测定细菌生长曲线.docx

1、测定细菌生长曲线实验七 测定细菌生长曲线一、实验目的1.了解细菌生长曲线特征，测定细菌繁殖的代时；2.学习液体培养基的配制以及接种方法；3.反复练习无菌操作技术；4.了解不同细菌，不同接种方法在同一培养基上生长速度的不同；5.掌握利用细菌悬液混浊度间接测定细菌生长的方法二、实验原理将一定量的细菌接种在液体培养基内，在一定条件下培养，可观察到细菌的生长繁殖有一定的规律性，如以细菌的活菌数的对数作纵坐标，以培养时间作横坐标，可绘成一条曲线，成为生长曲线（如图一）。 图一 微生物生长曲线示意图单细胞微生物的发酵具有四个阶段，即调整期（延滞期）、对数期（生长旺盛期）、平衡期（稳定期）、死亡期（衰亡期）

2、。生长曲线可表示细菌从开始生长到死亡的全过程的动态。不同的微生物有不同的生长曲线，同一种微生物在不同的培养条件下，其生长曲线也不一样。因此，测定微生物的生长曲线对于了解和掌握微生物的生长规律是很有帮助的。测定微生物生长曲线的方法很多，有血球计数板法、平板菌落计数法、称重法和比浊法等。本实验采用比浊法测定，由于细菌悬液的浓度与混浊度成正比，因此，可利用分光光度计测定细菌悬液的光密度来推知菌液的浓度。将所测得的光密度值（OD600）与其对应的培养时间作图，即可绘出该菌在一定条件下的生长曲线。注意，由于光密度表示的是培养液中的总菌数，包括活菌与死菌，因此所测定的生长曲线的衰亡期不明显。从生长曲线我们

3、可以算出细胞每分裂一次所需要的时间，即代时，以G表示。其计算公式为： 式中t1和t2为所取对数期两点的时间；W1和W2分别为相应时间测得的细胞含量（g/L）或OD。三、实验仪器、材料和用具1.实验材料:大肠杆菌，枯草杆菌菌液及平板；2.培养基:牛肉膏蛋白胨葡萄糖培养基3.实验仪器:取液器(5000ul, 1000ul 各一支);培养箱, 摇床，722s分光光度计；4.实验用具:无菌1000ul吸头80个;无菌5000ul吸头2个;比色皿9个+共用参比杯一个.四、实验步骤1.准备菌种：将细菌接种到牛肉膏蛋白胨葡萄糖三角瓶培养基中，37振荡培养18h，另外准备单菌落平板各1块2.分为三个小组： 第

4、（1）小组取1.0ml大肠杆菌菌液接种到100ml培养基, 37 200rpm取3.0ml大肠杆菌菌液接种到100ml培养基，37 200rpm取5.0ml大肠杆菌菌液接种到100ml培养基，37 200rpm第（2）小组 取一个大肠杆菌菌落接种到100ml培养基， 37 200rpm取1.0ml大肠杆菌菌液接种到100ml培养基，37 110rpm取1.0ml大肠杆菌接种到100ml培养基， 30 200rpm第（3）小组 取1.0ml枯草杆菌接种到100ml培养基， 37 200rpm取1.0ml枯草杆菌接种到100ml培养基， 30 200rpm取1.0ml枯草杆菌接种到100ml培养基

5、， 37 110rpm每培养一小时取样一次(2.5h,3.5h加测1次). 对照组测量起始pH,所有瓶子测量发酵9h结束测pH. 3.测量：选用600nm波长，以蒸馏水作为参比，开始培养前测定每组培养液的OD值作为起始点。开始培养后，每小时吸取测定一次OD值。 五、实验结果及分析1.实验数据：表一 三个小组时间-OD数据开始取样时间10:5512:0112:3913:1713:53结束取样时间9:5511:0112:0912:4713:2313:59发酵时间0122.533.5ODt大肠杆菌单菌落0.0040.0240.0270.0270.0250.03637110rpm-0.0100.049

6、0.1640.2550.3120.32730200rpm-0.0100.0430.0880.1580.2420.3611.0mL0.0100.0700.1580.2660.3720.4363.0mL0.0390.0960.2570.3730.4200.4515.0mL0.0670.1340.3020.3610.3340.456枯草杆菌37200rpm0.0080.0230.0760.1320.1840.25430200rpm0.0130.0320.0520.0880.0910.12537110rpm0.0070.0170.0980.1300.2300.253OD=ODt-OD0大肠杆菌单菌落0

