蝗虫减数分裂地制片与观察.docx

1、蝗虫减数分裂地制片与观察实验四 减数分裂与配子形成一、实验目的 1、观察减数分裂过程并熟悉减数分裂各个时期的特征及染色体的形态、数目的变化，为研究遗传基本规律奠定细胞学基础。2、学习并进一步掌握动、植物减数分裂玻片标本的制作方法和基本技能。3、了解动、植物的生殖细胞的形成过程。二、实验原理 减数分裂是一种特殊方式的细胞分裂，仅在配子形成过程中发生。这一过程的特点是：连续进行两次核分裂，而染色体只复制一次，结果形成四个核，每个核只含单倍数的染色体，即染色体数减少一半，所以称作减数分裂。另外一个特点是前期特别长，而且变化复杂，包括同源染色体的配对、交换、分离和非同源染色体的自由组合等。在高等生物里

2、雌雄性细胞形成的过程中，都是先由有性组织（如花药和胚珠、精巢和卵巢）中的某些细胞分化为孢母细胞（2n）,以及精母与卵母细胞（n）。进一步由这些细胞进行一种连续二次的减数分裂，即减数第一分裂和减数第二分裂，最终各自产生4个小孢子（n）或精细胞（n），或是分别产生一个大孢子或卵细胞（n）与三个退化的极体（n）。再经受精作用，雌、雄配子融合为合子，染色体数目恢复为2n。这样，在物种延续的过程中，确保了染色体数目的恒定，从而使物种在遗传上具有相对的稳定性。在分裂过程中，可以详细地到染色体的形态、数目、组成和染色体的鉴定和分析等，从而为遗传学研究中远缘杂种的分析、染色体工程中的异系鉴别、常规的组型分析以

3、及三个基本规律的论证，提出了直接与间接的依据和细胞学基础。并可导致了各种遗传重组的发生，为生物的进化提供了物质基础。 三、实验材料 小麦（Triticum aestivum Linn）幼穗，短角斑腿蝗（Catantopsbrachycerus）精巢。四、实验器具和药品试剂显微镜、解剖针、镊子、刀片、载玻片、盖玻片、吸水纸、小广口瓶等；卡诺氏固定液（Carnoys Fluid）、45醋酸和改良苯酚品红等。五、实验方法和步骤（一）小麦花药压片标本的制作与观察1、取材 当大田中的小麦处于孕穗早期时，选取旗叶叶耳与其下面一叶叶耳之间相距12cm的主穗，剥去外部叶鞘，剪下幼穗，投入Carnoy固定液中，

4、固定424h后用70酒精换冼两次，保存在70%酒精中。2、压片从70酒精中取出一段幼穗，剥下一朵颖花，置载玻片上，用解剖针剥开外颖，将花药剔出(花药长度以12mm为宜)，在花药上加一滴改良苯酚品红染液，染色35min，然后持解剖针横切花药成24段，再用针头轻压，使花粉母细胞从花粉囊中挤出，尽量挤净，弃去药壁碎片，盖上盖玻片即可在显微境下观察。盖上玻片时，不必施加压力，有多余的染液时，可用吸水纸吸去，但加上玻片后，不能来回移动。若染色太淡，可在盖玻片边缘加一滴染液，让它渗进去继续染色并进行烤片，静置12分钟再压片，即可获得较清楚的制片。如果染色效果不甚理想，可以置于酒精灯火焰上烘烤加强染色效果。

5、烘烤压片是一项很重要技术，比较烘烤前面细胞质与染色体的着色情况。通常将片子在酒精灯光焰上来回移动，直到气泡逐渐扩大时为止，烘烤要反复多次进行，可使细胞染色尽量褪去，染色体得到充分鲜明的着色，如染色过深，可以在盖玻片边缘注一滴45%的冰醋酸，而在相对的边缘用吸水纸吸收在盖玻片下流动的染色液，直到胞质脱色而染色体仍清晰可见为止。3、减数分裂时期的观察先在低倍镜下找到花粉母细胞，然后转用高倍镜观察。花粉母细胞与体细胞明显不同，主要特征是细胞及核的体积都较大。观察辨认压片标本中的花粉母细胞处于减数分裂的哪个时期。换用稍大或较小的花药进行压片与观察，简图表示你所看到的各个分裂时期实验中同学之间可以相互参

