神经肌肉组织活检常用方法和步骤.docx

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神经肌肉组织活检常用方法和步骤

肌肉活检样品取材和送检须知事项

一般原如此

1.通常使用活组织切开检查法获取肌肉组织。

2.对于具有不协调病理学功能障碍患者，切开活组织检查非常必要，例如多发性肌炎。

3.烧伤、缝合或磁夹部位的肌肉组织不能取样送检。

4.细针穿刺肌肉组织活检可以减少病人的损伤，但也可能会取样不全，丢失肌肉斑片或肌外膜组织。

5.尽可能在同一活检取材位置获取数个肌肉样品，特别是对于多病灶疾病，炎性肌病，需要做代谢分析的肌病可疑患者。

肌肉样品送检

1.肌肉样品在湿盐水纱布中可保存几个小时，注意肌肉不应该浸在盐水、固定剂或其他液体中，同时样品须存放于凉爽处。

2.样品不能与时送检时可用充足的干冰保存过夜。

肌肉样品冷冻与保存

1.样品经异戊烷予冷器处理冷冻在-160℃液氮中，也可使用丙酮和干冰的混合液冷冻，肌肉冷冻后最好密封贮存在-70℃，防止酶活性和水分丢失，肌肉样品在液氮或-70℃冰箱中可长期保存。

2.经上面方法处理的标本肌肉纤维形态好，光镜检查时可获得大多数诊断信息。

3.为了防止人为现象，送检样品冷冻处理时应该迅速

电镜样品固定

1.局部样品固定于4%戊二醛，固定的肌肉组织多用塑料包埋剂包埋。

2.电镜分析可以很清楚显现肌膜毛细血管。

石蜡包埋材料

1.石蜡包埋的材料有利于炎症和炎细胞形态观察，但是石蜡切片肌纤维的形态较差。

2.福尔马林固定、石蜡包埋切片无法进展对于某些组织化学和免疫组织化学染色，因此为了满足诊断需要，多数肌肉活检样品需要立即进展冷冻保存或新鲜标本送检。

3.需要石蜡包埋切片的标本应用福尔马林固定。

病理实验室肌肉活检样品常规处理方法

骨骼肌活检，应尽量防止出现人为现象。

根据检查的目的进展必要的处理。

标本处理原如此上要满足组织化学、电镜和生物化学检查的要求。

例如，线粒体异常需要另外保存别离线粒体的样品。

如果需要做去皮纤维〔skinnedfiber或破膜纤维〕检查，需要将标本保存在缓冲液中。

组织化学检查

活检的肌肉标本要用生理盐水浸湿的纱布包裹，放入玻璃瓶内，纱布应该稍微挤干些，防止水分过多，水分过多容易肌肉膨胀。

样品直接暴露在空气中很容易枯燥。

枯燥的样品肯定会出现人为现象，影响制片和诊断。

操作过程中尽量防止产生人为现象。

一般活检的肌肉组织〔直径5mm，长度1cm左右〕，固定于软木塞上。

软木塞可选用小瓶塞〔直径1～1.5cm〕将肌肉组织竖立在软木塞上，用托辣甘树胶〔黄蓍树胶〕直立固定肌肉，切片时使呈横断面。

注意不要将肌肉完全包埋在黄蓍树胶中。

肌肉组织需要骤冷冷冻，不然会产生冰晶。

肌肉组织的细胞比拟大，特别容易产生冰晶。

含有冰晶的肌肉组织染色后细胞内会出现大小不等的空泡。

为了快速冷冻，一般使用液氮〔-160℃〕，丙酮、干冰混合液〔-90℃〕。

如果将组织直接放入液氮内组织周围产生大量的汽化液泡，产生热隔断效应，会延迟冷冻速度。

所以现在的方法是先将产生气泡较少的异戊烷冷却于液氮中，再将组织放在充分冷却的异戊烷中进展冻结。

100ml烧杯在颈部系上牵绳，往烧杯中加60～70ml异戊烷，将烧杯轻轻放入液氮中。

为了使异戊烷冷却均匀，用搅拌棒或镊子不断搅拌异戊烷，开始时液氮因激烈汽化而冒出白烟，而后逐渐减少。

异戊烷充分冷却后，在烧杯中产生白色结晶。

用大镊子夹住软木塞，迅速置入异戊烷中，迅速左右轻柔地晃动。

托辣甘树胶粘附固定肌肉目的就是在充分冷却的异戊烷中轻柔细微地晃动。

如果将组织静置在异戊烷中，组织周围异戊烷的温度升高，包裹在组织周围，不能迅速彻底冻结，组织容易形成冰晶，组织轻微晃动冷冻液充分流动，使组织迅速冻结，很难形成冰晶。