7、.0040.0200.0230.0230.0210.03237110rpm-0.0100.0590.1740.2650.3220.33730200rpm-0.0100.0530.0980.1680.2520.3711.0mL0.0100.0600.1480.2560.3620.4263.0mL0.0390.0570.2180.3340.3810.4125.0mL0.0670.0670.2350.2940.2670.389枯草杆菌37200rpm0.0080.0150.0680.1240.1760.24630200rpm0.0130.0190.0390.0750.0780.11237110rpm

8、0.0070.0100.0910.1230.2230.246开始取样时间14:2915:3516:4317:5018:5719:0720:12结束取样时间14:3515:4316:5017:5719:0920:0721:12发酵时间45678910ODt大肠杆菌单菌落0.0650.2670.3950.4540.45737110rpm0.3330.3400.3420.3600.36230200rpm0.4390.5660.5700.5880.5861.0mL0.4640.4460.4460.4580.4403.0mL0.4870.4700.4570.4830.4585.0mL0.4690.457

9、0.4640.4820.478枯草杆菌37200rpm0.3370.4280.5170.5900.6860.7110.71130200rpm0.1710.2610.3700.5400.6280.6060.65237110rpm0.2950.3020.3050.3050.3520.3520.378OD=ODt-OD0大肠杆菌单菌落0.0610.2630.3910.4500.45337110rpm0.3430.3500.3520.3700.37230200rpm0.4490.5760.5800.5980.5961.0mL0.4540.4360.4360.4480.4303.0mL0.4480.43

10、10.4180.4440.4195.0mL0.4020.3900.3970.4150.411枯草杆菌37200rpm0.3290.4200.5090.5820.6780.7030.70330200rpm0.1580.2480.3570.5270.6150.5930.63937110rpm0.2880.2950.2980.2980.3450.3450.3712.作图、简要分析及代时计算：1）取一个大肠杆菌菌落接种到100ml培养基， 37 200rpm图一 单菌落大肠杆菌生长曲线 这条曲线属于比较标准的“S”形曲线，很容易看出调整期和对数期，由于单菌落菌较少，而且从固体培养基转移至液体培养基环境

11、变化较大，所以出现了长达4小时的调整期，但可以看出，调整期之后这瓶菌都生长良好。计算代时：取培养4小时到5小时之间的数据（对数生长期）来计算代时。由代时计算公式，t2t1=1h W1=0.061 W2=0.263代时 2）取1.0ml大肠杆菌菌液接种到100ml培养基，37 110rpm 图二 大肠杆菌菌生长曲线（取1.0ml大肠杆菌接种到100ml培养基，37 110rpm）接种后几乎没有调整期出现，大肠杆菌很快适应了新的环境并开始呈指数增长，估计是新的培养环境和原有环境较一致，而且在培养最初的时候溶氧和酸碱度都较为适宜，但是这瓶菌是稳定期OD最小的，估计是培养基最初分装不均产生的。计算代时

12、：取培养2小时到2.5小时之间的数据（对数生长期）来计算代时。由代时计算公式，t2t1=0.5h W1=0.174 W2=0.265代时 3）取1.0ml大肠杆菌菌液接种到100ml培养基，30 200rpm图三 大肠杆菌生长曲线（取1.0ml大肠杆菌接种到100ml培养基，30 200rpm）可以看出温度对大肠杆菌适应环境产生了一定的影响，使它在调整期滞留了较长的时间，且在对数期增长较慢，应该是酶活性对细胞复制的影响所致。计算代时：取培养2.5小时到3.5小时之间的数据（对数生长期）来计算代时。由代时计算公式，t2t1=1h W1=0.168 W2=0.371代时 4）取1.0ml大肠杆菌菌

13、液接种到100ml培养基, 37 200rpm图四 大肠杆菌生长曲线（取1.0ml大肠杆菌接种到100ml培养基, 37 200rpm）这是大肠杆菌培养的最适调节，可以看出其生长良好，调整期较短，对数期较长。计算代时：取培养2小时到3小时之间的数据（对数生长期）来计算代时。由代时计算公式，t2t1=1h W1=0.148 W2=0.362代时 5）取3.0ml大肠杆菌菌液接种到100ml培养基，37 200rpm 图五 大肠杆菌生长曲线（取3.0ml大肠杆菌接种到100ml培养基，37 200rpm）接种量的增加没有产生太大的影响，生长曲线没有太大变化。计算代时：取培养2小时到2.5小时之间的

