取150~200ml入已灭菌的三角瓶。

1.1.2满罐56小时后再取前酵液150~200ml检测高泡时期的酵母数。

1.2锥形罐发酵

1.2.10代的酵母，添加第一批麦汁后1小时及满罐后1小时取样；1代以上（包括1代）的酵母满罐1小时后取样。

无菌操作取样，方法同A一、

1.2.2满罐的第四日取样检测厌氧菌，方法同A一、

1.2.3满罐的第20日取发酵液150~200ml检测酵母数和死亡率。

2、检验项目

2.1传统发酵

2.1.1每罐检验项目：

酵母数、出芽率、酵母形态及厌气菌；高泡期酵母数。

2.1.2抽检项目：

0代酵母逐罐检验死亡率及好气菌；1代以上（包括1代）每月至少抽4罐检验好气菌及死亡率。

2.2锥形罐发酵

2.2.1每罐检验项目：

酵母数、出芽率、死亡率、酵母形态、好气菌及厌气菌；

2.2.2抽检项目：

20天后的酵母数；（0代的酵母逐罐检验，0代以上的酵母抽检的罐数不少于当日满罐总数的50%）

20天后的死亡率（0代的酵母逐罐检验，0代以上的酵母每月至少抽检4

罐）

3、检验方法

3.1好气菌：

同A、一、3.1中好气菌的检验方法

3.2厌气菌：

同A、一、3.2中厌气菌的检验方法

3.3酵母形态与死亡率：

取1:

5000的美蓝染色液一滴，滴在一块洁净的载玻片中央，用滴管或玻棒加一滴酵母悬浮液，混合均匀，染色3分钟后盖上盖玻片制成水浸片，镜检（在3分钟内用高倍镜观察）。

染上蓝色的细胞是死细胞，未着色的是活细胞。

用血球分类计算器计出死亡酵母数与酵母细胞总数（检酵母死亡率时，要求每个视野不少于50个酵母，数1000个以上酵母个数）。

同时观察酵母形态，主要观察酵母的形状、大小、内含物、液泡及细胞壁。

（单纯观察酵母形态时可以用蒸馏水代替美蓝染色液）

死亡酵母数

酵母死亡率（%）=×100（计算结果保留一位小数）

酵母细胞总数

3.4酵母数与出芽率：

3.4.1计酵母数时一般要求用2％的H2SO4稀释10倍（1ml酵母液加入9ml2%H2SO4），使血球计数板每个小方格中平均4~6个细胞为宜。

但酵母含量少时不用稀释。

3.4.2取一块洁净的血球计数板，在中央计数区的上方加盖一块洁净的盖玻片。

3.4.3用滴管或玻棒取酵母悬浮液滴于盖玻片的边缘，让菌液靠毛细作用渗入计数室，注意不得有气泡产生。

将计数板置于显微镜的载物台上，静止5分钟，使酵母细胞全部沉降到计数板的表面。

3.4.4分别统计5个中方格（左上、右上、左下、右下、中央）中细胞总数及芽体数，酵母菌的芽在未脱离母细胞前，若已达母细胞的1/2大小，则不作为芽体而作为成熟的细胞计数。

在计数时，若遇到位于中方格间线上的细胞，只统计位于左线及下线上且在线内的体积不少于一半的细胞。

为尽量减少实验误差，对同一样品血球计数板的上下两个划线区域的5个中方格（左上、右上、左下、右下、中央）均要计细胞总数及芽体个数，分别取其平均值（酵母细胞总数平均值以A表示、芽体个数平均值以B表示）。

3.4.5使用完毕后，将血球计数板冲洗干净（绝对不能用硬物洗刷），让其自行晾干。

3.4.6将细胞总数平均值A乘以5即得25个中方格中的细胞总数

3.4.7细胞数/毫升＝25个中方格中细胞总数×稀释倍数×104，即稀释10倍的计算结果是25个中方格中细胞总数将其小数向前移1位×106个/毫升，没稀释的则向前移两位小数。

