绿色荧光蛋白GFP原核表达分析Word文档下载推荐.docx

1、1 前言1.1 实验目的掌握聚合酶链式反应（PCR）的原理和操作方法；了解重组载体的构建方法；锻炼学生查阅文献资料、设计与优化实验的能力；加强学生对化学生物学中常用研究方法的认知。1.2 实验背景 绿色荧光蛋白（green fluorescent protein GFP） 是源于多管水母属等海洋无脊椎动物的发光蛋白，其在蓝光或紫外光下可发出明亮的绿色荧光，可以作为报告基因检测蛋白的特异性表达或进行细胞定位研究。与以往lacZ、CAT 等报告基因相比，有很多无可比拟的优越性: GFP 不具有种属依赖性，在多种原核和真核生物细胞中都表达；荧光强度高，稳定性高；不需要反应底物与其他辅助因子，受蓝光激

2、发产生绿色荧光,尤其适用于体内的即时检测；另外GFP 分子量小，易于融合，适用于多种转化方式，对受体无毒害,安全可靠；并且通过替换一些特殊氨基酸，可以使之产生不同颜色的光，从而适应不同的研究需要。正是由于GFP 检测具有高灵敏度，操作简单，无需使用同位素等优点，近年来广泛用于基因的表达与调控、蛋白质的定位、转移以及相互作用、信号传递、转染与转化，以及细胞的分离与纯化等研究领域。绿色荧光蛋白还在监测目的基因表达、研究细胞内物质代谢及追踪细胞系的分化等方面有着广泛应用。采用GFP作为标记基因，可直接收集转化细胞供实验，缩短了筛选时间、减少对细胞活性的影响并可作为活体标记，为研究发育的基因调控和分子

3、机制提供了一种简洁有效的手段。同时也正因为其荧光反应不是酶反应，所以当细胞本身还存在一些可以受蓝光激发和产生绿色荧光的物质，或者GFP表达频率不高的情况下，GFP的检测可能会产生一些假相，不易对荧光进行定量的测定。我们利用基因工程手段在大肠杆菌中高效的表达了GFP，制备出GFP抗体，利用抗原与抗体之间的特异性，在体外对GFP进行检测，可在一定程度上弥补上述GFP检测中可能出现的问题，可以作为一种重要的辅助手段用以提高GFP检测的灵敏度和准确度。原核表达是将克隆基因插入合适载体后导入大肠杆菌，用于表达大量蛋白质的方法。选用原核表达系统的原因是易于生长和控制、用于细菌培养的材料不及哺乳动物细胞培养

4、的材料昂贵、有各种各样的大肠杆菌菌株及与之匹配的具各种特性的质粒可供选择。但是在大肠杆菌中表达的蛋白由于缺少修饰和糖基化、磷酸化等翻译后加工，常形成包涵体而影响表达蛋白的生物学活性及构象。包涵体是在某些生长条件下，大肠杆菌能积累某种特殊的生物大分子，它们致密地集聚在细胞内，形成被膜包裹的结构，具有水不溶性的特点。本实验主要是通过SDS-PAGE来检测绿色荧光的原核表达情况。1.3 流程图：2材料与方法2.1材料2.1.1实验材料 质粒DNA;PCR产物、酶切质粒、DNA Marker;外源DNA片段：PCR扩增回收目的片段A和PGM-Tvector（Amp,lacZ）,带限制性内切酶末端的DN

5、A溶液（目的片段A和载体片段pBL）;E.coli DH-5受体菌（R-M-），自提的质粒或重组子;重组质粒DNA的菌落、BL21;重组GFP质粒、标准蛋白。2.1.2实验仪器 PCR仪、PCR管、移液枪、离心机、电泳仪、涡旋振荡器、冰箱、透射仪、紫外透射仪、刀片、台式高速离心机、恒温水浴锅、微量移液枪、Eppendorf管、高压灭菌锅、超净工作台、制冰机、振荡培养箱、移液器、摇床、酒精灯、培养皿、接种环、酒精棉球、灭菌枪头、分光光度计。2.1.3实验试剂模板DNA、dNTP、TaqDNA聚合酶、引物、Buffer（内含Mg2+）、ddH2O、pGM-T载体、T4DNA连接酶、限制性内切酶、D