在异戊烷中冷冻20-30秒钟。

移入放有干冰的箱中，放置1小时，使组织周围的异戊烷挥发干净。

放入能密封的塑料袋或玻璃瓶中防止组织枯燥，置-70℃冰箱中保存。

-70℃以下密封保存最少可保存1年，不会影响组织化学检查结果。

我们观察保存10年以上的标本，染色后的效果和新鲜组织没有明显差异。

恒温冷冻切片冷冻切片机内部的温度-25～-20℃为宜。

低于-25℃时，肌肉过硬，容易出现横皱，高于-20℃时含脂肪、结缔组织的肌肉伸展不良。

容易出现皱褶现象。

最好在载玻片粘贴2～3行连续切片的组织。

冰冻切片室温保存2～3天进展任何染色都不会使活性降低，但室温保存5天以上，ATPase染色或Phosphoryase（磷酸化酶）染色效果较差。

另外，改良Gomori染色法最好在切片当天进展。

肌肉组织活检冷冻步骤

用品

1.液氮

2.异戊烷Isopentane（2methylbutane）

3.长把手镊子

4.两个金属容器

5.手套

6.一次性软木塞

安全与防护

注意：

异戊烷非常易燃，不要让该材料到达室温，放入液氮时使用防护眼镜。

试剂配制

7%托辣甘树胶〔GumTragacanth〕

托辣甘树胶7g

蒸馏水100ml

麝香草酚5粒

托辣甘树胶参加蒸馏水中溶解，再参加5粒麝香草酚，室温搅拌。

注：

托辣甘树胶非常难溶解，溶液可放在室温连续搅拌。

配制后4℃保存，保质期6个月。

（口香糖的主要成分为托辣甘树胶，口香糖用开水或温水浸泡5min，然后再用蒸馏水几次，用清洗后的口香糖代替托辣甘树胶使用，用于粘附固定组织效果并不受影响。

口香糖的使用方法仅本人试用，主要顾虑是否会影响PAS染色，口香糖的使用需要更多的实践检验）。

肌肉冷冻步骤

1．放适当量的托辣甘树胶于软木塞上，将病人某某和病理编号写到软木塞或贮存肌肉样品的容器上。

2．将肌肉组织放在托辣甘树胶中〔肌肉组织需要暴露1/3或1/2托辣甘树胶之上，不要完全埋到托辣甘树胶中〕。

肌肉埋入的方向垂直，肌丝横断面向上〔切片为横断面〕。

3．准备一个100ml小烧杯装入60～70ml异戊烷，用规格为700mm的滤纸包住小烧杯的口，再用橡皮筋扎住小烧杯周边的滤纸小心放入液氮中，不要将异戊烷浸到液氮中，让异戊烷降到-140℃，异戊烷下面冻成固体上面呈液态时即可开始冷冻。

