生物技术大作业之文献综述.docx

1、生物技术大作业之文献综述RNA干扰及其在水稻抗病毒基因工程中的应用摘要: RNA 干扰( RNA interference, RNAi)是一种基因沉默机制。RNAi 作为新兴的基因阻断技术具有明显的优势,已被广泛应用到动植物功能基因组和植物抗病研究中。在抗病毒研究中,人为地将与病毒或宿主基因同源的双链 RNA 分子导入转基因植株, 引起与其同源的基因发生沉默,达到抗病毒的作用。本文主要综述了 RNA 干扰的相关知识以及在水稻抗病毒基因工程研究中的应用进展。关键词: RNA 干扰; _ 基因工程; _ 水稻病毒病害Advances in RNA interference and its appl

2、ications in genetic engineering against Rice stripe virusAbstract: RNA interference is a mechanism of gene silencing. As a newly developed gene_silence tool, RNAi possesses distinct advantages and has been applied to plant and animal functional genomics and plant disease resistance research. In plan

3、t antivirus research, double strands RNA homo lo go us to virus gene or host gene is transferred into plant to repress the virus replication and r educe its damage . This review summarizes the advances in RNA interference techniques and its applications in r ice genetic engineering research.Key word

4、s: RNA interference; _ genetic engineering; _ rice virus diseases_ 水稻病毒病是由病毒引起的一类系统性侵染病害,世界上已经发现和确认的水稻病毒病( 包括类菌原体病)约有16 种,其中在我国发生的有11种( 包括两种类菌原体病) ,分别是普通矮缩病、黄叶病、条纹叶枯病、黑条矮缩病、黄萎病、草状矮缩病、簇矮病、锯齿叶矮缩病、橙叶病、东格鲁病、瘤矮病。中国稻区广阔, 水稻病毒病可广泛流行, 在病害严重流行时,曾十几个省相继发病, 暴发成灾, 仅一个省( 市、自治区)因病损稻谷即数十万t。北方粳稻产区以水稻条纹叶枯病发生普遍。水稻条纹叶

5、枯病( rice stripe disease) 是由水稻条纹病毒( Rice stripe virus, RSV)引起的一种最严重的水稻病毒病害, 是通过灰飞虱 Laodelphax striatellus ( Fallen) 刺吸以持久性方式传播, 汁液、土壤及种子均不能传毒。自20世纪80年代末期以来,该病在我国水稻种植区的发病率逐年提高,特别是在粳稻种植区,发生更为普遍。据不完全统计, 全国近年该病的发病面积已达267 万 hm2以上, 病区发病率一般在10% 20%, 重者株发病率达 50% 80%, 给农民带来重大经济损失 1。利用水稻品种抗性被认为是防治水稻条纹叶枯病最经济、 有

6、效的方法。用常规方法培育抗病品种存在育种周期长、效率低,抗病基因与不良性状连锁等问题。RNA 干扰( RNA interference, RNAi ) 技术所具有的特异性、稳定性、高效、快速以及不改变基因组的遗传组成等特性,为基因功能的研究提供了强有力的手段, 同时也为转基因植物抗病毒病害增添了新的策略和方法。1 RNA干扰( RNAi)RNA 干扰( RNA interference, RNAi) 是指双链RNA( double stranded RNA, dsRNA)分子引起的序列特异性靶基因 mRNA 降解,从而导致内源或外源靶基因沉默的机制。1.1 RNAi的发现尽管RNAi现象只是在

7、20 世纪90年代以来才被认识并逐渐引起人们的注意,但是第1 篇与RNAi相关的文章可能早在1928年就已发表。Wingard 2发现由烟草环斑病毒侵染的烟草植株开始时表现出明显的病症, 但上部叶片的症状会逐渐变轻, 可以从病毒侵染症状中_ 恢复 过来,并且新长出的叶片可抵抗同源病毒的再次侵染,具有了一定的抗性。当时并没有有关RNAi机制的任何信息,甚至不知道烟草环斑病毒的基因组是RNA。不过,这一现象说明了抗性机制的存在可以限制或阻止病毒的再次侵染。1998 年, Fire 等人 3将 dsRNA 注入线虫(Caenorhabditis elegans )体内后发现可抑制序列同源基因的表达,