（计算结果保留一位小数）

3.4.8

芽体个数（B）

出芽率（%）=×100（计算结果保留一位小数）

细胞总数（A）

4、结果处理

4.1检验结果以电脑报告单或书面报告单的形式报给企业领导、生技部和酿造部。

三、贮酒（仅对传统发酵）

1、抽样方法

1.1满罐后即时取样

1.2取样时先打开取样阀排放少量液体，后用70-75%的酒精由内至外消毒取样阀，再用火焰灭菌（酒精火焰外焰灼烧15秒以上）。

重新打开阀门排放样品，待阀门冷却后，取150~200ml入已灭菌的三角瓶。

2、检验项目

2.1厌气菌：

每班抽检的罐数不小于当班满罐总数的50%

2.2好气菌与死亡率：

每月至少抽检4罐

2.3酵母数：

每班抽检的罐数不小于当班满罐总数的50%

3、检验方法

3.1厌气菌：

同A、一、3.2中厌气菌的检验方法

3.2好气菌：

同A、一、3.1中好气菌的检验方法

3.3酵母数：

3.3.1同A、二、3.4.1

3.3.2同A、二、3.4.2

3.3.3同A、二、3.4.3

3.3.4分别统计5个中方格（左上、右上、左下、右下、中央）中酵母细胞总数，在计数时，若遇到位于中方格间线上的细胞，只统计位于左线及下线上且在线内的体积不少于一半的细胞。

为尽量减少实验误差，对同一样品血球计数板的上下两个划线区域的5个中方格（左上、右上、左下、右下、中央）均要计数，取其平均值（数值以A表示）。

3.3.5将酵母细胞总数平均值A乘以5即得25个中方格中的细胞总数

3.3.6细胞数/毫升＝25个中方格中细胞总数×稀释倍数×104，即稀释10倍的计算结果是25个中方格中细胞总数将其小数向前移1位×106个/毫升，没稀释的则向前移两位小数。