6、观和交流，借以扩大观察容和围。（二）蝗虫精巢压片标本的制作与观察1、取材蝗虫染色体数目较少，染色体较大，易于观察，因此，蝗虫精巢一向被视为减数分裂实验传统材料。蝗虫以夏秋两季采集为宜。蝗虫雌雄个体的形态特征有明显的差别雄体腹部末端为交配器，形似船尾，而雌体末端分叉，与雄体明显不同捕到雄虫后用镊子夹住雄虫尾部，向外拉。可见到一团桔黄色团状结构组织块，这就是蝗虫的精巢。剔除精巢上的其它组织，将其放到Carnoy固定液中固定1.52小时后用70%酒精换洗两次，70酒精中保存备用。 图4-1蝗虫雌雄个体的腹部末端形态特征2、压片挑起精细管，置载玻片上，除去外围脂肪，从中间切成两段，弃去后半段(近输精管

7、端)，留下前半段(因为前半段细胞分裂旺盛而后半段多为精于)。滴一滴改良苯酚品红染液，同时以小镊子轻轻挤压精细小管外壁，以使性母细胞或减数分裂中各时期的细胞流出精细小管管壁，以利于观察。染色1015分钟后盖上盖玻片，用手指隔着吸水纸略加压力，使细胞散开，铺成单层。随后便可放显微镜下观察。3、减数分裂过程的观察制成的临时压片标本中，除了正在进行减数分裂的细胞之外，还可看到精原细胞的有丝分裂过程。仔细区分精母细胞和精原细胞，确定减数分裂各个时期，画图表示各期特征。如制永久片，可以将玻片放在CO2干冰或生物切片半导体冰冻机上，待玻片结冰后，取出玻片，用刀片迅速揭开盖玻片，放在空气中干燥后，用封藏剂（加

8、拿大树胶）封固。六、作业 1、每人至少作出二良好的临时片。 2、 绘出下列各分裂时期的简图。 （1）终变期 （2）中期 （3）后期 （4）中期 （5）后期 （6）四分孢子 3、联系有丝分裂实验，说明高等植物的染色体周史，染色体的恒定性、特异性和连续性。4、减数分裂与有丝分裂有何区别？子代与亲代的差异是由哪一种分裂造成的？七、学习资料1、实验材料的采集在实验过程中，取材的时间对实验效果影响很大，除小麦以外，常用来进行减数分裂过程观察的植物有蚕豆、玉米、棉花和水稻等，其取材时间分别为：1、蚕豆：蚕豆现蕾后，于上午79时摘取茎顶幼小花序，将周围小叶和苞叶去掉，留长约1mm左右的花苞，放入装有卡诺氏固

9、定液的广口瓶中，固定324小时，转入70%酒精中置冰箱保存。2、棉花：棉花现蕾不久就开始进行减数分裂，由于花序分节着生，连续生长，所以常常按照花蕾的长度进行取材。例如：陆地棉，一般当三角苞长到1cm左右，花萼与花瓣等长，整个花蕾长约3-5mm时取样较好。于上午69时依上述标准取材，固定保存方法同上。3、水稻：剑叶与其下一叶的叶枕平齐，即叶枕距为零时取材，早熟品种应适当提前，叶枕距可为负；晚熟品种应延迟，叶枕距应为正。通常穗长68cm，颖花长3mm为花粉母细胞分裂始期；穗长1315cm，颖花长4mm为减数分裂盛期；穗长达全长，颖花长6mm时为减数分裂终期。于上午69时依上述标准取材，固定保存方法

10、同上。4、玉米：玉米孕穗初期，早熟品种约10片完全展开叶，中熟品种约1214片展开叶，晚熟品种约1416片展开叶时取材。从喇叭口往下捏叶鞘，有松软感觉，即为雄花序所在部位，用刀片纵向划一切口，剖开取出数条花序分枝检查，如果先端小颖花长34mm,花药长23mm时，花粉母细胞减数分裂相较多，即可取用。取材时间一般为上午79时，固定保存方法同上。2、减数分裂与配子形成过程在适当的时机采集植物的花蕾或动物的精巢，经固定、染色压片后，就可以在显微镜下观察到细胞的减数分裂。整个减数分裂可分为下列各个时期。下面（图4-1）是以小麦（Triticum aestivum Linn）的减数分裂各个时期的照片。第一

11、次减数分裂 前期I细线期（图4-1B）：染色体呈很细的染色线，螺旋卷曲分散在细胞核，沿着整条染色线分布着许多染色粒，形似念珠，在细胞核，核仁清晰可见。 偶线期（图4-1C）：同源染色体彼此接近，发生联会。在细线期末，偶线期初，染色体或染色丝在细胞中的部位发生变化。在植物细胞中，染色丝凝集成团，偏于细胞核的一边，称为凝线期，在这一时期，还出现染色质(丝)穿壁转移运动。在动物细胞中，染色丝的一端聚集到核的一侧，而另一端呈放射状扩散，呈花束状，特称花束期。凝线期或花束期一直延续到偶线期结束粗线期开始为止。 粗线期（图4-1D）：同源染色体完成配对，成为二价染色体(或成对的同源染色体)，染色体由于螺旋