8、抑制主要作用于转录之后, 并将此现象称为RNA 干扰。此后, RNA 干扰现象被证明广泛存在于真菌、线虫、 果蝇、植物、高等动物等生物中,发现者也因此获得2006年诺贝尔生理学或医学奖。1.2 RNAi的作用机制1.2.1 dsRNA 的来源经研究发现有多种途径可以产生dsRNA,主要为: 1)当基因组的一些随机位点被插入一段序列的多个拷贝时,侧翼启动子驱动转录, 转录通读可以产生与该正义链序列互补的双链 RNA, 形成 dsRNA;2)对于具有末端反向重复序列的转座子, 转录通读产生的RNA 会自身回折形成发夹结构的 dsRNA( hairpinRNA, hpRNA) 4- 5; 3)帮助细

9、胞识别异常的 RNA ( aberr ant RNA ) , 并在 RdRP ( RNA_dependent RNA polymerase) 作用下, 转变成 dsRNA 6; 4) 植物中, RNA 病毒感染可以直接引入dsRNA 4- 5; 5)外源基因以反向重复的形式插入基因组后可转录产生hpRNA; 6)正义 RNA 大量表达引起的共抑制, 也能诱导 dsRNA 的产生 7; 7) 病毒或植物细胞中的miRNA 基因, 其前体miRNA( premiRNA) 被 DCL1 加工为 miRNA-miRN A * 双体( 即为dsRNA) 8- 9。无论哪种途径产生的dsRNA,都可引发R

10、NAi。1.2.2 RdRp 介导的补充途径在线虫、 植物、 真菌和果蝇中还存在依赖 RNA的RNA 聚合酶介导的补充途径, RdRp 可能的作用方式有: 1) RdRP 以 siRNA 单链为引物合成靶mRNA的互补链; 2) 不需要引物直接合成异常RNA的互补链; 3)在1 条mRNA 链上结合了 2 条或多条siRNA 引物, 分别由 RdRP 延伸后再由 RNA 连接酶连接成互补链; 4) dsRNA 解旋后, 2 条链均结合上 siRNA 引物,分别由 RdRP 合成互补链, 新合成的次生dsRNA 又被Dicer 切割成大量次生siRNA,从而增强了诱导基因沉默的效率 6。1.2.

11、3 RNAi的3 种主要途径通过大量基因抑制现象的研究, 以及生化和遗传学上的分析表明, 基因沉默有 3 种不同的途径。这3 种途径都包括 dsRNA 被含有RNase III 结构域的Dicer 酶切割为 21 26 个核苷酸小分子 RNA的过程 10。目前研究比较清楚且使用较多的基因沉默小分子 RNA 主要有siRNA ( small interfering RNA)及miRNA( microRNA)。1.2.3.1 转录后基因沉默( post_transcriptional gene silencing, PTGS)PTGS 是最普遍的一种沉默机制。此机制主要由siRNA 介导 11。病

12、毒侵染的植物细胞中的dsRNA 可能是单链 RNA 病毒的复制中间产物或是其二级结构形态。至于植物DNA 病毒,其 dsRNA 可能是具有重叠互补序列的转录物经由退火形成的。在胞质中的Dicer 酶或其类似物( Dicer like, DCL)的作用下把长链 dsRNA 切割成 siRNA, 其具 5端磷酸和3端羟基,此外每条单链的3端均有2 3 个突出的非配对的碱基 12- 13。由siRNA中的反义链指导形成一种核蛋白体, 即RNA 诱导的沉默复合体( RNA_induced silencing complex , RISC ) , 然后siRNA 作为引导序列,按照碱基互补配对原则识别靶

13、基因转录的 mRNA, 并引导 RISC 复合体结合mRNA; 接着siRNA 与mRNA 在复合体中换位, 内切核酸酶将mRNA 切割成21 23 nt 的片段,特异性地抑制靶基因的表达; 另一方面, 释放的 siRNA可结合在靶 mRNA 上作为引物, 在 RdRp ( RNA dependent RNA Polymerase ) 的作用下合成 dsRNA ,合成的新的dsRNA 又可以发生RNAi 现象,特异地降解靶mRNA 14- 16,从而产生级联放大反应。1.2.3.2 转录水平的基因沉默( transcriptional gene silencing, TGS)TGS 机制是通过

