Western Blot原理及经验注意事项经验总结基本原理很全面Word下载.docx

1、5、 TEMED原溶液四甲基乙二胺催化过硫酸铵形成自由基而加速两种丙稀酰胺的聚合。PH太低时，聚合反应受到抑制。AP提供两种丙稀酰胺聚合所必须的自由基。去离子水配制数ml，临用前配制.6. 10%过硫酸铵溶液： 称取1g过硫酸铵，加超纯水溶解并定容至10ml，分装到1.5ml微量离心管中，冻存。7、 SDS-PAGE加样缓冲液:在沸水终煮3min混匀后再上样，一般为20-25ul，总蛋白量100g。8、 Tris-甘氨酸电泳缓冲液:30.3gTris，188g甘氨酸，10gSDS，用蒸馏水溶解至1000ml，临用前稀释10倍。PH8.39、 转移缓冲液： 2.9g甘氨酸、5.8gTris碱、0

2、.37g SDS（可不加），200ml甲醇（临用前加），加水至总量1L。10、 丽春红染液储存液：丽春红S 2g 三氯乙酸30g 磺基水杨酸 30g 加水至100ml 用时上述储存液稀释10倍即成丽春红S使用液。使用后应予以废弃。11、 脱脂奶粉5%（w/v）。12、 NaN3 0.02% 叠氮钠（有毒，戴手套操作），溶于磷酸缓冲盐溶液（PBS）。4.2.422. 聚丙烯酰胺凝胶溶液：分离胶12.5% ,PH8.8 5ml 10ml 15ml超纯水 1.5ml 3.0 ml 4.5 ml30%丙烯酰胺溶液 2.1 ml 4.2 ml 6.4 mlpH8.8、1.5mol/LTris溶液 1.3

3、 ml 2.6 ml 3.8 ml10%SDS 0.05ml 0.1 ml 0.15 mlTEMED 0.002ml 0.004 ml 0.006 ml10%过硫酸铵 0.05ml 0.1 ml 0.15 ml浓缩胶：5% ，pH6.8 2 ml4 ml6 ml超纯水1.4 ml2.8 ml4.1 ml30%丙烯酰胺溶液0.3 ml0.6 ml1.0 mlpH6.8、1.0mol/LTris溶液0.25 ml0.5 ml0.75 ml10%SDS0.02 ml0.04 ml0.06 mlTEMED0.002 ml0.004 ml0.006 ml10%过硫酸铵0.02ml0.04ml0.06ml

4、一配胶1注意一定要将玻璃板洗净，最后用ddH2O冲洗，将与胶接触的一面向下倾斜置于干净的纸巾晾干。2分离胶及浓缩胶均可事先配好（除AP及TEMED外），过滤后作为储存液避光存放于4，可至少存放1个月，临用前取出室温平衡（否则凝胶过程产生的热量会使低温时溶解于储存液中的气体析出而导致气泡，有条件者可真空抽吸3分钟），加入10%AP（0.70.8:100, 分离胶浓度越高AP浓度越低，15%的分离胶可用到0.5:100）及TEMED（分离胶用0.4:1000, 15%的可用到0.3:1000，浓缩胶用0.8：1000）即可3封胶：灌入2/3的分离胶后应立即封胶，胶浓度10%时可用0.1%的SDS封

5、，浓度10%时用水饱和的异丁醇或异戊醇，也可以用0.1%的SDS。封胶后切记，勿动。待胶凝后将封胶液倒掉，如用醇封胶需用大量清水及ddH2O冲洗干净，然后加少量0.1%的SDS，目的是通过降低张力清除残留水滴。4灌好浓缩胶后1h拔除梳子，注意在拔除梳子时宜边加水边拔，以免有气泡进入梳孔使梳孔变形。拨出梳子后用ddH2O冲洗胶孔两遍以去除残胶，随后用0.1%的SDS封胶。若上样孔有变形，可用适当粗细的针头拨正；若变形严重，可在去除残胶后用较薄的梳子再次插入梳孔后加水拔出。30min后即可上样，长时间有利于胶结构的形成，因为肉眼观的胶凝时其内部分子的排列尚未完成。二样品处理1培养的细胞（定性）：

6、去培养液后用温的PBS冲洗23遍（冷的PBS有可能使细胞脱落）。 对于6孔板来说每孔加200300l，6080的1loading buffer。 100，1min。 用细胞刮刮下细胞后在EP管中煮沸10min，期间vortex 23次。 用干净的针尖挑丝，如有团块则将团块弃掉，如果没有团块但有拉丝现象，则可以将EP管置于0后在1400016000g离心2min，再次挑丝。若无团块也无丝状物但溶液有些粘稠，可通过使用1ml注射器反复抽吸来降低溶液粘滞度，便于上样。 待样品恢复到室温后上样。2培养的细胞（定量）： 加入适量的冰预冷的裂解液后置于冰上1020min。 用细胞刮刮下细胞，收集在EP管后

7、超声（100200w）3s，2次。 12000g离心，4，2min。 取少量上清进行定量。 将所有蛋白样品调至等浓度，充分混合沉淀后加loading buffer后直接上样最好，剩余溶液（溶于1loading buffer）可以低温储存，-70一个月，-20一周，4 12天，每次上样前98，3min。3组织： 匀浆 对于心肝脾肾等组织可每50100mg加1ml裂解液，肺100200mg加1ml裂解液。可手动或电动匀浆。注意尽量保持低温，快速匀浆。 12000g离心，4，2min。 取少量上清进行定量。 将所有蛋白样品调至等浓度，充分混合沉淀加loading buffer后直接上样最好，剩余溶液