计算结果保留一位小数。

3.4死亡率：

同A、二、3.3中死亡率的检测方法

4、结果处理

4.1检验结果以电脑报检单或书面报检单的形式报给企业领导、生技部和酿造部。

四、一滤酒

1、抽样方法

1.1取样方法同A一、1.1.2

2、检验项目：

2.1好气菌：

每天日班至少抽检一罐

2.2厌气菌：

每周至少抽检一罐

3、检验方法

3.1好气菌：

同A一、1.3.1

3.2厌气菌：

同A一、1.3.2

4、结果处理

4.1检验结果以电脑报检单或书面报检单的形式报给企业领导、生技部和酿造部

五、清酒

1、抽样方法

1.1满罐后即取样。

1.2取样时先打开取样阀排放少量液体，后用70-75%的酒精由内至外消毒取样阀，再用火焰灭菌（酒精火焰外焰灼烧15秒以上）。

重新打开阀门排放样品，待阀门冷却后，取150~200ml入已灭菌的三角瓶。

2、检验项目

2.1每罐检验项目：

好气菌（60℃前及60℃后）

2.2抽检项目：

60℃后厌气菌（每10罐至少检测1罐）

3、检验方法

3.1好气菌：

无菌操作吸取1ml清酒加入已灭菌的平皿内，将余下的酒液重新包扎放入电热恒温水浴锅中，60±1℃恒温15分钟模拟杀菌。

再吸取已杀菌的酒液1ml入已灭菌的平皿。

及时将冷却至45±1℃的营养琼脂培养基注入平皿10-15ml，并转动平皿使混合均匀。

待琼脂凝固后，翻转平板，置36±1℃的电热恒温培养箱内培养24或48±2小时后，分别在菌落计数器上计菌落总数。

3.2厌气菌：

无菌操作吸取已模拟杀菌的酒液1ml入已灭菌的平皿。

及时将冷却至45±1℃的UBA（或NBB）培养基注入平皿10-15ml，并转动平皿使混合均匀。

待琼脂凝固后，翻转平板，置25±1℃的厌氧培养箱内培养5~7天后，在菌落计数器上计菌落总数，结果即是每毫升酒液中所含的厌气菌数。

4、结果处理

4.1检验结果以电脑报告单或书面报告单的形式报给企业领导、酿造部、生技部和包装部。

B、成品质量检验

1．抽样方法

1.1瓶/罐装酒

1.1.1正常生产情况下，每批取前、中、后期三个酒样；当同一个清酒桶包两条线时，各取前、后期两个酒样。

1.1.2同一批酒，如包装时间超过8小时，除按正常取样外，每3小时加取1个微检样。

1.1.3同一批酒，如包装时间小于6小时，则可只取前、中期或前期酒样。

1.1.4如一批酒中有头板酒、PU或杀菌温度偏低、杀菌运行时间偏短部分，则各取两支酒样。

1.1.5以上酒样均由包装线检验人员提供给微检检验人员。

1.2桶装啤酒

1.2.1同一个清酒桶包出来的桶装啤酒为一批，每批取第三桶作前期酒样；同一个清酒桶的酒未包完而停包4个小时以上的，再重包时作另一批，也取第三桶的酒样，由车间通知取样。

1.2.2正常生产情况下，每班至少抽检一桶。

2．检验项目

2.1瓶/罐装啤酒

2.1.1每支酒检验项目：

好气菌（前期要做平行样）

2.1.2抽检项目：

活酵母（每批至少抽检前期酒样；640ml瓶装线使用旧瓶包装

时加抽后期酒样，抽检批数不低于当月总批数的80%）（头板、

PU偏低、杀菌温度偏低、杀菌时间偏短至少抽检一支）

大肠菌群（每批至少抽检前期酒样）

厌气菌（连续生产时至少批数逢“0”抽检，停产一段时间后包返的第一批要求抽检，每批抽检前期酒样）

2.2桶装啤酒

2.2.1每桶酒检验项目：

好气菌（前期要做平行样）

活酵母

2.2.2抽检项目：

大肠菌群（每批至少抽检前期酒样）

厌气菌（连续生产时每3批至少抽检1批，停产一段时间后包返的第一批要求抽检，每批抽检前期酒样）

3．检验方法

3.1好气菌、活酵母与厌气菌

，用70-75%的酒精棉抹干净开瓶器、瓶口

（或罐装拉环部分），再用酒精火焰灭菌。

无菌操作开启瓶/罐盖，迅速倒出2/3左右的酒液后马上用酒精棉盖住瓶/罐口，并轻轻摇荡，使CO2逸出后备用。

桶装啤酒：

依次用1%的碘液与70-75%的酒精棉抹干净酒阀，再用酒精火焰对酒阀及取样器与酒阀接触的部分杀菌，连接好取样器（已用1%的碘液浸泡灭菌）及酒阀。

打开取样阀排放100-150ml的酒液，用70-75%的酒精棉由内至外抹干净取样口，再用酒精火焰灭菌（灼烧15秒钟以上），打开取样阀排放液体，待取样口冷却后，无菌操作接取400~500ml的样品入已灭菌的三角瓶中备用。