14、改变靶基因染色质的结构来实现的。许多研究表明, 发生T GS 的主要原因是启动子序列的碱基尤其是胞嘧啶的甲基化。siRNA通过碱基配对原理, 指导 DNA 甲基化酶结合到DNA 的特异部位,引发该部位DNA 中胞嘧啶的甲基化( RNA directed DNA methylation, RdDM) 及组蛋白H3 赖氨酸9 的甲基化 17- 21, 使靶启动子失去功能, 导致下游基因转录沉默。另外, DNA 甲基化可以阻止转座酶的生成,从而抑制转座子的移动,保持遗传稳定, 防止遗传损害 22。1.2.3.3 翻译水平的基因沉默这种机制主要是由内源的miRNA 介导的基因沉默。miRNA 是由长度

15、约70nt 的RNA 形成的茎环样前体,经Dicer 酶作用后形成长约 21 25nt 的单链RNA,大多数 miRNA 与底物 mRNA 不完全配对结合, 它们并不改变 miRNA 的稳定性 23-24。这种抑制方式最终也通过形成RISC 发挥作用, 结合在相应的 mRNA 的 3末端非翻译区( 3UTR) 上,对靶基因进行转录后的负调控, 而靶 mRNA 并不发生变化, 所以属于一种翻译水平上的抑制效应 25- 26。miRNA 和 siRNA 相同, 除了都由 Dicer酶加工成熟之外, RNAi必需的 Argonaute ( alg1、alg2) 家族基因也是这两种 RNA 行使生物功

16、能所必需的。在RNAi过程中形成的 RISC 复合物既含有 siRNA 又含有 miRNA, 此复合物可根据不同情况产生不同效应,若siRNA 与靶序列不能严格配对( 如有单个碱基错配) ,则PT GS 无法进行,此时复合物转而利用 miRNA 抑制核糖体在 mRNA 上延伸从而在翻译水平阻断基因表达 27。2 RNAi技术在植物抗病毒研究中的应用RNAi技术目前已经广泛应用于植物病毒的防治上。1998年,首次报道了RNAi 技术在防治马铃薯Y 病毒病上的应用, Waterhouse等人利用马铃薯Y 病毒( PVY ) 蛋白酶基因片段构建 IRS( inverted repeat sequen

17、ce) 载体进行烟草转化, 使植株完全免疫 28。dsRNA 为RNAi 的诱导起始物。生物体由于病毒入侵、转座子转录、基因组中反向重复序列转录以及外源基因导入等原因都可能产生dsRNA 分子。dsRNA 的产生有化学合成法、体外转录法和转录载体体内转录法。现在普遍采用转录载体体内转录法。2.1 RNAi 表达载体的构建2.1.1 靶基因序列的选择构建高效的RNAi表达载体是应用RNAi技术的关键。其中导入的 dsRNA 具有特异性是利用RNAi的前提, 在保证不影响其他功能的前提下降解病毒基因组。这种特异性是由 dsRNA 与目的基因的同源序列决定的,所以如果在植物体内还有另外的基因与RNA

18、i 作用的基因有同源性, 这个基因必定也会受到 RNAi 的影响。另外, 对于 RNAi 的作用位点要经过精心选择。位点选择不当还常常会导致脱靶效应( off-target effect ) 。由于siRNAs 和靶 mRNA 可以有一定的错配和间隙,因此 siRNAs可能在一个基因组中作用于上百个潜在的目标序列 29。现在已经发展出若干种算法和软件帮助选择特异的 siRNA 靶序列 30, 运用科学并相对先进的技术可以帮助尽量避免脱靶效应的产生。目前,RNAi技术在植物抗病毒研究中, 主要从两方面来设计RNAi作用的靶位点: 1) 以病毒基因组序列为靶位点设计dsRNA,来起到抑制的作用;

