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细胞外miRNA的发现来源及其生物学功能综述病理学论文基础医学论文医学论文Word格式.docx

1、 miRNA 是一类长度为 18 22 个核苷酸的非蛋白编码的单链小分子 RNA,广泛存在于真菌、细菌、病毒、植物、哺乳动物等生物体内.miRNA 通过调控基因的表达参与细胞的早期发育、细胞增殖、细胞代谢、细胞凋亡等重要的生命过程.近几年,多种生物体液中发现了能稳定存在的 miRNA.血浆、尿液或其他体液中细胞外 miRNA 的异常表达与包括肿瘤在内许多种疾病有着密切关系.然而,目前有关miRNA 进入体液的具体分子机制尚不清楚.本文仅就细胞外 miRNA 的发现、来源及其生物学功能方面做一综述. 一、细胞外 miRNA 的发现 最早发现在生物体液中存在 miRNA 的是 Chim及其研究团队

2、.2008 年,Chim 等1在研究中发现,孕期女性的血浆中有来自胎盘的 miRNA,确认了孕体血浆中 157 种 miRNA,其中 17 种 miRNA 在血浆中的浓度是孕妇外周血细胞的 10 倍以上并且在产后孕妇血浆中无法检测到.同年,Lawrie 等2在弥散性 B 细胞淋巴瘤患者的血浆中检出 miR-155、miR-210 和 miR-21a 这三种肿瘤相关的 miRNA 表达水平比正常对照组有升高,并据此提出将循环 miR-NA 作为疾病甚至肿瘤诊断标志物的设想.随后,Weber 等3在血浆、唾液、泪液、尿液、羊膜液、初乳、乳汁、支气管液、脑脊液、腹膜液、胸膜液、精液共 12种正常人体

3、液中检测 miRNA 的存在,结果显示miRNA 在以上 12 种体液中都得以检出,说明 miR-NA 存在于人体多种体液之中.Zhang 等4以身体健康的中国人( 主食为稻米) 为研究对象在其血清与血浆中检测到了外源性的植物 miRNA,同时在其他动物的血清中也检测到了植物 miRNA. 二、细胞外 miRNA 的来源与运送途径在生物体内的过程 ( 一) 细胞外 miRNA 的来源 血细胞与血浆完全接触,即使很小的血细胞数的变动或者细胞溶血的发生都会改变血浆 miRNA 的水平,许多被认为可以作为肿瘤标志物的循环 miRNA 在血细胞中的呈现高表达,因此,可以将血细胞认为是血浆中细胞外miR

4、NA 的主要来源5.然而,最近一项研究将AGO1 和 AGO2( Argonaute) 相关的血浆 miRNA 与全血细胞 miRNA 进行对比分析,结果显示在正常情况下血浆 miRNA 也可以来自其他组织器官6.某些组织特异性的 miRNA,如 miR-122( 肝脏) 、miR-133a( 肌肉) 、miR-208a( 心脏) 以及 miR-124( 脑) 都已经在血浆中被检出. 肿瘤也能向血液中释放 miRNA.在肿瘤的不同阶段都可以在血液循环中发现多种肿瘤组织特异性 miRNA.并且肿瘤向其他细胞一样可以分泌包含 miRNA 的微囊泡( microvesicles,MVs) .Mitc

5、hell等7将人前列腺癌细胞种植在小鼠体内,发现来自于人前列腺癌的异种移植物可进入种植小鼠的体内循环,证实了体液中的 miRNA 不仅来源于宿主细胞( 小鼠) ,还有一部分是由肿瘤细胞分泌. Zhang 等4研究发现人工喂以稻米、小麦、马铃薯等植物的小鼠在喂食后血清中植物 miR-168a 至少是喂食前的 3 倍,并且在肝脏、胃肠等脏器中发现该 miRNA 水平皆有明显增高,而在肾脏等其他器官中并未检测到此种变化,说明植物 miRNA 通过哺乳动物的摄食行为进入机体内部,通过胃肠道进入血液,这是目前发现的唯一的外源性植物 miRNA 进入机体的方式,也是细胞外 miRNA 的来源之一. ( 二

