质粒DNA的提取定量酶切与PCR鉴定实验报告之欧阳法创编.docx

1、质粒DNA的提取定量酶切与PCR鉴定实验报告之欧阳法创编质粒DNA的提取、定量、酶切与PCR鉴定时间：2021.03.09创作：欧阳法一、实验目的1.学习并掌握用碱裂解法提取质粒DNA的方法；2.学习并掌握了解质粒酶切鉴定的方法；3.学习并掌握紫外吸收检测DNA浓度和纯度的原理和方法；4.学习并掌握PCR基因扩增的实验原理和操作方法；5.学习并掌握水平式琼脂糖凝胶电泳的原理和使用方法。二、实验原理1.PCR(多聚酶链式反应)在DNA聚合酶催化下，可以DNA为模板，以特定引物为延伸起点，以dNTP为原料，通过变性、退火、延伸等步骤， 在体外（缓冲液中）复制DNA，使目的DNA按2n方式呈指数形式

2、扩增。 PCR一次循环的具体反应步骤为：A.变性：加热反应系统至95，使模板DNA在高温下完全变性，双链解链 。 B.退火：逐渐降低溶液温度，使合成引物在低温（3570,一般低于模板Tm值的5左右），与模板DNA互补退火形成部分双链。 C.延伸：溶液反应温度升至中温72，在 Taq酶作用下，以dNTP为原料，引物为复制起点，模板DNA的一条单链在解链和退火之后延伸为一条双链。 2.质粒DNA的提取与制备(1).碱裂解法：染色体DNA与质粒DNA的变性与复性存在差异：A.高碱性条件下，染色体DNA和质粒DNA均变性；B.当以高盐缓冲液调节其pH值至中性时，变性的质粒DNA复性并保存在溶液中，染色

3、体DNA不能复性而形成缠连的网状结构，可通过离心形成沉沉淀去除。(2).离心层析柱：A.硅基质膜在高盐、低pH值状态下可选择性地结合溶液中的质粒DNA，而不吸附溶液中的蛋白质和多糖等物质；B.通过去蛋白液和漂洗液将杂质和其它细菌成分去除；C.低盐，高pH值的洗脱缓冲液将纯净质粒DNA从硅基质膜上洗脱。3.质粒DNA的定量分析（紫外分光光度法）：A.物质在光的照射下会产生对光的吸收效应，且其对光的吸收是具有选择性；B.各种不同的物质都具有其各自的吸收光谱:DNA分对波长260nm的紫外光有特异的吸收峰蛋白质对波长280nm的紫外光有特异的吸收峰碳水化合物对230nm的紫外光有特异的吸收峰C.A2

4、60/A280及A260/A230的比值可以反应DNA的纯度；A260/A280=1.8 DNA纯净A260/A2801.8 含RNA杂质，用RNA酶去除。4.质粒DNA的酶切鉴定：限制性内切酶是DNA重组操作过程中所使用的基本工具。限制性内切酶能特异性地与一段被称为限制酶识别序列的特殊DNA序列结合，或是与其附近的特异位点结合，并在结合位点切割双链DNA。 5.琼脂糖凝胶电泳：琼脂糖是一种天然聚合长链状分子，可以形成具有刚性的滤孔，凝胶孔径的大小决定于琼脂糖的浓度。DNA分子在碱性环境中带负电荷，在外加电场作用下向正极泳动。DNA分子在琼脂糖凝胶中泳动时，有电荷效应与分子筛效应：不同的DNA

5、，分子量大小及构型不同，电泳时的泳动率就不同，从而分出不同的区带(迁移速度与分子量的对数值成反比关系).三、材料与方法： （一）实验材料：1.PCR仪器：PCR仪、台式离心机、微量加样枪、灭菌的薄壁离心管材料：菌液【大肠杆菌DH5a菌株(pMD19-T质粒,含目的片段-绿色荧光蛋白GFP)】、无菌去离子水、2PremixTaq、引物2. 质粒DNA的提取与制备仪器：恒温培养箱、台式离心机、离心层析柱、Eppendorf管、微量加样枪、离心管材料：溶液 P1（S1）、溶液P2 (S2）、溶液P3（S3）、去蛋白液PE（W1）漂洗液WB（W2）、洗脱液EB（Eluent)、含pMD19-T质粒的大