14、数据（对数生长期）来计算代时。由代时计算公式，t2t1=0.5h W1=0.218 W2=0.334代时 6）取5.0ml大肠杆菌菌液接种到100ml培养基，37 200rpm图六 大肠杆菌生长曲线（取5.0ml大肠杆菌菌液接种到100ml培养基，37 200rpm）3小时出现了一次明显的波动，应该是测量过程中没有摇匀的结果，忽略它之后，这条生长曲线属于正常形态，比较前两天生长曲线，发现5mL得到的最大OD反而减小了，说明在一定量的培养基下，初始接种量对最后结果影响不大。最大OD应该是受到了最初添加培养基的影响。计算代时：取培养1小时到2小时之间的数据（对数生长期）来计算代时。由代时计算公式，

15、t2t1=1h W1=0.067 W2=0.235代时 7）取1.0ml枯草杆菌接种到100ml培养基， 37 200rpm图七 枯草杆菌生长曲线（取1.0ml枯草杆菌接种到100ml培养基， 37 200rpm）枯草杆菌的生长曲线包含了调整期、对数期和很小一部分稳定期，虽然稳定期很短，但是已经可以看出停止生长的趋势，说明枯草杆菌的代时较长。计算代时：取培养3小时到4小时之间的数据（对数生长期）来计算代时。由代时计算公式，t2t1=1h W1=0.176 W2=0.246代时 8）取1.0ml枯草杆菌接种到100ml培养基， 30 200rpm图八 枯草杆菌生长曲线（取1.0ml枯草杆菌接种到

16、100ml培养基， 30 200rpm）温度降低后，生长变得缓慢了，最后达到的最大OD也更小了，代时加长。计算代时：取培养4小时到5小时之间的数据（对数生长期）来计算代时。由代时计算公式，t2t1=1h W1=0.158 W2=0.248代时 9）取1.0ml枯草杆菌接种到100ml培养基， 37 110rpm图九 枯草杆菌生长曲线（取1.0ml枯草杆菌接种到100ml培养基， 37 110rpm）4小时时，似乎由对数期进入了稳定期，但是对比前两组数据，此时的OD值明显偏小，所以分析，可能此时突然有外因影响，使细胞进入了调整期，可以看到后来7、8小时左右细菌又有增长趋势。计算代时：取培养2.5

17、小时到3小时之间的数据（对数生长期）来计算代时。由代时计算公式，t2t1=1h W1=0.123 W2=0.223代时 3.发酵结束pH对照组pH=7.5实验结束后所有瓶pH均小于6.4pH全部降低，说明大肠杆菌和枯草杆菌发酵均产生了酸。4.分析表二 不同环境和菌种生长比较培养菌接种量培养温度/ 摇床转速/rpm生长曲线状态代时/min调整期/h对数期/h稳定期OD(取8小时OD）大肠杆菌单菌落37200430.45328.5 1.0mL37110130.37249.4 1.0mL30200230.59652.5 1.0mL37200130.43046.5 3.0mL37200120.4194

18、8.7 5.0mL37200120.41133.1 枯草杆菌1.0mL37200260.67866.5 30200350.61592.2 37110130.34534.9 1）接种量对微生物的影响：预期：接种量大，调整期缩短，对数期增长，稳定期OD增大，代时缩短。原因：接种量大的细胞基数大，因而更快适应环境。实际：调整期影响不大，对数期稍有缩短，稳定期OD减小，代时规律不明显。分析：生长曲线受各种因素调节，这里实验结果不同于预期应该是受到培养基的限制，接种量大对氧气和原料需求更多，而且产生酸的速度也快，也许对后来的细胞生长造成了一定的影响。2）培养温度对微生物的影响预期：最适温度下细胞生长应该

19、最快，调整期最短，稳定期OD最大，代时最短原因：温度影响细菌内酶活力和细胞膜的通透性，进而影响新陈代谢，从而影响细菌的生长繁殖。最适温度下，细菌酶活性最强，因而能最快适应环境，并取得生长增殖的最高效率。实际：大肠杆菌37稳定期OD最大，调整期更短，但代时更长。枯草杆菌37调整期更短，对数期更长，稳定期OD更大，代时更短。分析：大肠杆菌代时的问题应该来自实验误差，如取样未摇匀、计算时取点不够准确，或实验过程中某些操作导致生长和理论不一致。3）摇床转速对微生物的影响预期：转速高，调整期短，对数期长，稳定期OD大，代时短原因：转速影响溶氧，溶氧高，生长情况应该越好实际：大肠杆菌与预期符合；枯草杆菌转