6、) 细胞外 miRNA 的稳定性 研究者将核糖核酸酶加入新鲜人血清后检测 miRNA 的量并不会减少,说明血浆 miRNA 可在富核糖核酸酶的环境中较为稳定地存在.向血清中加入外源性成熟 miR-NA 则发现外源性 miRNA 在核糖核酸酶的作用下迅速降解.而在加有核糖核酸酶抑制剂的血清中外源性 miRNA 则不会降解.这也揭示了 miRNA 本身并不具有对核糖核酸酶的抗性,为研究者进一步探索miRNA 在体液中的存在形式提供了思路. ( 三) 细胞外 miRNA 在生物体内的运送过程在体液中发现 miRNA 之前,研究人员在细胞培养基中已经发现释放到细胞外的胞外体( exosome) 中含有

7、 miRNA.机体中的 miRNA 可以通过囊化进入MVs 从而到达细胞外.而后,Hunter 等人在提纯的人外周血 MVs 中检测出了 miRNA,进一步证实了膜-囊泡结构保护 miRNA 的假设8.Gibbing 等9研究发现 miRNA 包裹入胞外体可能不是一个随机 ,而是由特异性蛋白控制的; RNA 导的沉默复合体中的一个组分 GW182 在胞外体中表达极其丰富.而 GW182 是 miRNA 与 Ago2 相互作用发挥功能所必须的.胞外体被包裹进入 MVB 与神经酰胺有关.胞外体中含有大量的鞘磷脂及神经酰胺,而神经酰胺的合成受到中性鞘磷脂酶 2 ( neutralsphingomye

8、linase 2,nSMase2 ) 的控制.另有研究表明含有 miRNA 的胞外体进入 MVs,并由神经酰胺触发释放到细胞外.过表达 nSMase2 可以增加细胞外miRNA 的分泌,而使用特异性小干扰 RNA 或化学物质抑制 nSMase2 的酶活性则明显降低 miRNA 的分泌水平( Kosaka 等. 2010) .然而,Galas 等10研究显示 MVs 包裹并不是 miRNA 进入细胞外的唯一途径.在人工培养细胞的培养液中收集的 miRNA 大多数并不是来自于脱落囊泡和胞外体.同年,两篇研究性文章各自证实了大部分细胞外 miRNA 不仅和膜-囊泡结构无关而且 AGO 蛋白有关.在去

9、除细胞碎片的血浆中只有很小一部分的 miRNA 与 MVs相关,90% 95% 的 miRNA 是以和 AGO 蛋白结合的形式存在( Arroyo 等. 2011) .正常条件下人工培养的细胞所分泌的 miRNA 99% 左右与膜囊并无关系,而是同 AGO 蛋白结合( Turchinovich 等. 2011) .外源性 miRNA 由于其发现尚存在较大争议,目前也没有更多研究阐述其在生物体内的详细的转运过程.miRNA 进入受体细胞的方式仍不清楚,目前认为 MVs 可由内吞、内化等方式被受体细胞接受,而由 MVs 包裹的 miRNA 很可能借由这些过程进入受体细胞. 三、细胞外 miRNA

10、的生物学作用 ( 一) 内源性细胞外 miRNA 的生物学作用 1. 胞外体介导的细胞间通讯: Zhang 等11研究发现 MVs 中的 miRNA 由循环进入靶细胞作为内源性 miRNA 调节多种靶基因或者信号 .用人微血管内皮细胞系( HMEC-1) 作为受体细胞,含有来源于 THP-1 细胞 FITC 标记的 miR-150 的 MVs 能够进入 HMEC-1 细胞,miR-150 表达水平明显升高. 这一结果表明 miRNA 可以通过 MVs 传递到远处靶细胞.miRNA-150 过表达后,293T 细胞的培养上清中的 MVs 能使 HMEC-1 细胞中 c-Myb 蛋白的表达明显降低