6、NA回收试剂盒、质粒小提试剂盒，其它生化试剂皆为国产分析纯。2.2实验方法2.2.1 PCR扩增目的基因片段（1）依次混匀下列试剂，反应体系如下：PCR反应体系各成分的量ddH2O 9.5 l上游引物 1.0 l下游引物模板DNATaqDNA聚合酶12.5 lTotal 25 l 混匀后瞬时离心（2）将PCR管放入PCR仪中，设定PCR仪的循环参数。预变性94 3 min，变性94 30s，退火52 30s，延伸72 40s 30个循环。总延伸72 4 min； 温度 时间预变性943min变性9430S退火52延伸7240S总延伸72240S（3）PCR扩增完毕后，取出PCR管放在冰盒上；（

7、4）取5l扩增后产物，进行琼脂糖电泳检测。2.2.2目的基因片段的琼脂糖凝胶电泳检测（1）加20ml 1TAE缓冲液于三角瓶中；（2）精确称取0.2g琼脂糖加到三角瓶中，于微波炉中加热至完全熔化；（3）冷却至60左右，加1l的Goldview溶液，摇匀；（4）轻缓倒入封好两端和加上梳子的电泳胶板中，静置冷却30分钟以上；（5）轻轻拔除梳子，将胶放入电泳槽中，加入电泳缓冲液（TAE），使电泳缓冲液刚好没过凝胶约1mm；（6）取5l质粒DNA及2l加样缓冲液混匀上样；（7）110v约电泳0.51小时；（8）紫外透射仪观察结果。2.2.3 DNA的回收和纯化回收PCR产物（采用天根时代DNA回收试剂

8、盒）:（1）用干净的刀片将需要的DNA条带从凝胶上切下来，分别放入1.5ml离心管中；（2）以0.1g凝胶对应300l的体积加入PN;（3）50水浴放置10min，期间不断温和上下翻动离心管至胶完全溶解；（4）将上述的得到的溶液加入到一个吸附柱中，吸附柱再放入收集管，12000rpm离心60s，弃掉废液；（5）加入700l漂洗液PW，12000rpm离心30s，弃掉废液；（6）加入500l漂洗液PW，12000rpm离心30s，弃掉废液；（7）将离心吸附柱放回收集管，12000rpm离心2min；（8）取出吸附柱，放入一个干净的离心管中，在吸附膜的中间位置加入适当的洗脱缓冲液EB 30l，洗脱

9、缓冲液先在65水浴预热，冷却至室温，12000rpm离心1min，然后将离心的溶液重新加回离心吸附柱中，12000rpm离心1min；（9）电泳检测回收产物，余置于-20下保存。透射仪观察结果，并拍照。2.2.4重组质粒的连接 把PCR扩增的目的基因片段产物与pGM-T载体连接，反应体系如下：2.2.5大肠杆菌感受态细胞的制备大肠杆菌感受态细胞的制备采用CaCl2法。（1）将实验室保存的E.coli DH-5菌株甘油管用无菌去离子水1:100稀释后，平板划线法接种在无抗生素的LB固体培养基上，37培养过夜，见有菌落长出，用接种环从平板上挑取一个单菌落，接种到20ml无抗生素的新鲜LB液体培养基

10、中，37、200rpm震荡培养过夜，活化E.coli DH-5菌株；（2）按照1%接种量，从上述培养液中吸取菌液2ml，转瓶接入200ml新鲜的无抗生素的LB液体培养基中，37,200rpm震荡培养至OD600值为0.5左右；（3）在已灭菌的10ml离心管中吸取上述培养液10ml，冰水浴10min后，4、6000rpm离心2min，收集菌体，弃上清；（4）加2ml冰冷预热的0.1mol/LCacl2溶液，重悬菌体，冰浴10min，4、6000rpm离心2min，收集菌体，弃上清；（5）将每一份沉淀轻缓地悬于0.41ml含有20%甘油的0.1mol/L Cacl2的溶液中，轻轻重悬菌体沉淀，冰上