6、肠杆菌DH53. 质粒DNA的定量（紫外分光光度法）仪器：比色杯、紫外分光光度计、微量加样枪材料：蒸馏水、质粒4.质粒DNA的酶切鉴定仪器：1.5ml的EP管、微量加样枪材料：无菌水、10M酶切缓冲液Buf R、质粒DNA、Hind III (15U/ul)、EcoR I(12U/ul)5.琼脂糖凝胶电泳仪器：凝胶电泳系统、凝胶成像系统材料：电泳指示剂、Gelview、TBE、琼脂糖、DNA Marker 5000、电泳缓冲液（二）实验方法1.PCR2.质粒DNA的提取与制备3.质粒DNA的定量（紫外分光光度法）4.质粒DNA的酶切鉴定5.琼脂糖凝胶电泳四、结果与讨论：（一）实验现象1.加入溶

7、液P1，出现悬浮现象；2.加入溶液P2,温和混匀，溶液会变得清亮；3.加入溶液P3,有白色絮状沉淀生成；4.电泳时，可观察到在电流作用下，点样的溶液出现电泳现象，电泳速度不同。在紫外检测仪条件下，可以观察到不同的物质出现不同的电泳带。（二）实验结果原始实验数据测量次数 质粒DNA浓度（ug/ml） Ratio比值(A260/A280)1 1481.46 2 106 1.523 115 1.45平均值 123 1.47电泳后的图片（四）实验分析1.由上数据可知，Ratio=1.47 A260/A2801.8表明样品中含有较多的蛋白质（芳香族）2. 在图片中，其他三类DNA与Maker相比较，可知

8、质粒DNA的分子大小在2500bp-3500bp，酶切反应的质粒DNA片段分子大小在2800-3000bp和400-500左右，PCR的DNA分子大小在400-500bp。基本符合预期。（四）实验讨论1.质粒DNA中出现三条带，分别对应超螺旋质粒DNA、线性DNA和开环状质粒DNA。这三种不同构型的分子有不同的迁移率，在一般情况下，迁移速度最快的为超螺旋型，其次为线性分子，最慢的为开环状分子，所以条带从上到下分别为：超螺旋型DNA、线性分子、开环状分子。,2.对于实验结果中：A260/A2801.8的可能原因为：A.在质粒DNA的提取实验的“取上清液”步骤中吸入沉淀导致引入较多的蛋白杂质，进而

9、导致后续实验中因蛋白质量较多而难以去除。B.可能为试剂污染引起杂质蛋白的引入。3.实验中需注意的事项：用微量加样枪加试剂时，同种试剂可以不用换吸头，每次换不同试剂时要记得换一个新吸头。在PCR中，如果配好的反应液较多沾到管壁上，要将PCR反应管置台式离心机中瞬时离心，使反应液集中于管底，然后才将反应管放到基因扩增仪上。在质粒DNA提取的实验中，加入溶液S2时，时间不能太久，动作要温柔，轻轻颠倒几次。在电泳实验中，点样时枪头下伸，点样孔内不能有气泡。在电泳中，Geldview有毒，切勿用手接触。思考题：（1）碱裂解法提取质粒时，溶液I、II、III的作用分别为？答：溶液I：螯合金属离子，抑制脱氧

10、核酸酶对DNA的降解作用；有利于溶酶体的作用。溶液II：细胞壁肽聚糖在碱性下水解，核酸和蛋白质变性。溶液III：酸性条件下质粒DNA复性，变性蛋白-SDS+线性DNA沉淀，Na+可中和DNA。（2）结合实验情况，如何提高限制性酶切的反应效率？答：尽量选择粘端酶切和那些酶切效率高的限制酶。酶量的选择任何时候2种酶的总量不能超过反应体系的1/10体积，而且最大反应体系最好不要小于20 ul，且酶切反应中甘油浓度应低于5%。底物DNA的纯度：主要污染DNA 的某些物质，如酚、氯仿、乙醇等均能抑制酶反应应尽量纯化底物。反应系统：主要是反应缓冲液中的离子强度,如NaCl和Mg2+, 合适离子强度可以激发酶切反应。时间：2021.03.09创作：欧阳法