3.1.2检验程序：

见下图1：

检样

加1ml入灭菌平皿内

平皿内加入适量培养基

一定的培养条件与时间

菌落计数

报告

（图1）

3.1.3操作步骤

无菌操作吸取1ml的酒液加入已灭菌的平皿内，及时将冷却至45±1℃的培养基注入平皿10-15ml，并转动平皿使混合均匀。

待琼脂凝固后，翻转平板，置培养箱内培养一定时间，在菌落计数器上计菌落总数。

3.1.4培养条件

检验项目

培养基

培养条件

培养时间

培养箱

好气菌

营养琼脂

36±1℃

24或48±2小时

电热恒温培养箱

活酵母

麦汁琼脂

30±1℃

48±2小时

电热恒温培养箱

厌气菌

UBA或NBB

25±1℃

5～7天

厌氧培养箱

3.2大肠菌群

3.2.1样品处理：

同3.1.1，详细见

3.2.2检验程序：

见下图2：

检样

乳糖胆盐发酵管

36±1℃24±2h

不产气产气

大肠菌群阴性

伊红美蓝琼脂平板

36±1℃18~24h

革兰氏染色乳糖发酵管

36±1℃24±2h

革兰氏阳性革兰氏阴性无芽孢杆菌

产气不产气

大肠菌群阴性

大肠菌群阳性大肠菌群阴性

报告报告报告

（图2）

3.2.3操作步骤

乳糖发酵试验

将待检样品接种于乳糖胆盐发酵管内，接种量为10ml者，用双料乳糖胆盐发酵管，1ml及0.1ml者，用单料乳糖发酵管。

每一接种量各接种3管，加2%NaOH中和至中性。

置36±1℃电热恒温培养箱内，培养24±2小时，如所有乳糖胆盐发酵管都不产气，则为大肠菌群阴性，如有产气者，则按下列程序进行。

分离培养

将产气的发酵管分别转种在伊红美蓝琼脂平板上，置36±1℃电热恒温培养箱内，培养18~24小时，然后取出，观察菌落形态，并做革兰氏染色和证实试验。

证实试验

在上述平板上，挑取可疑大肠菌群菌落1~2个进行革兰氏染色，同时接种乳糖发酵管，置36±1℃电热恒温培养箱内培养24±2小时，观察产气情况。

凡乳糖管产气、革兰氏染色为阴性的无芽胞杆菌，即为大肠菌群阳性。

3.2.4大肠菌群含量判定

根据证实为大肠菌群阳性的管数，查MPN检索表，即可得到每100ml酒样中大肠菌群的MPN值。

（附MPN检索表）

4、结果判定与处理

4.1检验结果以电脑报告单或书面报告单的形式报给企业领导、生技部、酿造部、包装部。

4.2电脑报检时成品前、中、后期的好气菌及活酵母取其各自的平均值（保留整数位）；如前、中、后期好气菌检验结果均为零，则整批酒的好气菌结果为“<1”，平均值不足“1”时取为“1”，超过“1”时保留整数位。

电脑检验报告单中的取样日期及检验日期统一报检成品前期相应的日期。

4.3如好气菌≤50个/毫升、100ml酒液中大肠菌群≤3MPN则为合格品；如好气菌＞50个/毫升、或大肠菌群>3MPN，则为不合格品，由有关部门按《不合格品控制程序》处理。

C原辅材料质量检验

一、硅藻土等过滤材料

1、抽样方法

1.1新购进硅藻土等过滤材料，以同一天同一单位进货并且同一类型为一批，每批按进货量抽样：

进货量

20吨以下（含20吨）

20~40吨

（含40吨）

40~60吨

（含60吨）

以此类推

抽样包数

1包

2包

3包

1.2现场使用的硅藻土等过滤材料，每月至少抽检两次，每次至少抽一包。

1.3取样时先用70-75%的酒精棉抹干净开包处包表面及开包工具（剪刀或刀片等），再用酒精火焰灭菌，用已灭菌的勺子在每包内采样（150~200ml），装入采样容器内混匀加盖封好。