4．用长镊子夹住软木塞将准备好的肌肉组织朝下浸到异戊烷中迅速冷冻，并在异戊烷中轻轻地晃动10秒左右，加快冷冻速度，防止形成冰晶。

5．用镊子夹住软木塞不动维持20秒钟，〔较小于0.3cm的组织5秒钟〕冷冻过程中不要将肌肉组织离开异戊烷，直到组织冷冻完成。

6．小心将冷冻的组织包埋块拿出来，迅速放入预冷的容器中密封贮存或与时做冰冻切片。

或在-70℃以下无限期保存。

7．冷冻后的异戊烷回收到原容器中，盖紧瓶盖，4℃冰箱储存，冷冻肌肉组织的异戊烷可以反复使用，并不影响冷冻效果。

异戊烷易挥发，易燃，使用是应注意。

冰冻切片操作步骤

1.防卷板与切片刀和持刀架上的板块应保持干净，需经常用毛笔或柔软的纸X去除剩余组织碎片。

必要时每切完一X切片后就用纸擦一次。

因为切片时组织很容易附贴在防卷板和切片刀之间，如果有剩余的包埋剂粘附切片刀或放卷板上，切片容易出现皱折，或组织片断裂，很难获得完整的切片。

2.如果几个病例同时做冰冻切片，应将组织分别放于不同的支承器上，放到冷冻台上冷冻，然后跟据不同病例的编号，按顺序进展切片，并在切片上标记该组织的编号。

防止X冠李戴。

良好的工作习惯，周到的工作计划，能够有效提高工作效率，使工作忙而不乱。

3.切片时发现组织冷冻过度，可将冰冻包埋的组织块连同支承器取出来，在室温停留片刻，或者用大拇指按压组织块，以此来软化组织，还可以把冷冻温度点稍微升高一点。

来缓解冷冻过度的程度，让组织尽快达到适宜的切片温度。

4.用于附贴冰冻切片的载玻片，室温下应用，不必放入冷藏或冷冻。

因为附贴切片时，室温下的载玻片与冷冻箱中的切片有一定的温差，当温度较高的载玻片与温度较低切片接触时，冰冻切片很容易贴到载玻片上。

而冷藏或冷冻过的载玻片就不容易贴牢，需要提高温度才能贴牢。

切片附贴时容易产生气泡。

5.肌肉活检Gomori三色和改良复原型辅酶Ⅰ四唑蓝复原酶染色法组织切片不需要固定。

其余染色方法根据所这证实的组织成分选用最优固定液固定。

肌肉活检样品的染色方法

改良复原型辅酶I四唑蓝复原酶〔NADH-TR〕氧化酶组织化学染色法

固定：

不需要固定

切片：

冰冻切片10um

试剂配制：

染色液

复原型烟酰胺腺嘌呤二核苷酸〔NADH〕-SigmaN81298mg

硝基四唑氮蓝（Nitrobluetetraolium-SigmaN6876）10mg

0.2molTrisHCl缓冲液pH10ml

二甲亚砜〔DMSO〕0.5～1ml

以上试剂临用前新鲜配制，配制方法将NNADH，NBT，Tris-Hcl混合后参加DMSO然后用玻璃棒搅拌2～3分钟，过滤后使用。

根据上面配方我们在应用时进展了一点变通下面是我们采用的配制方法：

A液

复原型烟酰胺腺嘌呤二核苷酸〔NADH〕-SigmaN81298mg

0.2molTrisHCl缓冲液pH5ml

复原型烟酰胺腺嘌呤二核苷酸〔NADH〕溶解于TrisHCl缓冲液中。

B液

硝基四唑氮蓝（Nitrobluetetraolium-SigmaN6876）10mg

0.2molTrisHCl缓冲液pH5ml

硝基四唑氮蓝（Nitrobluetetraolium）溶解于TrisHCl缓冲液中。

C液

二甲亚砜〔DMSO〕10ul

A液和B液分别分装到EP管中，每管50ul，-20℃储存。

临用时室温解冻，A液50ul和B液50ul混合再参加C液10ul。

可以染1～2X肌肉组织冰冻切片。

长期〔6个月〕-20℃储存染色不会产生任何影响。

这种变通可以免去每次染色前称量繁琐过程。

染色步骤

1.冰冻切片放入湿盒中滴加染色液置37℃恒温箱10～20mins。

2.流水冲洗1min。

3.蒸馏水洗3次。

4.甘油-明胶封片。

结果：

基质网和线粒体呈紫蓝色，Ⅰ型肌纤维比Ⅱ型肌纤维颜色黑些，血管壁同时也被染色。

GOMORI三色法染色步骤

原理

Gomori's一步三色法是原生质染料〔铬变素2R〕与结缔纤维〔固绿FCF〕在钨酸液中参加了冰醋酸一种联合染色

样品要求

迅速冷冻人横纹肌〔利用前面提到的异戊烷冷冻法〕

方法

固定不需要，使用速冻的组织

技术方法速冻的组织经恒温冷冻切片机上切10～16微米，附贴于盖玻片或载玻片上，按需要决定切片数量。

设备品

1染色架

2染色碟

3染色缸

4镊子

5乳胶手套

试剂

1.冰醋酸〔GlacialAceticAcid-FisherA507-500,CORROSIVEstoreatroomemperature〕。

2.铬变素2R〔Chromotrope2R-SigmaC3143,IRRITANT,storeatroomtemperature〕。

3.去离子水。

4.固绿FCF〔FastGreenFCF-certified,SigmaF7258,GLOVESANDMASKREQUIRED,storeatroomtemperature〕