20、速快的调整期长，代时长。分析：原因可能有两点，一是枯草杆菌在溶氧高的环境下生长没有那么好，说明它是微好氧生物，但这与实际不符；二是其他条件限制，虽然说两个培养瓶进行对照要求其他条件一致，但是由于培养基分配及其其他各种原因，其他条件可能并不一致而且还产生了比对照条件还要大的影响。4）生长曲线分析两个菌的生长曲线都包括了调整期、对数期和稳定期，实验没有进行到衰亡期因为而没有观察到后来的OD值下降。5）大肠杆菌和枯草杆菌比较大肠杆菌：代时要短一些，温度对代时的影响比溶氧对代时的影响要大，估计是因为溶液中细胞不多，所以溶氧的限制作用没有温度明显。枯草杆菌：代时较长，溶氧比温度对代时的影响要大，但这也可

21、能是实验操作中其他因素影响而得出的表观结果。六、实验小结这是一个大组合作、小组分工的实验，每一组的结果都影响了整个大组队结果的分析，这就要求我们的合作。和暑期实验不同，这次实验在时间上缩短了，但是在内容上却增多了，由于有很多组的平行比较，所以得到的信息量也相应加大，这些信息中又包含了这种各样的误差，所以要求我们自己在处理别人的实验结果中也加入自己的分析。总的来说，这是个很有意思也很有意义的实验。七、思考1.计算出大肠杆菌和枯草芽孢杆菌在牛肉膏蛋白胨葡萄糖培养基中对数生长期中的代时(min)（繁殖一代的时间），为什么比理论时间长好多？代时见表二。经查资料得：大肠杆菌理论代时为37度时18分钟，而

22、枯草杆菌一般是给30度下的理论代时为31分钟，实验测得代时长于理论值的原因： 理论代时是在理想的培养条件下测得，糖分、氧气等营养物质供应充足，细菌生长状况良好，之前的分裂次数较少。实际实验条件与理论值条件存在差距。如培养过程中不补料，营养物质有限。单纯的振荡不能保证体系中有足够的溶氧。对培养液的pH值，氧化还原电势也未加控制，测量过程中温度不能保持稳定等等。2.为什么可用比浊法来表示细菌的相对生长状况？培养液的浑浊度与细菌的浓度与成正比，可以利用分光光度计测定细菌浊液的光密度来推知菌液的浓度。浊度的变化代表体系细菌数量的变化。其原理是：一个细胞悬浮液用肉眼观察是呈现混浊的，这是因为光线通过悬浮

23、液是，细胞散射光线。存在的细胞数越多，分散的光线就越多，因此悬浮液浊度就越大。通过分光光度计可以检出没有被细胞散射的光线。对于大肠杆菌和枯草杆菌，从理论上OD值与细胞总量成正比。可以制备将细胞数目与浊度联系起来的标准曲线。3.生长曲线中为什么会有稳定期和衰退期？当细胞的繁殖速度达到高峰时，其细胞总数就不会再增加，这是由于调整期、对数生长期两阶段糖类营养物质的消耗，代谢产物乙醇的积累及培养基的pH值、氧化还原电势的改变，对细胞产生了较大的抑制性。当死亡细胞数和繁殖细胞数接近稳定时，就出现稳定期，细胞总数处于稳定状态。进入稳定期后，如果继续培养，由于营养物质（如糖类和氧气）的进一步消耗，代谢物的进

24、一步积累，溶液进一步酸化，导致细胞死亡的速率提高。当细胞死亡数超过繁殖数时，活细胞总数不再稳定，生长曲线进入衰退期。4.什么条件下接种为宜？液体种子比固体种子有什么优越性？接种时以分裂次数少、生长状况良好的种子为宜。液体种子较之固体种子，迟滞期略短，对数生长期较长，代时略短，较晚进入死亡期。因为从固体中接种到培养液后，细菌需要合成新的RNA、核糖体、酶等才能适应新的生长条件，需要更长的时间适应。5.根据实验结果，谈谈在工业上如何缩短发酵时间？（1）保证充分的营养供应，根据细菌的特性如果是需氧的要保证充足的氧气供应，维持最适宜的温度和pH值，尽快排出代谢废物，随时观察随时监控，这样可以保证细菌的高速生长。（2）在保证营养的前提下，可以扩大接种量，这样可以缩短调整期。（3）选取合适的培养基、尽量是与种子生长性质相同或者相近的培养基，选取合适菌龄的种子。八、参考文献陈金春、陈国强编著，微生物学实验，北京，2005。