19、2)以宿主植物的基因组序列为靶位点设计dsRNA, 来起到抑制的作用。前一种方法目前研究和应用的比较多,它是将植物病毒基因组的一部分片段作为RNAi 作用的靶位点来设dsRNA, 从而达到抗病毒的目的。Shuichiro 31等人分别以马铃薯 X 病毒( Potato virus X , PVX)的外壳蛋白基因和TGBp1基因(这个基因编码RNA沉默抑制因子) 为靶位点来设siRNA, 他们分别选取了这两个基因的部分片段设计成可产生发夹结构的反向重复序列, 结果表明这两种siRNA 都能干扰PVX 的侵染。后一种方法研究和应用的比较少, 因为它需要在对宿主植物某些基因功能了解比较清楚的前提下进

20、行。2.1.2 dsRNA 表达结构对于dsRNA 表达结构, 人们多采用基因片段反向连接成反向重复序列的方法, 可使表达的单链RNA 自我配对形成发夹结构RNA ( hpRNA) , 发夹茎部形成稳定的 dsRNA 可诱导同源的内源基因沉默。通常在片段之间需存在一段间隔区, 以便使载体结构更加稳定。而用正义方向连接的内含子序列替代hpRNA 间隔区,形成带有内含子结构的ihpRNA (intron splicing hpRNA)载体,其沉默效率可达到90%以上 32。Wesley 等 33对此进行了深入的比较研究,其结果表明长度为98 853 bp 的靶基因反向重复片段能够高效地导致沉默,

21、其转化体沉默效率可达 66% 100%(平均90% )。另外启动子强弱对于外源基因的表达水平也有很重要的影响, 在构建准备转化禾本科植物( 如水稻) 的表达载体时, 可用Ubiquit in 启动子等,以获得较高的干扰程度 34。2.2 RNAi技术在抗水稻条纹叶枯病毒中的应用利用RNAi技术赋予植物体病毒抗性具有高度可行性,目前已有通过RNAi 技术获得抗性的报道。如Pinto 等 35将南方菜豆花叶病毒属的水稻黄斑驳病毒( Rice yellow mottle virus , RYMV) 复制所需酶的部分基因通过构建载体而转化水稻, 诱发基因沉默,从而使植物具有对 RYMV 的抗性, 并且

22、这种抗性能稳定遗传3代。马中良等 36根据抗水稻矮缩病毒( Rice dwarf virus, RDV)序列,构建了与其相关的RNA 干扰序列,导入水稻中, 发现对水稻矮缩病毒有很高的抗性。转病毒外壳蛋白 cp 基因策略是研究最早、 应用最广泛的抗病毒手段。Hayakawa 等 37和燕义唐等 38- 39将条纹叶枯病毒的 cp 基因分别导入到粳稻和籼稻中, 发现表达外壳蛋白基因的转基因水稻植株对 RSV 的侵染起到一定的抗性。研究表明, 当RSV 侵染水稻后, 伴随着病症的加剧, 植物细胞内病毒的外壳蛋白 CP 和病害特异性蛋白 SP 发生积累,而其他病毒蛋白的积累并不明显,因此推测这两种蛋

23、白都是致病相关蛋白 40。刘利华等 41应用免疫胶体金电镜技术发现病毒的 CP和SP 在寄主组织细胞中的叶绿体和细胞质中都有存在, 线粒体中没有, 而细胞核中只有CP 分布, 这表明 CP 极有可能是病害的致病相关蛋白,甚至致病性方面比SP 更为重要;并且还发现在叶肉组织细胞壁的胞间连丝中存在 CP, 据此推测 CP 也可能与病毒的运输有关。因此, 目前在利用 RNAi 技术抗水稻条纹叶枯病毒中经常选取病毒的 cp 基因作为靶位点。代玉华等 42以水稻条纹叶枯病毒的cp 基因为靶标, 通过将载体pMCG161 和载体 pCAMBIA1301 双酶切和连接,构建了一个具有 CaMV 35S 启动

24、子并且在正反义链中间含有一个水稻内含子适于水稻农杆菌转化的高表达 RNAi 载体。张恭等 43利用已公布的水稻条纹叶枯病毒的序列和siRNA Target Finder 软件,获得了 168 条siRNA 片段, 利用这些片段在水稻基因组中BLAST,最终获得6 条与水稻基因组完全不匹配的干扰序列。选择其中的 2 条, 通过化学合成干扰序列,利用 pCAMBIA1301 质粒构建了2 个RNA 干扰载体。这些研究为探索利用RNA干扰技术防治水稻条纹叶枯病奠定了基础。3 结语RNAi技术已经高效地应用于能够沉默特定植物基因的分子植物育种, 并被 Science 杂志评为2001、2002 年度自