11、放置10分钟；（6）分装100L/管（冰浴分装），置于-70冰箱中保存。2.2.6连接产物转化感受态细胞（1）转化用固体LB培养基平板制备：向含100g/ml氨苄青霉素（AMP）的固体LB培养基平板上加50mg/ml的IPTG16l和20mg/ml的X-gal 40L，用灭菌弯头玻璃棒涂布均匀，37避光倒置3h，让溶解X-gal的二甲基甲酰胺尽量挥发干净。加入ITPG和X-gal的转化用平板应避光保存，以防试剂见光分解。（2）连接产物转化E.coli DH-5感受态细胞：取5l连接产物加到100l E.coli DH-5感受态细胞中。轻弹混匀，水浴20min。取出离心管，42 水浴中热激90

12、后，立即置冰浴中冷却5min。向离心管中加入800L 37预热的无抗生素的LB液体培养基。取出离心管，12000rpm离心2min，弃上清800L，用剩余的约100L上清将沉淀菌体吸打混匀后，在LB平板上涂布ITPG和X-gal。将平板倒置在37恒温箱中培养14h18h，直至长出菌落，观察结果。2.2.7重组质粒的菌落鉴定本次实验所用的pGM-T vector 含Ampr、lacZ基因，所以有重组质粒的菌落为白色，没有重组质粒的菌落为蓝色。具体操作如下：挑取菌落：使用无菌枪头随即挑取5个白色菌落，放入含氨苄青霉素的LB液体培养基的1.5ml EP管，振荡培养4h以上，吸取0.5ul菌液作为PC

13、R反应模板，其余继续培养。PCR反应体系与反应程序均与目的基因扩增条件一致。扩增产物取5ul用1%琼脂糖凝胶进行检测。2.2.8提取重组质粒 将鉴定为阳性重组子的质粒EP管挑取出来，按照实验室提取质粒的试剂盒说明书操作。提取后，取5ul用1%琼脂糖凝胶进行检测。2.2.9重组质粒双酶切用限制性内切核酸酶BamH和Sal对PCR阳性菌落提取的质粒做双酶切鉴定。酶切反应体系如下表。体系成分体积质粒5.0ul去离子水11ul10Buffer T3.0ulBamH（120U/ul）0.5ulSal（100U/ul）总体积20ul37酶切过夜，70灭活酶活性。1%琼脂糖凝胶进行检测。2.2.10 GFP

14、基因重组表达质粒及诱导表达（1）将上步经酶切鉴定得到的GFP目的片段与表达质粒连接，并转化至大肠杆菌BL21菌株。转化菌涂布于含有卡那霉素的LB琼脂平板上，37过夜培养；（2）观察菌落生长情况，进行菌落PCR鉴定；（3）将鉴定为阳性的菌落接种于20ml含50mg/L卡那霉素的LB培养基中，37摇菌培养过夜。（4）按1:100稀释过夜菌，接种于100ml含有卡那霉素的LB培养基中，37摇菌继续培养至A600约为0.4-0.8。（5）取部分液体作为未诱导的对照组，余下的加入IPTG诱导剂至终浓度为1mmol/L，于37诱导表达。每隔1h分别取菌体1ml，离心12000g，30s得到沉淀，观察蛋白表

15、达情况。2.2.11 SDS-PAGE检测诱导表达的蛋白（1）取未诱导、诱导不同时间的培养物500ul于微量离心管中，室温高速离心1min。沉淀悬浮于100ul 1SDS凝胶加样缓冲液中，100加热3min，室温高速离心1min后，冰上放置。（2）安装电泳装置，配制12%分离胶倒入凝胶槽，加蒸馏水密封。待凝固后再倒入5%浓缩胶，插上梳子。待凝固后，拔出梳子，放入电泳槽中，上样，电泳。（3）电泳结束后，将凝胶浸泡在染色液中，室温在摇床上缓慢染色4h。（4）脱染：将染液回收，凝胶先用蒸馏水漂洗一次后侵入脱染液中脱染，更换几次脱色液，直至出现清晰的电泳带。（5）脱色后，将凝胶保存在水中或是含20%甘