8、（溶于1三电泳1上样前将胶板下的气泡赶走。2所有蛋白样品调至等浓度后上样，样品两侧的泳道用等体积的1loading buffer上样，Marker也用1loading buffer调整至与样品等体积。2以初始电压为45V时的电流强度进行稳流电泳，当电压达65V时改为稳压电泳。3在目的蛋白泳动至距胶下缘1cm以上结束。四转膜1电泳结束前20分钟左右戴上手套开始准备：湿转使用常规电转液：Tris 3.0g，Gly 14.4g， M-OH 200ml，加去离子水至1,000ml。干转则取此转移液，每50ml加入10%SDS180ul。浸泡NC膜：将NC膜平铺于去离子水面，靠毛细作用自然吸水后再完全浸

9、入水中10min以排除气泡，随后浸泡入转移液中。PVDF膜则在M-OH中浸泡20min以上后转入转移液中。将滤纸也浸入转移液中。2取胶：将胶卸下，保留30-100KD或分子量范围更广些的胶（以便以后杂其他感兴趣的蛋白），左上切角，在转移液中稍稍浸泡一下，置于洁净玻璃板上，按顺序铺上膜与每侧一张（干转每侧三张）滤纸。注意用玻棒逐出气泡，剪去滤纸与膜的过多部分（尤其是干转，以防止短路）3转膜：湿转：电转槽用去离子水淋洗晾干，加入1,000ml电转液。将胶平铺于海绵上，滴加少许电转液再次驱赶气泡，封紧后放入电转槽，注意膜在正极一侧。降温，将电泳槽置于冰水混合物中。恒流100mA过夜，或400mA，4

10、h。注意不同蛋白的要求不同。干转：用电转液淋洗石墨电极，滤纸吸干，铺上胶，再滴少许电转液，以1.5mA/cm2凝胶面积转移1-2小时。负载电压不宜超过1V/cm2胶面积。五封闭及杂交1封闭：将膜从电转槽中取出，去离子水与PBST或TTBS稍加漂洗，浸没于封闭液中缓慢摇荡一小时。必要时可先用丽春红染色（2%乙酸，0.5%丽春红的水溶液）观察蛋白条带，再用去离子水和TTBS将丽春红洗脱后封闭，如用蛋白marker则可省略此步。2结合一抗：一抗的准备：使用反贴法时每张39cm2膜约需2ml一抗稀释液。反贴法的操作：含一抗的封闭液滴加于摇床的塑料膜上，将Western膜从封闭液中取出，滤纸贴角稍吸干，

11、正面朝下贴在一抗上，注意不要留下气泡，室温下轻摇孵育一小时或4静置过夜。在反应体系外面罩一湿润平皿以防止液体过多蒸发。3洗涤：一抗孵育结束后，用PBST或TTBS漂洗膜后再浸洗三次，每次5-10min。4结合二抗：根据一抗来源选择合适的二抗，根据鉴定方法选择HRP或AP标记的抗体，按相应比例稀释（1:10001:10000），室温轻摇一小时。5洗涤：二抗孵育结束后，用PBST或TTBS漂洗膜后再浸洗三次，每次5-10min。六发光鉴定一般使用辣根过氧化物酶HRP-ECL发光法或碱性磷酸酶AP-NBT/BICP显色法。1HRP-ECL发光法：将A、B发光液按比例稀释混合。膜用去离子水稍加漂洗，滤

12、纸贴角吸干，反贴法覆于A、B混合液滴上，熄灯至可见淡绿色荧光条带（5min左右）后滤纸贴角吸干，置于保鲜膜内固定于片盒中，迅速盖上胶片，关闭胶盒，根据所见荧光强度曝光。取出胶片立即完全浸入显影液中1-2min，清水漂洗一下后放在定影液中至底片完全定影，清水冲净晾干，标定Marker，进行分析与扫描。2AP-NBT/BICP显色法：每片NBT/BICP可溶解于30ml水中，使用前将一片分装在30个 EP管中，每张39cm的膜取一管配成1ml即可。将PBST或TTBS洗涤过的膜用去离子水稍加漂洗，滤纸贴角吸干，反贴法覆于NBT/BICP溶液液滴上，并用不透明物体（如报纸）遮挡光线，显色20s后每1

13、0s观察一次，至条带明显或有本底出现时将膜揭起置去离子水中漂洗后放滤纸上晾干即可观察与扫描。七增强敏感性若目的条带未出现，或很淡，可试用以下方法增强发光强度：用清水漂洗膜数分钟，重加发光液进行曝光，可延长曝光时间。将膜在PBST或TTBS中洗涤30min或更长，期间至少换2次液。封闭4060min4一抗杂交，室温1h。37 1h 会更强，但可能增加非特异条带。5PBST或TTBS洗膜20min，期间换2次液。6二抗杂交，37 1h。78发光鉴定。9若条带仍未出现或很淡，可以再用PBST或TTBS洗涤膜20min，期间换2次液。10三抗杂交，室温1h。三抗即抗二抗的二抗，比如二抗用羊抗兔，此时三抗可以选择兔抗羊或鼠抗羊等。11PBST或TTBS