11、,HMEC-1 细胞的迁移能力增加.沉默THP-1 细胞内 miR-150 的表达,则发现缺乏 miR-150的 MVs 并不影响 HMEC-1 细胞中的 c-Myb 蛋白表达及 HMEC-1 细胞的迁移能力.采用 Dil-C16 标记THP-1 细胞来源的 MVs 经尾静脉注射给 C57BL /6小鼠,血管内皮层中 miR-150 表达水平明显升高. 动脉粥样硬化患者血浆中分离出的 MVs 中 miR-150水平较正常人升高,而这种患者的 MVs 可以使HMEC-1 细胞中 c-Myb 蛋白的表达明显降低,促进HMEC-1 细胞的迁移.这些结果表明病理状态下MV 中携带的分泌性 miRNA

12、可以到达受体细胞和组织发挥功能. Pegtel 等12研究发现胞外体 miRNA 可以促进病毒感染.用 EB 病毒转化来源于 B 淋巴样干细胞的胞外体,通过体外共同培养实验病毒 miRNA 通过分泌的胞外体传递到未感染的细胞,并使 EVB-miR-NA 的靶基因 CXCL 的表达呈现出剂量依赖性抑制. 进一步对 EB 病毒负荷增加的人群的外周血进行分析发现,EB 病毒 DNA 仅存在于循环 B 细胞中,而EB 病毒 miRNA 却在 B 细胞及非 B 细胞同时出现,这也提示了循环 miRNA 可以进行细胞间的传递.Mittelbrunn 等13研究发现胞外体 miRNA 也参与免疫应答的调控.

13、J77 T 细胞、Raji B 细胞及原代的树突状细胞分泌的胞外体中含有 miRNA,经抗原刺激可以 导免疫突触的形成,促进 miRNA 从 T 细胞向抗原递呈细胞( antigen presenting cell,APC) 的单向性转移.而 miRNA-335 可以抑制 APC 中 SOX4mRNA 的翻译,进一步证实了转移到 APC 中的 miR-NA 在受体细胞中是有生物学功能的,揭示了由胞外体介导的抗原驱动的单向性细胞间 miRNA 的转移机制,而 miRNA 这种在免疫细胞之间的转移则可能会在免疫细胞之间信号传递,甚至在在免疫反应中调节基因表达. 此外,研究表明在体外 miR-133

14、b 可以通过胞外体由间充质干细胞转移到星形胶质细胞和神经细胞.肿瘤细胞分泌的 miRNA 可能会影响周围正常细胞的表达谱,从而影响肿瘤进展,但尚未在体内试验进行验证. 2. 特异的循环 miRNA 表达谱可作为肿瘤及其他疾病的新型生物标记物: 已有研究报道某些生理病理条件下可能会得到较为独特的循环 miRNA 谱.由于细胞外 miRNA 可在血浆、血清中稳定存在,可考虑以不同血清 miRNA 作为不同疾病的标记物.Chen 等14将 11 个非小细胞肺癌患者( non-smallcell lung cancer,NSCLC) 的血清进行汇集测序,并与正常人的血清 miRNA 进行对比,发现 N

15、SCLC 患者的血清出现 63 种不存在于比正常人血清中的 miR-NA,而 28 种正常人血清 miRNA 也未能在 NSCLC 患者的血清中检出.NSCLC 患者的血清 miRNA 表达谱同时与血细胞 miRNA 表达谱进行比较,发现两者共有的 miRNA 有 57 种.而 76 种 miRNA 仅在NSCLC 患者的血清中检出,这一结果同正常人血清miRNA 与血细胞 miRNA 表达谱的比较结果差异较大.他们进一步对结肠癌和糖尿病患者的血清miRNA 进行了测序,发现在结肠癌患者血清中发现了 69 种正常血清中为检测到的 miRNA,值得注意的是许多 miRNA,如 mi-134、mi