要求整个操作过程在火焰旁进行，并且手不得接触样品。

2、检验项目

2.1好气菌

3、检验方法

3.1无菌操作称取1g样品放入已灭菌的平皿内，吸取10ml无菌水注入平皿，并转动使混合均匀。

3.2无菌操作吸取1ml样品的稀释液加入已灭菌的平皿内，及时将冷却至45±1℃的营养琼脂培养基注入平皿10-15ml，并转动平皿使混合均匀。

待琼脂凝固后，翻转平板，置36±1℃的电热恒温培养箱内培养24或48±2小时后，在菌落计数器上计菌落总数，结果乘以10即得每克样品中所含的好气菌数。

4、结果处理

4.1检验结果以电脑报告单或书面报告单的形式报给企业领导、生技部、酿造部、供应部。

二、无菌水、脱氧水

1、抽样方法

1.1取样时先打开取样阀排放少量液体，后用70-75%的酒精由内至外消毒取样阀，再用火焰灭菌（酒精火焰外焰灼烧15秒以上）。

重新打开阀门排放样品，待阀门冷却后，取150~200ml样品入已灭菌三角瓶。

2、检验项目

2.1好气菌：

每月至少抽检8次

2.2厌气菌：

每月至少抽检1次

2.3大肠菌群：

每月至少抽检1次

3、检验方法

3.1好气菌：

同A、一、3.1中好气菌的检验方法

3.2厌气菌：

同A、四、3.2中厌气菌的检验方法

3.3大肠菌群：

同B、

4、结果处理

4.1检验结果以电脑报告单或书面报告单的形式报给企业领导、生技部和酿造部。

注：

以上样品的细菌检验结果如每平板中的菌落总数＞1500时，即判为样品中的细菌含量无法计数，电脑报告单中以“9999”表示。

附录1：

培养基、中和剂及染色剂的配制和染色方法

1、营养琼脂　　

1.1配制方法

称取40克（当瓶身标签上的定量与之有出入时,按照标签上所规定的量配制）营养琼脂加入1000ml蒸馏水，边加热边搅动，使培养基全部溶解，待培养基沸腾后分装入干燥洁净的三角瓶，装入三角瓶的培养基的量一般为三角瓶容积的1/3~1/2。

在分装时应注意不得使培养基沾污瓶口，以免浸湿棉塞，造成污染。

1.2灭菌条件

121℃湿热高压灭菌20分钟。

1.3保存条件

低温保存

2、UBA培养基　　

2.1配制方法

称取62克（当瓶身标签上的定量与之有出入时,按照标签上所规定的量配制）UBA粉末培养基加入750ml蒸馏水，边加热边搅动，使培养基全部溶解，待培养基沸腾后加入250ml未除气的啤酒混匀，分装入干燥洁净的三角瓶，装入三角瓶的培养基的量一般为三角瓶容积的1/3~1/2。

在分装时应注意不得使培养基沾污瓶口，以免浸湿棉塞，造成污染。

2.2灭菌条件

121℃湿热高压灭菌15分钟（当瓶身标签上的规定与之有出入时,按照标签上的规定灭菌）。

2.3保存条件

低温保存

3、NBB培养基　　

3.1配制方法

称取66.3克NBB粉末培养基加入500ml蒸馏水及500ml已除气的啤酒，边加热边搅动，煮沸后维持沸腾状态1分钟使培养基全部溶解。

分装入干燥洁净的三角瓶，装入三角瓶的培养基的量一般为三角瓶容积的1/3~1/2。

在分装时应注意不得使培养基沾污瓶口，以免浸湿棉塞，造成污染。

3.2灭菌条件

121℃湿热高压灭菌15分钟。

3.3保存条件

低温保存

4、1000PPM放线菌酮溶液

4.1配制方法

精确称取0.5g放线菌酮溶于500ml蒸馏水，分装于三角瓶。

4.2灭菌条件

115℃湿热高压灭菌15分钟。

4.3保存条件

密封保存

5、UBAD（或NBBD）培养基

无菌操作每100ml已灭菌的UBA（或NBB）培养基中加入1ml1000PPM的放线菌酮溶液，重新煮沸以混合均匀。

6、麦汁培养基

6.1配制方法

　每1000mL已煮沸的麦汁缓慢加入已充分搅拌的蛋清2个，边加边搅拌，持续沸腾30—40分钟（加热过程要不断搅拌），待麦汁冷却后过滤，加蒸馏水调整糖度为11勃力克司，然后加入1.7％—1.8％琼脂，继续加热使琼脂全部溶解后过滤分装入干净三角瓶。