25、然科学十大突破之一 44, 为目前分子生物学和遗传学研究热点。正如诺贝尔生理学或医学奖评奖委员会主席戈兰!汉松说: 我们为一种基本机制的发现颁奖。这种机制已被全世界的发明家证明是正确的, 是给它发个诺贝尔奖的时候了。RNAi技术发展迅速,以上的研究也说明RNAi技术在应用于抗水稻病毒研究中的巨大潜力。但RNAi也有其自身的不足之处。研究证实即使是有一个碱基的突变, 也会对干扰的效果产生巨大的影响 45。siRNA 的脱靶效应也是进行 RNAi 试验时需要注意的一个问题 46- 47。并且对于RSV 的各基因产物的功能及其在致病性中的作用等方面的研究还很少。尽管仍有一些问题亟待研究, 但随着分子

26、生物学方法和技术的发展,可以预见上述问题必将一一得到解决, 有理由相信利用 RNAi 技术将在水稻病毒基因功能研究和水稻抗病品种的培育方面发挥重要作用。参考文献： 1 吴书俊, 钟环, 左慧, 等. 水稻抗条纹叶枯病的遗传与育种研究进展 J . 中国农学通报, 2007, 23( 1) : 244- 248. 2 Wingard S A. Host s and symptoms of ring spot , a virus disease of plant s J . Agric Res, 1928, 37: 127- 153. 3 Fire A, Xu S, Mont gomery M K,

27、 etal . Potent and specificgenetic interference by double stranded RNA in Caenorhabditis elegans J . Nature, 1998, 391: 806- 811. 4彭昊, 王志兴, 窦道龙, 等. 由根癌农杆菌介导将葡萄糖氧化酶基因转入水稻 J . 农业生物技术学报, 2003, 11( 1) : 16- 19. 5 Plasterk R H. RNA silencing: the genomes immune system J .Science, 2002, 296(5571) : 1263-

28、1265. 6 Hutvagner G, Zamore P D. RNAi: nature abhors a double strand J . Curr Opin Genet Dev, 2002, 12: 225- 232. 7 Beclin C, Boutet S, Waterhouse P, et al. A branched pathway for transgene _induces RNA silencing in plants J . Curr Biol,2002, 12( 8) : 684- 688. 8 Li J, Yan g Z, Yu B, et al. Methyl a

29、t ion protects miRNAs and siRNAs from a 3end uridylation activity in Arabidopsis J .Curr Biol, 2005, 15( 16) : 1501- 1507. 9 Park M Y, Wu G, Gonzalez Sulser A, et al. Nu clear processing and export of mi croRNA in Ar abid op sis J . Proc Natl Acad Sci USA, 2005, 102( 10) : 3691- 3696. 10 Baulcombe D

30、. RNA silencing in plant s J . Nature, 2004,431: 356- 363. 11 Hamil t on A J, Baulcom be D C. A species of small antisense RNA in post _transcriptional gene silencing in plant s J . Science, 1999, 286: 950- 952. 12 Zamore O D. RNA interference: listening t o sound of silence J .Nat Struct Biol, 2001

31、, 8( 9) : 749. 13 Harborth J, Elbashir S M, Becheft K, et al. Identification of essential genes in cultured mammalian cells u sing small interfering RNAs J . J Cell Science, 2001, 114( 24) : 4557. 14 Zamore P D, Tuschl T , S harp P A, et al . RNAi: double stranded RNA directs the ATP _dependent clea

32、vage of mRNAat 21 t o 23 nucleotide intervals J . Cell , 2000, 101: 25- 33. 15 Winston W M, Molodow it ch C, Craig P H. Syst emic RNAi in C. elegans requires the put at ive transmembrane protein SID 1 J .Science, 2002, 295( 5564) : 2456- 2459. 16 Jia S, Nom a K, Grew al S I. RNAi independen the terochrom at in nucleation by the stress activated ATF/ CREB family proteins J . Science, 2004, 304( 25) : 1971- 1976. 17 Wass