16、-221 等在肺癌和结肠癌患者血清中都有发现,并且不存于正常人血清中,这一结果提示血清中可能存在某些肿瘤相关miRNA. ( 二) 外源性细胞外 miRNA 的生物学作用Zhang 等4发现外源性的植物 miR-168a 可以被小鼠消化道吸收,进入血循环及胃、小肠、肝脏等多种脏器,与靶基因低密度脂蛋白受体衔接蛋白 1( low-density lipoprotein receptor adapter protein 1,LDLRAP1) 结合,从而抑制其在肝脏中的表达,减缓低密度脂蛋白从血浆中的清除.在人类小肠上皮细胞 Caco-2 中高表达 miR168a,并用 Caco-2 的 MV 处理

17、 HepG2,结果发现 HepG2 细胞中 miR-168a 水平也有升高,而 LDLRAP1 的蛋白水平降低.这一研究结果表明外源性植物 miRNA 可以通过哺乳动物的摄食行为进入其体内,调控靶基因表达从而影响摄食者的生理功能. 四、结语与展望 目前研究已经证实细胞外 miRNA 能够在血清中稳定存在,并且广泛存在于人体 12 种体液中.细胞外 miRNA 由体内细胞分泌或通过摄食行为由胃肠道吸收,进入循环中,被靶细胞摄取,调节靶基因或信号 ,起到了细胞间的通信作用.然而,还有许多关于细胞外 miRNA 的问题需要进行进一步的研究: miRNA 是否由细胞选择性分泌,具体是如何进行分拣进入微

18、囊泡中或与 AGO 等蛋白结合? 循环 miRNA 如何被靶细胞识别并摄取? 什么机制触发了 miRNA 由远端部位的释放? 此外,研究 miR-NA 的终极目标在于对人类疾病的预测、预后以及治疗上的价值.尽管目前这一研究领域仍处于探索阶段,但相信其在细胞间通信以及疾病的诊断和治疗都将产生重大影响. 参 考 文 献 1 Chim S,Shing T,Hung EC,et al. Detection and character-ization of placental microRNAs in maternal plasma. ClinChem,2008,54 482 490. 2 Lawrie

19、 CH,Gal S,Dunlop HM,et al. Detection of elevatedlevels of tumour-associated microRNAs in serum of patientswith diffuse large B-cell lymphoma. Br J Haematol,2008,141 672 675. 3 Weber JA,Baxter DH,Zhang S,et al. The microRNA spec-trum in 12 body fluids. Clin Chem,2010,56 1733 1741. 4 Zhang L,Hou D,Che

20、n X,et al. Exogenous plant MIR168aspecifically targets mammalian LDLRAP1: evidence of cross-kingdom regulation by microRNA. Cell Res,2012,22 107 126. 5 Pritchard CC,Kroh E,Wood B,et al. Blood cell origin ofcirculating microRNAs: a cautionary note for cancer biomar-ker studies. Cancer Prev Res ( Phil

21、a) ,2012,5 492 497. 6 Turchinovich A,Burwinkel B. Distinct AGO1 and AGO2 as-sociated microRNA profiles in human cells and blood plas-ma. RNA Biol,2012,9 1066 1075. 7 Mitchell PS,Parkin RK,Kroh EM,et al. Circulating microR-NAs as stable blood - based markers for cancer detection.Proc Natl Acad Sci US

22、A,2008,105 10513 10518. 8 Hunter MP,Ismail N,Zhang X,et al. Detection of microRNAexpression in human peripheral blood microvesicles. PLoSOne,2008,3 3694 3705. 9 Gibbings DJ,Ciaudo C,Erhardt M,et al. Multivesicularbodies associate with components of microRNA effectorcomplexes and modulate microRNA ac

23、tivity. Nat Cell Biol,2009,11 1143 1149. 10 Wang K,Zhang S,WeberJ,et al. Export of microRNAs andmicroRNA-protective protein by mammalian cells. NucleicAcids Res,2010,38 7248 7259. 11 Li J,Zhang Y,Liu Y,et al. Microvesicle-mediated transferof microRNA-150 from monocytes to endothelial cells pro-motes

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