6.2灭菌条件

115℃湿热高压灭菌25分钟。

6.3保存条件

低温保存

7、乳糖胆盐发酵管（初发酵用）

7.1配制方法

称取66克（当瓶身标签上的定量与之有出入时,按照标签上所规定的量配制）乳糖胆盐发酵培养基溶入1000ml蒸馏水（如配单料，蒸馏水量加倍），加热至沸，分装入10ml的试管，装入培养基的量为3-4ml。

在分装时应注意不得使培养基沾污试管口。

7.2灭菌条件

115℃湿热高压杀菌15分钟。

7.3贮存条件

低温保存

8、乳糖发酵管（复发酵用）

8.1成分

蛋白胨20g

乳糖10g

0.04%溴甲酚紫水溶液25ml

蒸馏水　　1000ml

pH7.4

8.2配制方法

将蛋白胨及乳糖溶于水中，校正pH，加入指示剂，按检验要求分装，方法同7.1。

（双料乳糖发酵管除蒸馏水外，其他成份加倍）

8.3灭菌条件

同7.2

8.4贮存条件

同7.3

9、伊红美蓝琼脂平板

9.1配制方法

称取伊红美蓝琼脂31g（当瓶身标签上的定量与之有出入时,按照标签上所规定的量配制）加入1000ml冷蒸馏水，微火加热至溶解，115℃高压灭菌15min，冷至56℃左右倾注无菌平皿备用。

平皿即制即用。

10、革兰氏染色法

10.1结晶紫染色液（1:

100）

配制方法：

a、准确称取1.000g结晶紫

b、准确称取1.000g草酸铵溶于50ml蒸馏水，再加水定容至100ml

将结晶紫溶解于20ml95%的乙醇中，然后与80ml1%的草酸铵溶液

混合至100ml。

保存方法：

密封保存

保存期：

3个月

10.2革兰氏碘液（1:

300）

配制方法：

碘1g

碘化钾2g

蒸馏水300ml

将碘与碘化钾先进行混合，加入蒸馏水少许，充分振摇，待完全

溶解后，再加蒸馏水至300ml。

保存方法：

密封避光保存

保存期：

3个月。

10.3复红染色液（1:

400）

配制方法：

称取0.2500g碱性复红（或品红）溶于10ml无水乙醇，再加水

稀释至100毫升。

保存方法：

密封保存

有效期：

六个月

10.4染色法

10.4.1将涂片在火焰上干燥固定，滴加结晶紫染色液，染1分钟，水洗。

10.4.2滴加革兰氏碘液，作用1分钟，水洗。

10.4.3滴加95%乙醇脱色，约30s；或将乙醇滴满整个涂片，立即倾去，再用

乙醇滴满整个涂片，脱色10s。

10.4.4水洗，滴加复红染色液，复染1分钟。

水洗，待干，镜检。

10.4.5结果

革兰氏阳性菌呈紫色，革兰氏阴性菌呈红色。

11、美蓝染色液（比例：

1:

5000）

11.1配制方法：

a、准确称取0.1000g亚甲基蓝溶于100ml蒸馏水，再加水稀释

至500ml

b、准确称取5.4436g磷酸二氢钾溶于100ml蒸馏水，再加水稀

释至200ml

c、准确称取0.3120g磷酸二氢钠溶于8ml蒸馏水，再加水稀释

至10ml。

将上述三种溶液分别量取100ml、99.75ml、0.25ml混合均匀。

11.2保存方法：

密封保存

11.3保存期：

6个月

12、2%NaO