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1、正确取用和量度药品或试剂；配制操作正确、熟练。二、显微镜的使用1.多种型号生物显微镜的结构及调试使用。2.显微镜的保养技术。3.体视显微镜的结构及使用操作。4.特殊用途显微镜的使用。5.显微照相技术。6.显微图像分析处理系统的使用和显微图片处理技术。能较熟练使用多种型号的普通生物显微镜及体视显微镜，并利用多种调节手段使显微视野光线柔和、清晰；会使用特殊的生物显微镜；会使用显微照相或显微图像处理系统记录显微图片。三、植物解剖1.相关植物材料的采集。2.营养器官的徒手切片及其观察、绘图。3.繁殖器官的解剖。4.花程式的编写及花图式的绘制。5.微小器官的显微解剖操作。能在实验指导材料及指导教师的指导

2、下，有序完成各种实验操作，无不规范的动作，绘图线条流畅、圆点规范，结果正确。四、植物组织培养技术1.植物组织培养的实验设备及基本操作2.植物体细胞的再生和离体繁殖3.植物无毒苗木培育掌握和运用植物茎尖脱毒技术，获得一定数量的脱毒苗。运用离体快繁等技术，培养玉米幼胚和甘薯等经济植物茎尖，通过再生途径获得离体繁殖幼苗。五、动物解剖1.动物解剖器械的使用方法及注意事项：手术刀、手术剪、手术镊、探针、止血钳等工具的执摄方法；处理不同组织时的适用范围及注意事项。2.不同动物的抓取方法。3.动物的麻醉：麻醉药品的选择与配制；给药途径和方法：静脉注射、腹腔注射、皮下注射、呼吸麻醉等；麻醉过量的抢救。4.动物

3、的固定：背位固定法、蛙类固定法、蠕虫类固定法。5.急性动物实验中的基本操作技术：手术切口、止血、打手术结、气管分离、血管分离、神经分离等。6.动物的处死：双毁髓及单毁髓法、空气栓塞法、脊椎脱臼法、放血致死法。掌握动物解剖的基本技能，正确描述动物的解剖方位和器官名称。能进行常规动物的解剖，操作熟练，并能有序完成各种实验要求，无不规范动作，在实验中能善待实验动物，减少实验动物的痛苦。六、制片技术1.植物或动物细胞、组织的采集。2.细胞、组织的固定、染色。3.常规制片的方法。能够在脱离实验指导的情况下正确进行组织、细胞标本的采集、固定和染色工作；制作的装片无气泡，观察和分析时能取得较好的实验效果。七

4、、紫外可见分光光度计的使用1.机器预热2.根据检测波长选用比色杯3.标准曲线的制作4.待测样品的制备5.以空白为对照进行比色要求: 能独立熟练使用紫外可见分光光度计;能使用相关软件正确制作标准曲线；操作规范。八、常规仪器使用（离心机，电子天平，分光光度计，电泳设备，干燥箱，生化培养箱，恒温水浴锅，人工气候箱，纯水仪，恒温培养箱，冰箱，冰柜，液氮容器，生物组织切片机，恒温磁力搅拌器，移液枪等）1.认识和使用各种冰箱、冰柜、超低温冰箱、恒温培养箱、生化培养箱、人工气候箱、恒温水浴锅、液氮容器等。2.认识和使用恒温磁力搅拌器、电子天平、各种离心机、纯水仪、干燥箱等。3.学习使用移液枪、电泳设备等。在

5、实验指导教材及教师的指导下，能认识和理解所有常规仪器的性能、操作及在生物学实验中的应用等，并能独立对这些仪器进行规范操作。九、氨基酸的纸层析1.层析滤纸的准备。2.点样。3.平衡。4.层析展开。5.显色。掌握氨基酸的纸层析的方法和技术。十、核酸提取、分离技术1.胶板的准备；2.倒胶；3.电泳；4.检测。掌握琼脂糖凝胶电泳检测DNA的方法和技术（包括质粒DNA、植物DNA、动物DNA的提取和纯化技术）；琼脂糖凝胶电泳检测DNA纯度。十一、琼脂糖电泳检测DNA1.胶板的准备。2.倒胶。3.电泳。掌握琼脂糖凝胶电泳检测DNA的方法和技术；制作的凝胶符合要求；十二、聚合酶链式反应（PCR）技术1.DN

6、A模板的制备。2.引物的设计与合成。3.PCR参数的确定。4.基因扩增与PCR产物的检测。能够熟练应用引物设计软件, 掌握引物设计的基本原则; 熟练掌握PCR各环节的基本操作技能，最终获得PCR产物。十三、SDS-PAGE1.制板、制胶2.样品处理3.点样4.电泳5.固定、染色、脱色6.拍照掌握SDS-PAGE的原理；熟练进行制胶、点样、电泳、固定、染色、脱色等；实验效果好。十四、微生物基本实验技能1.培养基的配制。2.试管、培养皿、移液管等的包扎。3.物品的高压蒸汽灭菌和干热灭菌。4.细菌制片、单染色、革兰氏染色及芽孢染色。5.倒平板、摆斜面。6.将试管斜面菌种划线接种至平板。7.将试管斜面