16、油的水中；（6）观察实验结果。3 结果与分析3.1 PCR扩增目的基因片段的琼脂糖凝胶电泳检测M为Marker ，1-4为PCR扩增产物，产物长度约为750 bp，由于实验疏忽不严谨，条带不明显且不明确。3.2 DNA回收电泳检测 由于操作不当，DNA片段分解了，没有回收到电泳条带。3.3连接产物转化后的蓝白斑筛选将目的基因片段与pMD18-T载体连接，并转化大肠杆菌E.coli DH5菌株感受态，37，培养16h以后得到蓝白斑的菌落，白色菌落即有可能为含重组子的菌落（如下图）。 箭头所指处为蓝色菌落3.4外源基因诱导表达用IPTG诱导表达后呈现绿色，说明含外源基因GFP的质粒在大肠杆菌体内成

17、功表达。绿色荧光的亮度增加说明随着诱导时间的增加，GFP基因表达量增加，而没有经IPTG诱导的菌体则不发出绿色荧光（如下图）。3.5 GFP原核不同条件的诱导表达和检测将诱导表达的蛋白处理后进行SDS-PAGE检测,确定其分子量大小。可以看到，诱导时间不同蛋白表达量不同，条带颜色不一样。由于实验疏忽，电泳条带不明显到时实验失败。电泳带淡有三种可能原因：（1）电泳时，点样后等待时间过长，导致点样液扩散。（2）目的质粒浓度低。（3）机器曝光时间不对。在实验过程中，等待点样时间较长，原因1有可能。在电泳带底部见模糊阴影，可能有杂DNA污染。我们并非在无菌的条件下做实验，电泳口也可能有杂质，PCR时也

18、可能载体自连产生假阳性，这些情况都可能造成目的质粒浓度低。其他组的电泳结果也不是很亮，所以还可以调整曝光时间试试。4 心得体会本实验涉及知识面广，需要综合利用分子生物学、化学生物学、基因工程和微生物学中的基础理论知识和技术，有利于学生对几个学科间知识的融会贯通。实验中涉及步骤较多，需要12周时间才能完成，因此较适合作为高年级学生的综合实验。本实验对实验者的实验技能要求较高，实验过程中应用到一系列基本操作方法，需使用多种实验仪器，可以综合锻炼学生的实验技能。在实验教学过程中，教师要注意加强引导，实施开放式教学，给学生创建一个独立工作的环境。同时学生也可通过查阅文献，对给定的实验步骤进行优化，有利

19、于开阔学生的视野，培养学生解决问题、分析问题的能力。绿色荧光蛋白是现代化学生物学中常用的一种分子成像标记物，被广泛应用于科学研究中。由于绿色荧光蛋白在紫外光激发下可以发出明亮的、肉眼可见的绿色荧光，有利于激发学生的实验热情，提高学生学习化学生物学的兴趣。由于本实验使用可进行亲和纯化的表达载体，因此也可以进行后续的蛋白质纯化及蛋白质电泳实验。参考文献1 薛启汉. 绿色荧光蛋白（GFP）的特性及其在分子生物学研究中的应用J. 江苏农业学报，1999，01:54-60.2 唐孝青，李斌，伍小兵，张亮. 绿色荧光蛋白及其应用的研究进展J. 陕西农业科学，2007，01:123-124+145.3 Ka

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21、丙烯酰胺凝胶电泳常见问题分析与预防措施J. 种子科技，2003，02:43-44.6 胡晓倩，陈来同，赵健. SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳染色方法J. 中国生化药物杂志，2011，128-130.7 胡承香，张玉纯，李磊，顾长国. SDS聚丙烯酰胺凝胶电泳技术的改良及其应用J. 第三军医大学学报，1996，01:68-70.8 霍海龙，赵跃，王锐，侯慧芳，李卫真，张永云，刘丽仙，王配，霍金龙. 绿色荧光蛋白基因原核表达质粒pET32a-AcGFP1的构建及其在大肠杆菌中的高效表达J. 云南农业大学学报（自然科学），2012，06:820-825.9 王艺霖，赵丽伟，李昆志. 拟南芥Dof1基因原核表达载体的构建及应用J. 西北农林科技大学学报（自然科学版），2013，02:195-202.10 赵静，丁丽华，仇玮祎，牛畅，陈力权，甘纯玑，叶棋浓. GST-His双标签原核表达载体的构建及应用J. 生物技术通讯，2009，04:520-522.