5.Harris苏木精染液

6.Permount-FisherSP15-100,FLAMMABLEHEALTHHAZARD

7.磷钨酸游离酸-SigmaP4006,CORROSIVE,storeatroomtemperature

8.乙醇

9.二甲苯

溶液

1.Gomori'strichromestain

铬变素2R

固绿FCF

磷钨酸

去离子水100ml

冰醋酸

使用1N氢氧化钠调pH至3.4，室温保存，液体1周内有效。

2.0.2%冰醋酸

去离子水100ml

冰醋酸

3.50%乙醇

乙醇50ml

蒸馏水50ml

4.70%乙醇

乙醇70ml

蒸馏水30ml

5.80%乙醇

乙醇80ml

蒸馏水20ml

6.950%乙醇

乙醇95ml

蒸馏水5ml

染色步骤〔StainingProcedure〕

1将切片插入染色架上

2Harris苏木精染5min

3自来水冲洗min

4Gomri三色液染色10min

50.2%醋酸浸几次要充分分化

6直接用95%乙醇洗

7继续用上行乙醇液〔95%×2,100%×2〕脱水

8二甲苯透明〔3～4×〕

9中性树胶封固，并标记切片

结果

细胞核红色-紫红

正常肌肉肌原纤维具有不同的绿色A和I折射带

Itermyofibrillarmusclemembranes:

Red

间质胶原绿色

改良Gormori三色染色法

此染色法对线粒体肌病和先天性肌病的诊断非常有价值。

Gormori’s液

A液

变色酸2R

固绿FCF

磷钨酸

冰醋酸1ml

蒸馏水99ml

用1M氢氧化钠调

B液

冰醋酸

蒸馏水100ml

组织样品

肌肉组织经防冰晶处理后，冰冻切片不固定，切片5-10微米，肌纤维横切。

染色步骤

1.冰冻切片，室温下晾干切片。

2.用Harri’s苏木精染5mins。

3.蒸馏水洗。

4.切片放入A液中染10mins。

5.用B液冲洗切片几秒钟。

6.乙醇脱水。

7.二甲苯透明，树胶封固。

结果：

核蓝色

Ⅰ型肌纤维绿色带有红色

Ⅱ型肌纤维绿色

说明：

1.两型肌纤维都是绿色，但Ⅰ型肌纤维含有更多红染色颗粒物质而带有红颜色。

2.此方法是一种改良Gormori三色染色法。

PAS〔PeriodicAcidSchiff〕染色方法

简述：

该方法用于福尔马林固定石蜡包埋切片的肝、心脏和骨骼肌组织中的糖原检测，还可以用于冰冻切片，糖原，粘液和真菌被染成紫色细胞核被染成蓝色。

固定：

10%福尔马林。

切片：

石蜡5微米

试剂配制：

1.0.5%过碘酸水溶液

过碘酸

蒸馏水100ml

2.Schiff试剂

碱性复红〔CI42500〕6g

蒸馏水1200ml

N盐酸60ml

偏重亚硫酸氢钠12g

用600ml蒸馏水溶解6g碱性复红，煮沸几分钟，冷却到50℃参加60mlN盐酸，冷却到25℃参加12g偏重亚硫酸氢钠〔高纯度化学试剂〕。

液体放于暗处24小时。

24小时后加5～6g活性炭，摇动大约1分钟。

通过粗过滤纸过滤，液体应该清亮，如果液体有颜色重复参加活性炭。

最后补充蒸馏水至液体到总量600ml，放入棕色瓶中冰箱内保存。

Schiff’s试剂质量测试：

量10毫升37%甲醛倒入透明小玻璃瓶中，加几滴Schiff试剂测试，质量好的Schiff试剂会立刻变成紫红色。

质量不好的Schiff试剂会延长反响，而且颜色畸形伸长会变深呈蓝-紫色。

另外，用水测试，把Schiff试剂直接滴入水中，立即出现洋红色说明试剂质量很好，出现粉红色或无色，说明质量不合格或过期，应该从新配制。

Schiff试剂保存：

常规棕色瓶内贮存，冰箱内4℃保存。

这种条件下保存的Schiff试剂最长有效时间不超过1年。

有些有效期更短，3个月，甚至1～2个月。

具有关资料介绍Schiff试剂配制后进展分装冷冻保存可以延长试剂的有效时间。

融化后使用，染色效果和新配制的Schiff试剂比拟没有区别。

可以保存数年，本人使用过冷冻贮存4年以上的Schiff’s试剂，并不影响染色结果。

3.Mayer’s苏木精液

PAS染色步骤

1.切片脱蜡至水。

2.0.5%过碘酸氧化5分钟。

3.蒸馏水冲洗。

4.Schiff’s试剂染15分钟〔切片变为粉红色〕。

5.自来水冲洗5分钟。

〔切片变成深红色〕。

6.Mayer’s苏木精染1分钟。

7.自来水冲洗5分钟。

8.95%乙醇，100%乙醇脱水，二甲苯透明，中性树胶封固。

结果：

糖原，粘液和基底膜-红色/粉红色.,背景-蓝色。

PAS/D-糖原淀粉酶消化染色法

简述：

α-淀粉酶是一种消化酶，唾液中含有淀粉酶。

对照：

一样的组织块上切两X切片。

一X消化另一X不消化。

然后两X切片都用PAS染色。

肝脏是最好的对照组织。

试剂配制：

1.消化液

淀粉酶〔用α-淀粉酶〕

蒸馏水50ml

首先Sigma产品α-淀粉酶VI-B产品号A3176。

用蒸馏水慢慢溶解酶。

新鲜配制，15分钟内使用，用后丢弃。

2.0.5%过碘酸

过碘酸

蒸馏水500ml

3.Schiff’s试剂

碱性复红〔CI42500〕6g

蒸馏水1200ml

N盐酸60ml

偏重亚硫酸氢钠12g

用600ml蒸馏水溶解6g碱性复红，煮沸几分钟，冷却到50℃参加60mlN盐酸，冷却到25℃参加12g偏重亚硫酸氢钠〔高纯度化学试剂〕。

液体放于暗处24小时。

24小时后加5～6g活性炭，摇动大约1分钟。

通过粗过滤纸过滤，液体应该清亮，如果液体有颜色重复参加活性炭。

最后补充蒸馏水至液体到总量600ml，放入棕色瓶中冰箱内保存。

染色步骤

1.石蜡切片脱蜡至蒸馏水。

2.用微波炉加热淀粉酶液20秒。

3.放标记消化切片用加热的淀粉酶液消化15分钟，不要过度化消。

4.自来水冲洗，蒸馏水洗。

5.两种切片同时按PAS步骤染色。

结果：

未经淀粉酶消化的切片糖原被PAS染成洋红色，经淀粉酶消化的切片消失。

说明：

如果切片消化过度，组织需要重切。

消化过度有花边现象，甚至没有组织留下。

Highman’s刚果红染色法〔Highman1946〕

这是一种简便、广泛被应用的染色方法。

染液的稳定性相当好。

该方法经有经验的老手选择提供。

资料来源组织学技术TheoryandPracticeofHistologicalTechniques（第六版）。

固定：

不关键；福尔马林盐能获得满意的结果。

试剂配制：

1.0.5%刚果红溶液〔刚果红溶解于50%乙醇100ml〕。