12、卷曲的结果而缩得很短，每一粗线期的染色体具有两条并列的染色单体，成对的同源染色体含有四条染色单体，称为四分体，核仁附着于特定的染色体上。双线期（图4-1E）：同源染色体之间彼此开始分离，但是在一个或多个点上互相交叉而又保持在一起，形似麻花。在该期，同源染色体的两个染色单体之间发生交换。终变期（图4-1F）：染色体缩得更短，交叉移向染色体的中间或末端，呈现V型、8型、O型或x型。染色体常移到核的周围靠近核膜的地方，是统计染色体的最好时期。该期结束时，伴随着核膜的破裂和核仁的消失。 中期I（图4-1G、H）：核膜和核仁已消失，染色体排列在赤道面上，两极出现纺锤体井与染色体的着丝点相连。此时所有四分

13、体都排列在纺锤体的中部，但并不发生着丝点的分裂现象，与有丝分裂不同。后期I（图4-1I）：每个四分体中的两个同源染色体，由于着丝粒的作用而彼此分离，逐渐向两极移动，形成两组染色体。末期I（图4-1J）：当两组染色体移动到两极后又聚集起来，核膜重新出现。在第一次核分裂之后，有些物种紧接着就进行胞质分裂，如百合，洋葱等，但有些物种则不接着进行胞质分裂，而是在第二次核分裂后才进行胞质分裂，如蚕豆，聚合草等。中间期（图4-1K）：当减数第一次分裂后，两个子细胞(或核)经过一个很短的间期（即中间期)，便进入减数第二次分裂。随着物种的不同，中间期的长短不一。但有的植物如延龄草（Trillium）和大多数动

14、物不经过末期和间期，直接进入第二次减数分裂的晚前期。第二次减数分裂前期（图4-1L）：染色体缩短变粗，染色体开始清晰起来。每个染色体含有一个着丝粒和纵向排列的两条染色单体。前期快结束，染色体更短粗，核膜消失。中期（图4-1M）：染色体排列在赤道面上，每个染色体含一个着丝粒、两条染色单体。两条染色单体开始分离。此时细胞的染色体数为n，每一染色体有两条染色单体。后期（图4-1N）：两条染色单体分离，移向两极，每极含n条染色体。末期（图4-1O）：染色体逐渐解螺旋，变为细丝状，核膜重建，核仁重新形成。胞质分裂，各成为两个子细胞。减数分裂结束，一个细胞经减数分裂形成四个子细胞（图4-1P），每个子细胞

15、中只有n个染色体。因为细胞分裂两次，染色体只复制一次。 图4-1 小麦（Triticum aestivum Linn）的减数分裂过程玉米花粉母细胞减数分裂过程（自Willian等）公司产品：大葱花蕾、黑麦花穗、普通小麦花穗、蝗虫精巢、减数分裂（大葱花蕾）实验试剂盒、减数分裂（黑麦花穗）实验试剂盒、减数分裂（普通小麦花穗）实验试剂盒、减数分裂（蝗虫精巢）实验试剂盒、。试剂配制：1、卡诺固定液Carnoy fixative）： 配方：纯酒精3份 + 冰醋酸1份 ；配方：纯酒精6份 + 冰醋酸1份 + 氯仿3份 。适用于植物组织和细胞学材料，为研究细胞分裂和染色体的优良固定液。固定时间不宜过久。 2

16、、改良苯酚品红染液 ：原液A：将3g碱性品红溶入100ml 70%酒精，此液可长期保存。原液B：将10mlA液加入到90ml 5%苯酚水溶液中。 原液C：将55mlB液加入到6ml的冰醋酸和6ml的38%的甲醛中。 染色液：取C液20ml，加45%冰醋酸80ml，充分混匀，再加入1g山梨醇，放置14天后 使用，可保存3年。 3、1醋酸洋红（aceto carmine） ： 适用于压碎涂抹制片，能使染色体染成深红色，细胞质成浅红色。 配方：洋红1g ； 45醋酸100ml ，煮沸2h左右，并随时注意补充加入蒸馏水到原含量，然后冷却过滤，加入4铁明矾溶液12滴（不能多加，否则会发生沉淀），放入棕色瓶中备用。 4、醋酸-地衣红染液： 取45毫升醋酸，跟55毫升蒸馏水相混，加热，徐徐加入地衣红粉末12克，搅拌溶解后，缓缓煮沸2小时。冷却后过滤，贮存在棕色瓶里。5、减数分裂实验试剂盒：A（固定的大葱花蕾、黑麦花穗、普通小麦花穗、蝗虫精巢尖）、B液（染色液）、C液（45%冰醋酸）、小平皿组成。