7、菌种转接到试管斜面。8.将试管斜面菌种转接至液体培养基。熟练掌握培养基的制备、灭菌、细菌的分离与培养及染色技术。十五、无菌操作和高压灭菌技术1.高压灭菌锅的使用。2.超净工作台的使用。3.倒斜面，倒平板（在火焰下进行）。4.无菌接种（斜面和平板）（在火焰下进行）。5无菌培养（37,24h）。能独立熟练操作灭菌锅;熟悉无菌操作流程并能独立熟练的在超净工作台进行倒平板操作；无菌接种，无菌培养（包括打开紫外灯先照30分钟，关紫外灯后20-30分钟操作，开吹风机，用酒精棉球消毒，点酒精灯或煤气灯等）。十六、微生物的分离纯化1.四大类群微生物的常用培养基及其pH范围。2.菌悬液的梯度稀释（二倍稀释和十倍

8、稀释法）。3.涂布平板法分离纯化微生物。4.划线分离纯化微生物。5.稀释倒平板法分离纯化微生物。6.穿刺接种。7.从食品、土壤中分离出细菌、酵母菌和霉菌（或具体分离菌）。掌握各类微生物样品的稀释和分离技术。熟练完成操作，正确回答原理，能迅速判断微生物形态及结构。十七、微生物的形态观察1.油镜使用方法和注意事项。2.辨认细菌形态、荚膜、细胞壁、伴孢晶体、芽孢、鞭毛。3.辨认酵母的形态（液泡、内含物等）、出芽、细胞核、假菌丝。4.细菌、放线菌、酵母菌、霉菌菌落特征的分辨。熟练掌握油镜的使用方法和各类微生物一般结构和特殊结构。十八、微生物生理学试验测定1.V.P. 反应和M.R.反应原理及方法。2.

9、判定某种细菌是否发酵糖，能否产气、产酸的方法。3.如何初步鉴定一种细菌是好氧、厌氧、兼性厌氧。4.如何初步判定一种细菌是否运动。5.用药敏纸片扩散法和试管二倍稀释法测定化学、生物因素对微生物生长的影响的测定。6.微生物的紫外诱变和结果检测。掌握细菌生理生化试验、紫外线诱变的原理和方法十九、细胞融合1.采取鸡血或蟾蜍血，并做抗凝处理。2.用50%PEG（4000）诱导细胞融合，形成融合细胞。或采用物理方法（电击或激光）、生物学方法（仙台病毒、新城鸡瘟病毒、副流感病毒等）诱导细胞融合。3.镜检。细胞融合率高，细胞膜完整、不皱缩。二十、染色体制片技术1.材料准备与取材。2.材料预处理。3.材料固定。

10、4.材料解离。5.染色与压片。6.显微镜观察。取材准确，材料处理合适，染色体在显微镜下清晰可见，且分散均匀。二十一、发酵技术1.种子的扩培。2.培养基及发酵设备的灭菌。3.接种技术。4.过程参数分析。5.事故及染菌处理方法。能熟练、灵活运用所掌握的知识，各种操作方法正确，处理事故及染菌等符合要求，能对发酵各种参数进行分析及应用。二十二、发酵工艺过程控制1.掌握微生物发酵一般工艺流程。2.能熟练对发酵参数进行检测。3.掌握通风发酵技术、厌氧发酵技术、空气净化技术、代谢控制技术、代谢调控育种技术、膜分离技术、萃取分离技术、色谱分离技术、离子交换技术、浓缩、结晶技术。4.能熟练掌握发酵产物的提取、分

11、离及检测的原理及方法。5.能熟练使用相关的仪器及发酵设备。6.能正确地对实验结果进行分析。7.具备非标设备的设计能力，总平面布置、工艺流程图、设备设计图等绘制能力，物料平衡、热量平衡、设备平衡的计算能力，生产工艺的设计能力，标准设备的选型，产品企业标准的制定能力 能熟练、灵活运用所掌握的知识，了解微生物发酵一般工艺流程，具备发酵工程领域工艺设计、设备选型和设计的初步能力。二十三、基因工程技术1.载体的制备。2.目的基因的合成。3.感受态细胞的制备。4.重组子的构建。5.细菌转化与转化子的鉴定。6.重组基因的诱导表达。7.基因表达产物的鉴定。8.重组蛋白的分离与纯化。能够熟练掌握基因重组各环节的

12、基本操作技能，最终获得纯化的重组蛋白质。二十四、设计实验1.查阅资料，确定选题。2.根据选题查阅资料，灵活运用所学知识和技能设计实验。3.实施并完成实验全过程。4.小结实验，写出实验论文。能熟练查阅资料和灵活运用知识提出问题，实验设计合理，实验操作规范，实验结果准确，实验论文书写格式规范。二十五、生物实验室管理与安全技术1.实验室有毒有害废物的处理方法。2.危险试剂储存和管理。3.化学试剂的分级。4.实验室事故及处理方法。5.实验室基本制度。6.常用仪器的使用及维修。能对化学试剂、实验室废弃物及事故做出正确合理的处理。熟悉实验室的基本制度及常用仪器的使用和一般维修。 生命科学系 2012.4.12