2.0.2%氢氧化钾液〔氢氧化钾溶解于80%乙醇100ml〕。

染色步骤

1.切片脱蜡至水，必要时祛除色素。

2.刚果红液染5分钟。

3.0.2%氢氧化钾液分化3～10秒。

4.水洗，明矾苏木精染核，分化，返蓝。

5.脱水，透明，封固。

结果：

淀粉，弹力纤维，噬伊红颗粒-红色。

核-蓝色。

说明：

第3步分化，可以用水终止，分化过度可能会发生，如果必要可以重复。

PTAH染色法〔Shum&Hon1969〕

A液

苏木精

蒸馏水1ml

苏木精加1ml蒸馏水研磨成糊状，〔糊状液体应该呈巧克力颜色，颜色淡的通常是指示剂不适合此方法染色，应该丢弃〕。

B液

磷钨酸

蒸馏水9ml

A液和B液混合，煮沸，冷却后过滤。

染色步骤

1.切片脱蜡至水。

2.酸性高锰酸钾处理5分钟。

3.自来水冲洗。

4.5%草酸水溶液漂白。

5.充分自来水洗。

6.染PTAH液12～24小时，室温。

PTAH液56℃染几个小时，结果更确切完全可以代替室温下染色。

7.蒸馏水洗。

8.迅速脱水，透明，封固。

PTAH液自然氧化方法

油红O脂质和脂肪染色

用途：

显示脂质和脂肪。

固定：

10%幅尔马林。

冰冻切片：

4～8微米。

染色液配制

1．0.5%油红O溶液

油红O

100%异丙醇100ml

参加少量的异丙醇溶解油红O并搅拌，逐渐参加剩余的异丙醇，加热溶液到95℃左右，不超过100℃，冷却到室温用滤纸过滤。

或室温过夜，用特殊玻璃装置真空抽吸，配制的溶液在室温中可保存数年。

如果液体外表有膜形成可以用一X薄纸片除去。

2．85%异丙醇溶液

异丙醇〔100%〕85ml

蒸馏水15ml

3．Gill’s苏木精

染色步骤

1．空气中枯燥切片30min，用10%福尔马林固定5min。

2．蒸馏水洗3次。

3．100%异丙醇5min，防止切片上的水带入油红O染液中〕

4．油红O液60℃染色8分钟。

5．85%异丙醇溶液洗5分钟。

6．蒸馏水洗3min。

7．Gill’s苏木精染色30秒。

8．流水冲洗3min。

9．蒸馏水洗2次。

10．甘油明胶封片。

结果：

脂肪红色，细胞核淡蓝色。

改良油红O-糊精染脂肪色法〔Churukian2000〕

固定：

新鲜冰冻组织中性缓冲福尔马林。

切片：

冰冻切片5微米，SuperFrost载玻片贴片，空气中晾干切片。

试剂配制：

油红O液

油红O

纯异丙醇100ml

混合后过夜

糊精水溶液

糊精1g

蒸馏水100ml

工作液

储藏液油红O液60ml

糊精水溶液40ml

或油红O液

油红O

纯异丙醇180ml

搅拌过夜

糊精水溶液

糊精

蒸馏水120ml

工作液

油红O液180ml

糊精水溶液120ml

放置1天或更长时间，液体可稳定数月。

使用前过滤。

染色步骤

1.切片直接放入过滤的油红O-糊精液中染色20分钟。

2.流水稍冲洗。

3.比照染色用GillⅡ苏木精染20-30分钟。

4.流水冲洗返蓝。

5.水溶性封固剂封固。

结果：

脂肪灿烂红色

核蓝色。

*Dextrin,bacteriologicalgradeorTypeⅢSigma,from.Dextrinishydrolyzedstarch.VWR（VWRScientific）alsohassmallquantities;mustbemostsolubleformofdextrit

劳克监牢蓝法

劳克监牢蓝属于铜-钛菁染料〔copper-phthalocyaninedye〕，在酒精溶液中具有与髓鞘磷脂结合的染色特性，再经过中性红或焦油紫复染还能染出神经元的胞核与尼氏小体，而且对髓鞘着色反响具有强化作用。

固定：

10%福尔马林生理盐水或福尔马林-钙液。

切片：

石蜡切片15-20微米，火棉胶或冰冻切片均可。

试剂配制：

1.劳克监牢蓝液

劳克监牢蓝MBS

10%醋酸液

95%酒精100ml

染液配制后过滤使用，可以长期保存。

2.0.5%中性红水溶液

染色步骤

1．切片脱蜡入无水酒精。

冰冻切片直接入无水酒精。

2．放入染液中染色8～16小时，60℃，染色缸需要密封。

3．经70%酒精，然后蒸馏水洗。

4．0.05%碳酸锂水溶液分色，石蜡切片10～30秒，厚冰冻切片10分钟。

5．再经70%酒精继续分色两次，每次30～60秒。

至灰、白质区分清晰。

如果还不清晰可继续分色。

6．蒸馏水洗。

7．0.5%中性红水溶液加数滴冰醋酸复染10min〔10～30min，视镜检、分色而定〕。

8．70%酒精进展复染分色，至细胞核与尼氏小体呈红色。

9．正丁醇脱水两次，3～5min/次，二甲苯透明，中性树胶封固。

结果：

髓鞘蓝色，细胞核与尼氏小体红色。

注：

复染还可应用①PAS，②Mallory磷钨酸-苏木精法显示神经胶质，③Holmes度银显示轴索，④油红O显示溃变退化的髓鞘。

改良Glees和Marsland染色法

试剂：

1．20%硝酸银水溶液：

2．Glees溶液：

20%硝酸银30ml，无水酒精20ml，氨水。

将酒精参加硝酸银液中，立即出现